RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pt_BR
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Pegue um segmento do intestino delgado de camundongo previamente despojado do músculo longitudinal e do plexo mioentérico, camadas contendo neurônios entéricos e células gliais.
Corte o tecido e coloque-o em um tampão contendo EDTA. Incubar com balanço.
O EDTA interrompe as junções célula-célula, descolando a mucosa epitelial da lâmina própria subjacente e da submucosa, camadas de tecido conjuntivo contendo células gliais entéricas.
Pipete repetidamente para desalojar as células epiteliais.
Filtre através de um filtro de célula e descarte o fluxo.
Transfira o tecido para um tampão de dissociação não enzimático e incube-o com balanço. O tampão de dissociação solta a lâmina própria e a matriz extracelular submucosa, desprendendo as células.
Pipete repetidamente para dissociar ainda mais as células.
Filtre através de um filtro de células para coletar as células.
Centrifugue e ressuspenda as células em um tampão.
Pegue poços revestidos de proteínas de adesão contendo um meio de crescimento glial e coloque as células em placas.
O revestimento facilita a adesão celular, enquanto os fatores de crescimento promovem seletivamente a proliferação de células gliais, estabelecendo uma lâmina própria e uma cultura de células gliais submucosas.
Para remover a mucosa epitelial, primeiro use uma tesoura fina para cortar os intestinos em pedaços de aproximadamente 0,5 centímetro e colete os pedaços em 30 mililitros de solução gelada de EDTA / HEPES / DPBS. Agite a solução contendo tecido a 4 graus Celsius por 10 minutos a aproximadamente 60 inclinações por minuto.
Umedeça previamente uma pipeta de plástico de 5 mililitros pipetando o tampão EDTA / HEPES / DPBS para cima e para baixo uma vez e, em seguida, use a pipeta pré-umedecida para triturar o tecido e a suspensão tampão 20 vezes para desalojar a mucosa epitelial.
Colete o tecido despejando a mistura através de um filtro de células de náilon de 100 mícrons e use uma pinça de nariz agulhado para colocar o tecido retido no filtro em um novo tubo de centrífuga cônico de 50 mililitros contendo 30 mililitros de EDTA / HEPES / DPBS gelado. Repita a incubação EDTA / HEPES / DPBS uma segunda vez, balançando o tecido a 4 graus Celsius por 10 minutos a aproximadamente 60 inclinações por minuto para remover a mucosa epitelial adicional.
Faça uma trituração suave usando uma pipeta pré-umedecida de 5 mililitros. O tecido tenderá a grudar no interior da pipeta à medida que mais do epitélio é removido.
É necessária uma trituração suave neste momento, uma vez que as células gliais entéricas são mais frágeis.
Colete o tecido após a segunda incubação, despejando a mistura através de um filtro de células de náilon de 100 mícrons e descarte o fluxo. O segundo fluxo deve ser visivelmente menos turvo do que o primeiro. Repita as incubações de EDTA de 10 minutos até que a solução esteja quase límpida.
Transfira o tecido do filtro de náilon para um tubo centrífugo cônico de 15 mililitros contendo 5 mililitros da solução de recuperação celular disponível comercialmente. Em seguida, balance por 25 a 30 minutos a 4 graus Celsius. Triturar suavemente 10 vezes para dissociar as células gliais entéricas da lâmina própria, depois filtrar através de um filtro de 40 mícrons e coletar o filtrado em um tubo limpo de 50 mililitros.
Enxágue o lenço do filtro de náilon com 1 mililitro de DPBS. Descarte o tecido e transfira os 5 a 6 mililitros de filtrado para um tubo de centrífuga cônico limpo de 15 mililitros. Gire o filtrado a 2.000 vezes g em uma centrífuga de balde oscilante por cinco minutos a 4 graus Celsius.
Ressuspenda o pellet contendo células gliais em pelo menos 1 mililitro de tampão de ressuspensão, pipetando suavemente o pellet para cima e para baixo com a ponta da pipeta de 500 microlitros sem introduzir bolhas. Finalmente, coloque as células gliais entéricas adicionando 200 microlitros da suspensão celular em cada poço de uma placa de 6 poços revestida com laminina ou 100 microlitros a cada poço de uma placa de 12 poços contendo meios de crescimento glial.
Related Videos
10:51
Related Videos
33.4K Views
11:45
Related Videos
7.1K Views
09:48
Related Videos
16.8K Views
06:56
Related Videos
1.3K Views
03:48
Related Videos
1.3K Views
10:34
Related Videos
28.9K Views
09:12
Related Videos
16.9K Views
10:21
Related Videos
20.4K Views
07:53
Related Videos
14.6K Views
07:15
Related Videos
8.6K Views