$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Comece com o tecido periventricular da medula espinhal de um rato adulto, uma região rica em células-tronco neurais / progenitoras.
Transfira o tecido para uma solução contendo papaína e DNase.
A papaína, uma enzima proteolítica, cliva a matriz extracelular do tecido, enquanto a DNase degrada o DNA contaminante liberado pelas células danificadas.
Dissocie mecanicamente o tecido para obter uma suspensão unicelular.
Transfira a suspensão para um tubo e centrifugue-a. Remova o sobrenadante. Ressuspenda as células em uma solução contendo proteína albumina e um inibidor de protease.
A albumina e o inibidor desativam a papaína.
Coloque a suspensão celular sobre uma solução contendo albumina e um inibidor de protease.
A diferença de densidades entre as camadas forma um gradiente de densidade descontínuo.
Centrifugue para assentar as células intactas, enquanto os fragmentos da membrana celular permanecem na interface.
Descarte o sobrenadante. Ressuspenda as células no meio de crescimento e coloque-as em placas.
Os fatores de crescimento promovem seletivamente a proliferação das células-tronco neurais / progenitoras e sua agregação em neuroesferas tridimensionais.
Para iniciar o isolamento de células-tronco neurais de ratos, use microtesouras para picar o tecido periventricular dissecado em pedaços de 1 milímetro cúbico. Em seguida, prepare o tampão de dissociação enzimática adicionando primeiro 5 mililitros de solução salina balanceada de Earl a um frasco de papaína de um kit de dissociação de papaína.
Colocar o frasco a 37 graus Celsius durante 10 minutos, de modo a que a papaína esteja completamente dissolvida e a solução pareça límpida. Em seguida, adicione 500 microlitros de solução salina balanceada de Earl ao frasco de DNase do kit de dissociação e misture delicadamente.
Adicione 250 microlitros da solução de DNase ao frasco contendo papaína e misture delicadamente. Em seguida, adicione o tecido picado, aproximadamente 0,2 gramas, no frasco e coloque o frasco em uma plataforma basculante a 37 graus Celsius por 45 minutos a uma hora.
Após a incubação, triture a mistura com uma pipeta de 10 mililitros para dissociar quaisquer pedaços de tecido restantes para produzir uma suspensão de células turvas. Transfira a suspensão celular para um tubo cônico estéril de 15 mililitros e centrifugue a 300 g por 5 minutos em temperatura ambiente.
Durante a centrifugação, prepare a solução ovomucóide misturando 2,7 mililitros de solução salina balanceada de Earl com 300 microlitros da solução inibidora de albumina ovomucóide reconstituída em um tubo cônico de 15 mililitros. Adicione 150 microlitros da solução de DNase previamente preparada à solução ovomucóide e misture invertendo o tubo.
Rejeitar o sobrenadante das células peletizadas e ressuspender imediatamente o sedimento celular na mistura diluída de inibidores de albumina DNase. Em seguida, prepare um gradiente de densidade descontínuo adicionando 5 mililitros de solução inibidora de albumina a um tubo de 15 mililitros e, usando uma pipeta de 5 mililitros, coloque suave e lentamente a suspensão celular em cima da solução inibidora de albumina.
Centrifugue a amostra a 70 g por seis minutos à temperatura ambiente. Uma vez terminado, descarte o sobrenadante e ressuspenda o pellet celular em 1 mililitro de meio EFH de rato pré-aquecido que é preparado conforme descrito no protocolo de texto que acompanha.
Conte a densidade de células vivas com um hemocitômetro e coloque as células em um frasco de cultura T25 a uma densidade de 10 células por microlitro em EFH. Incubar os frascos a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono e deixar as culturas crescerem sem perturbações durante uma semana para evitar a agregação de esferas.