Isolando neurônios marcados com fluorescência de um cérebro murino

0 vistas4:35 min • July 8th, 2025

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Pegue um córtex de camundongo transgênico contendo neurônios que expressam proteínas fluorescentes.

Prenda-o em um porta-amostras.

Monte o suporte na bandeja do vibratomo contendo aCSF oxigenado para manter as condições fisiológicas do tecido.

Usando parâmetros definidos, obtenha fatias coronais.

Coloque as fatias em um suporte de malha contendo aCSF oxigenado e bloqueadores de atividade para estabilizá-las.

Trate as fatias com proteases para digerir a matriz extracelular e soltar as células.

Lave com aCSF para remover as proteases.

Transfira as fatias para uma placa de cultura com aCSF e soro.

Sob um microscópio de fluorescência, disseque as regiões da fatia contendo neurônios fluorescentes.

Transferir os fragmentos dissecados para um tubo contendo aCSF e soro.

Dissocie mecanicamente o tecido para formar uma suspensão unicelular. Transfira as células para uma placa de cultura contendo aCSF.

Sob um microscópio de fluorescência, use uma pipeta capilar para coletar neurônios fluorescentes.

Dispense esses neurônios em uma placa de cultura contendo aCSF para análise posterior.

Disseque o cérebro de um camundongo sacrificado abrindo o crânio com uma pequena tesoura e extraindo o cérebro fresco usando uma pinça fina sem danificar o córtex. Coloque o cérebro em aCSF resfriado e oxigenado, deixando uma pedra de ar ligada a 5% de oxigênio balanceado com dióxido de carbono durante toda a duração do seccionamento.

Posicione o cérebro no mandril de vibrador e corte seções coronais ou sagitais com espessura de 300 mícrons. Colete quantas seções forem necessárias para obter um mínimo de 10 a 50 células rotuladas. Coloque as fatias em um porta-fatias de malha de algodão colocado dentro de um copo para que sejam banhadas em aCSF oxigenado.

Mova as fatias para o copo contendo aCSF com bloqueadores de atividade e bloqueie por 15 a 20 minutos em temperatura ambiente enquanto borbulha oxigênio usando uma pedra de ar. Mover as fatias para o copo contendo aCSF com a solução de protease para realizar uma digestão suave à temperatura ambiente. Após a digestão, lavar a protease movendo as fatias de volta para o copo contendo aCSF com solução bloqueadora de atividade durante 5 a 10 minutos à temperatura ambiente. Continue borbulhando oxigênio.

Em seguida, prepare uma placa de Petri de 100 milímetros contendo aCSF com 1% de FBS à temperatura ambiente e mova seções individuais para a placa para microdissecação. Sob um escopo de dissecção fluorescente, use um par de pinças finas para microdissecar áreas e camadas de interesse com um mínimo de 10 a 50 células.

Usando uma pipeta Pasteur, mova as peças microdissecadas para um tubo de microcentrífuga de 2 mililitros contendo aproximadamente 0,8 mililitros de FBS a 1% em solução de aCSF. Triturar o tecido dissecado no tubo de microcentrífuga à temperatura ambiente.

Execute aproximadamente 10 golpes com cada uma das pipetas Pasteur flamejadas, começando com a maior e terminando com o menor diâmetro de saída. Dispense as células dissociadas em uma placa de Petri de 100 mililitros contendo aCSF oxigenado e aguarde de 5 a 7 minutos para que as células se estabilizem gradualmente.

Observe o sinal GFP e RFP sob um microscópio de dissecação. Identifique detritos examinando a morfologia sob iluminação de campo claro. Uma vez que uma área de células com poucos detritos tenha sido identificada, use o tubo capilar e conectado para pegar as células, bloqueando a extremidade da válvula do tubo com a língua. Em seguida, posicione o capilar próximo às células. Solte o bloco no capilar e bloqueie rapidamente novamente para capturar a célula usando a ação capilar.

Mova o capilar para uma placa de Petri de 100 milímetros com aCSF oxigenado fresco e sopre suavemente no tubo enquanto observa a ponta capilar sob óptica de fluorescência para dispensar as células na placa. Repita o procedimento de coleta até que 100 a 150 células sejam coletadas, certificando-se de que contaminantes como detritos sejam mínimos na óptica de contraste de interferência diferencial de campo claro.

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Última atualização: 15 agosto 2026