Preparação de um substrato micropadronizado para estudar fenótipos de células de Schwann

0 vistas3:38 min • July 8th, 2025

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Pegue um wafer de silício com micropadrões da geometria desejada para cultivar células em uma forma definida.

Despeje uma mistura de polímeros sobre ele e deixe-o solidificar.

Corte um carimbo quadrado do polímero.

Cubra a superfície padronizada do carimbo com uma camada de proteína, o que facilita a fixação das células.

Usando uma corrente de ar, remova as proteínas ilimitadas.

Pegue uma lamínula revestida de polímero.

Coloque o lado estampado do carimbo nele.

Pressione o carimbo para transferir o padrão. Remova o carimbo.

Transfira a lamínula para um poço contendo um surfactante para revestir as superfícies nuas. Isso aumenta a hidrofobicidade da superfície, evitando a adesão celular indesejada.

Remova o surfactante e lave com um tampão fosfato.

Adicione as células de Schwann e deixe-as se ligar ao micropadrão.

Lave com um tampão para remover as células soltas.

Adicione o meio de cultura e incube.

À medida que as células crescem ao longo da superfície, elas assumem a forma de micropadrão, permitindo um estudo do fenótipo da célula de Schwann.

Para preparar um substrato micropadronizado, coloque um wafer de silício padronizado dentro de uma placa de Petri circular de 150 milímetros de diâmetro por 15 milímetros de altura e despeje o PDMS desgaseificado no wafer. Solidifique o PDMS em um forno a 60 graus Celsius durante a noite. Deixe o PDMS esfriar até a temperatura ambiente e, em seguida, use um bisturi cirúrgico para cortar carimbos de quadrados de 30 por 30 milímetros contendo os padrões corretos, tomando cuidado para não danificar o wafer de silicone. Esterilize os carimbos PDMS e lamínulas ajustáveis mergulhando-os em etanol a 70% por 30 minutos.

Para confirmar a eficácia do micropadrão, seque a superfície dos selos PDMS usando uma corrente de ar filtrada e pipete 50 microgramas por mililitro de solução BSA para cobrir todo o lado padronizado do selo. Incube os selos com a solução BSA por 1 hora em temperatura ambiente para permitir a adsorção de proteínas e, em seguida, seque os selos ao ar livre para remover a solução BSA. Use a corrente de ar filtrada para secar a superfície das lamínulas ajustáveis.

Coloque o lado padronizado do carimbo em contato conformado com a lamínula ajustável para permitir a absorção de BSA na superfície da lamínula e pressione suavemente o carimbo contra a lamínula por 5 minutos. Examine o micropadrão usando um microscópio de fluorescência com um filtro FITC. Para imprimir áreas adesivas celulares em vez de padrões fluorescentes, substitua a proteína BSA por laminação.

Remova os selos das lamínulas e transfira-as para uma placa esterilizada de 6 poços. Adicione 2 mililitros de solução de Pluronic F127 a 0,2% em cada poço para cobrir a superfície da lamínula e incubar a placa por 1 hora em temperatura ambiente. Aspire a solução F127 e lave as lamínulas 5 vezes com PBS, uma vez com o meio de cultura de células, depois semeie as células de Schwann a uma densidade de semeadura de 1.000 células por centímetro quadrado. 45 minutos após a semeadura celular, remova o meio de cultura celular e lave as lamínulas duas vezes com PBS para evitar que várias células adiram ao mesmo padrão. Manter as células no ambiente de cultura de células desejado durante 48 horas antes da quantificação.

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Última atualização: 22 agosto 2026