Diferenciação de células progenitoras óticas em células epiteliais sensoriais seguidas de imunomarcação

0 vistas3:55 min • July 8th, 2025

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A cultura imortalizou células progenitoras óticas multipotentes, ou iMOP, em mídia.

Os fatores de crescimento no meio facilitam a proliferação de iMOP e a formação de colônias, criando otosferas.

Colete as otosferas e deixe-as assentar por gravidade.

Remova a mídia e adicione mídia de diferenciação sem fatores de crescimento. Placa nas otosferas.

A ausência de fatores de crescimento inicia a diferenciação de iMOP em células epiteliais sensoriais.

Colete as otosferas diferenciadas e deixe-as assentar.

Remova o meio e adicione um fixador para preservar a morfologia celular.

Em seguida, adicione um detergente para permeabilizar as membranas celulares e nucleares.

Adicione um tampão de bloqueio para evitar a ligação de anticorpos não específicos.

Introduzir anticorpos primários direcionados a um marcador de diferenciação específico.

Adicione anticorpos secundários conjugados com fluoróforo direcionados aos anticorpos primários, faloidina marcada com fluorescência para corar a actina e um corante de ligação ao DNA para corar os núcleos.

Monte as otosferas.

Usando microscopia de fluorescência, visualize a coloração para confirmar a diferenciação iMOP.

Três dias após o reforço, use a sedimentação por gravidade para coletar as otosferas, conforme mostrado anteriormente. Prossiga para aspirar o sobrenadante e ressuspenda suavemente as células em 2 mililitros de meio de diferenciação epitelial sensorial. Em seguida, use uma pipeta de calibre grande de 10 mililitros para transferir as otosferas para uma nova placa de 60 milímetros. Diferencie as otosferas por 10 dias, adicionando 2 mililitros de meio de diferenciação fresco à cultura em dias alternados.

Em seguida, colha as otosferas novamente por gravidade, sedimentação e aspire o meio gasto. Em seguida, fixe as otosferas em paraformaldeído a 4% em PBS 1X por 15 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, remova a solução de formaldeído e lave as células em 1X PBS contendo 0,1% de Triton X-100. Prossiga bloqueando as otosferas em 1X PBS, suplementado com 10% de soro de cabra e 0,1% de Triton X-100.

Após uma hora, substitua o tampão de bloqueio por um contendo a diluição apropriada do anticorpo Cdkn1b ou Cdh1. Em seguida, incube as células no anticorpo primário durante a noite a 4 graus Celsius e, no dia seguinte, continue a imunocoloração usando anticorpos secundários marcados com fluorescência, faloidina e Hoechst, conforme descrito em outro lugar.

Para se preparar para a imagem, coloque o meio de montagem em uma lâmina de vidro e, em seguida, introduza as otosferas coradas no meio. Em seguida, coloque uma lamínula em cima da amostra. Depois de deixar o meio de montagem secar durante a noite a 4 graus Celsius, coloque a lâmina no palco de um microscópio invertido equipado com uma câmera CCD de 16 bits. Usando a objetiva de ar 20X 0,75, adquira imagens de epifluorescência coletando dados dos canais azul, verde, vermelho e infravermelho.

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Última atualização: 22 agosto 2026