JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociência
0 vistas • 3:52 min • July 8th, 2025
Pegue tecidos adiposos periaórticos transgênicos colhidos de camundongos contendo células-tronco derivadas de tecido adiposo que expressam proteínas fluorescentes descendentes de células da crista neural, ou NCCs.
Adicione o meio de digestão e pique os tecidos.
Transfira o tecido picado com o meio de digestão para um tubo. Dissocie mecanicamente os fragmentos.
incubar. A colagenase no meio digere a matriz extracelular do tecido, liberando células-tronco, adipócitos e fibroblastos.
Adicione meios contendo soro para interromper a atividade da colagenase. Centrifugue e descarte o sobrenadante contendo adipócitos.
Ressuspenda as células na mídia e filtre para remover agregados.
Centrifugar o filtrado e remover o sobrenadante. Ressuspenda as células no tampão de lise eritrocitária para lisar os eritrócitos.
Adicione tampão contendo soro para interromper a lise. Centrifugue e descarte o sobrenadante.
Ressuspenda as células no buffer.
Execute a classificação de células ativadas por fluorescência para isolar células-tronco fluorescentes.
As células-tronco isoladas podem ser usadas para experimentos futuros.
Transfira o tecido adiposo colhido para um novo tubo de microcentrífuga de 2 mililitros, contendo 1 mililitro de meio de digestão recém-preparado, e use uma tesoura cirúrgica para picar os tecidos. Transfira a pasta de tecido para um tubo de 50 mililitros contendo 9 mililitros de meio de digestão fresco e use uma pipeta de 1 mililitro para triturar os tecidos 10 vezes.
Quando uma solução homogênea for obtida, incube o tubo por 30 a 45 minutos a 37 graus Celsius e 100 rotações por minuto, verificando a cada 5 a 10 minutos para evitar a digestão excessiva. Quando uma solução de tecido adiposo homogêneo amarelo claro puder ser observada após um giro suave do tubo, interrompa a digestão com 5 mililitros de HDMEM suplementado com 10% de soro fetal bovino. Após uma mistura completa, centrifugue a amostra de tecido adiposo.
A fração de células vasculares estromais será visível como uma pelota acastanhada. Ressuspenda o pellet em 10 mililitros de meio de cultura e filtre a suspensão celular através de um filtro de células de 70 micrômetros.
Colete as células por outra centrifugação e ressuspenda suavemente o pellet em 5 mililitros de tampão de lise eritrocitária. Transfira a suspensão para um tubo de 15 milímetros. Após 10 minutos, interrompa a reação com duas centrifugações em 10 mililitros de PBS, suplementado com soro bovino fetal a 1%.
Após a segunda centrifugação, ressuspender o pellet em 5 mililitros de meio de cultura em gelo e recolher as células com centrifugação final. Em seguida, ressuspenda as células em 5 mililitros de tampão FACS para contagem.
Para configurar uma cultura NCADSC após seu isolamento por FACS de acordo com os protocolos padrão, coloque as células em uma concentração de 5 x 103 células por cm2 em cada poço, uma placa de cultura de 12 poços em meio de cultura completo, a 37 graus Celsius, e 5% de dióxido de carbono por 20 a 24 horas. No dia seguinte, lave as células com PBS 37 Celsius e alimente a cultura com meio de cultura fresco.
Este artigo apresenta um protocolo detalhado para o isolamento, cultivo e indução da diferenciação adipogênica em células-tronco derivadas de tecido adiposo derivadas da crista neural (NCADSCs) do tecido adiposo periaórtico murino. O método utiliza camundongos transgênicos que expressam proteínas fluorescentes em células da crista neural, permitindo a identificação precisa e a separação das NCADSCs para aplicações posteriores.
O isolamento de células-tronco derivadas de adipócitos derivadas da crista neural (NCADSCs) a partir do tecido adiposo peri-aórtico murino permite a validação de alvos em modelos de doenças metabólicas e vasculares. A marcação fluorescente e a purificação por FACS fornecem um sistema reproduzível para a redução de riscos mecanicista de terapias com células-tronco. Esta abordagem reforça a confiança preditiva na triagem pré-clínica, garantindo a homogeneidade celular e a rastreabilidade de linhagem.
O fluxo de trabalho de isolamento se insere na transição entre as fases iniciais de descoberta e pré-clínica, fornecendo uma entrada celular definida para validações funcionais subsequentes e esforços de identificação de compostos promissores.
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Última atualização: 29 agosto 2026