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Pegue um dispositivo microfluídico que consiste em poços reservatórios conectados a dois compartimentos, um somático e um axonal, separados por uma barreira de microranhuras.
Os compartimentos e microranhuras são revestidos com um substrato de cultura de células para facilitar a adesão celular.
Adicione um meio de células-tronco neurais a cada poço e incube para pré-condicionar o dispositivo para cultura de células.
Descarte a mídia. Adicione células-tronco neurais, ou NSCs, aos poços do compartimento somático e permita que as células adiram.
Adicione o meio NSC a cada poço e incube em uma câmara umidificada para evitar a evaporação do meio. Durante a incubação, os NSCs proliferam.
Substitua o meio NSC por um meio de diferenciação neural e incuba.
As pequenas moléculas no meio induzem a diferenciação de NSCs em neurônios dentro do compartimento somático, com seus axônios se estendendo através dos microsulcos para o compartimento axonal.
Os neurônios diferenciados com axônios estendidos estão prontos para novos ensaios.
Para começar, dissolva a poli-l-ornitina em água destilada de grau de cultura de células para fazer 600 microlitros de solução por chip. Aspire o PBS restante dos poços, certificando-se de que a ponta da pipeta esteja longe da abertura do canal. Carregue 150 microlitros de solução de trabalho de poli-l-ornitina no poço superior direito.
Aguarde 90 segundos e adicione 150 microlitros da solução ao poço inferior direito. Aguarde cinco minutos e repita o processo de carregamento com a solução para os poços esquerdos. Em seguida, coloque a bandeja do umidificador com chip a 4 graus Celsius durante a noite. Se estiver usando uma placa de Petri, embrulhe-a com parafilme e coloque-a a 4 graus Celsius durante a noite.
Em seguida, aspire a solução dos poços, certificando-se de que a ponta da pipeta seja colocada longe da abertura do canal, e repita o carregamento dos poços direito e esquerdo com 150 microlitros de água estéril duas vezes cada.
Prepare a solução de trabalho da lamina. Carregue os poços direito e esquerdo com 150 microlitros cada uma das soluções de trabalho da laminina. Incube o chip na bandeja por duas horas a 37 graus Celsius.
Enxágüe o chip com PBS sem cálcio e magnésio. Carregue os poços direito e esquerdo com 150 microlitros de PBS cada. Aguarde cinco minutos. Aspire o PBS dos poços e enxágue o chip com meio NSC. Carregue os poços direito e esquerdo com 150 microlitros cada um dos meios NSC. Incube o chip na bandeja durante a noite em uma incubadora a 37 graus Celsius com 5% de CO2 para pré-condicionar o chip.
Para semear células-tronco neurais humanas no chip multicompartimental, primeiro conte a concentração celular usando um hemocitômetro. Em seguida, aspire a mídia dos poços. Pipete 5 microlitros da solução celular para o poço superior direito, seguido de 5 microlitros para o poço inferior direito.
Use um microscópio para verificar se as células entraram no canal. Aguarde cinco minutos para que as células adiram à parte inferior do chip. Pipetar aproximadamente 150 microlitros de meio NSC para os poços direito e esquerdo. Incubar a 5% de CO2, 37 graus Celsius, dentro de um recipiente umidificado adequado.
Após 48 horas, aspire o meio NSC dos poços e substitua-o por meios de diferenciação neural adicionando 150 microlitros a cada poço superior e a cada poço inferior. Neurônios de cultura dentro de uma incubadora de CO2 a 5%, 37 graus Celsius dentro de uma bandeja umidificadora.