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Pegue uma cultura de células-tronco pluripotentes induzidas, ou iPSC, em meios de manutenção contendo inibidores da rho-quinase.
Os fatores de crescimento mantêm as células indiferenciadas, enquanto os inibidores da rho-quinase aumentam a sobrevivência celular.
Substitua o meio por um novo meio de manutenção, removendo os inibidores da rho-quinase. Incubar, promovendo a formação de colônias.
Substitua regularmente por meios não condicionados, que fornecem um ambiente controlado, desencadeando a diferenciação de iPSC em progenitores neurais e, em seguida, células endoteliais cerebrais, seguidas de proliferação celular.
Substitua por meios de células endoteliais contendo ácido retinóico e fatores de crescimento de fibroblastos. Incubar.
Os fatores de crescimento de fibroblastos facilitam a proliferação celular, enquanto o ácido retinóico promove a maturação das células endoteliais cerebrais.
Adicione enzimas proteolíticas para separar as células. Recolha as células e centrifugue. Descarte o sobrenadante.
Ressuspenda as células em meio endotelial e semeie-as em uma inserção de membrana de vários poços revestida com colágeno e fibronectina.
O poço contém meios endoteliais. Incubar para adesão seletiva de células endoteliais cerebrais.
Substitua o meio por meio endotelial não suplementado para experimentos adicionais.
Ressuspenda 7,5 x 105 células em 12 mililitros de meio de manutenção de células-tronco e 10 inibidores micromolares de ROCK. Aspirar a matriz de um balão T75 e transferir a suspensão celular para o balão. Agitar o balão para distribuir as células e colocá-lo na incubadora.
Atualize a mídia todos os dias durante os próximos dois dias para remover o inibidor de ROCK e apoiar o crescimento de colônias de células-tronco. No terceiro dia, comece a diferenciação mudando a mídia para um meio incondicionado.
Altere o meio diariamente nos próximos cinco dias. Seis dias após o início da diferenciação, expanda seletivamente a população de células endoteliais mudando para células endoteliais ou meio EC com 20 nanogramas por mililitro de bFGF e 10 micromolares de ácido retinóico. Incube as células por dois dias.
Prepare a solução de colágeno IV e fibronectina de acordo com as instruções do manuscrito e use-a para revestir placas de cultura de células. Aspirar o meio EC das células e adicionar 12 mililitros de reagente de dissociação celular. Incubar o balão a 37 graus Celsius até que 90% das células se tenham desprendido.
Durante o tempo de incubação, retire a solução de revestimento das placas previamente preparadas e deixe-as secar em uma coifa estéril. Depois que as células se soltarem, use uma pipeta de 10 mililitros para criar uma suspensão de célula única.
Transfira as células para um tubo de 50 mililitros e dilua-as com um volume igual de meio livre de soro endotelial humano. Em seguida, conte as células com um hemocitômetro. Pellet as células a 1.500 g por 10 minutos. Em seguida, ressuspenda-os em meio EC recém-preparado com bFGF e ácido retinóico para uma concentração de 2 milhões de células por mililitro.
Adicione 500 microlitros da suspensão celular na parte superior de um inserto de 12 poços e 1,5 mililitros de meio na parte inferior. Distribua as células uniformemente pela inserção e incube a placa a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. No dia seguinte, troque o meio para EC sem bFGF ou ácido retinóico.