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Neurociência
0 vistas • 3:37 min • July 8th, 2025
Comece com uma fatia de cérebro cortical pré-frontal segura em um líquido cefalorraquidiano artificial, ou aCSF, na câmara de registro de uma configuração de eletrofisiologia.
Este aCSF contém um bloqueador dos canais de íons de sódio, que inibe os canais de sódio nos neurônios.
Posicione uma micropipeta cheia de ácido gama-aminobutírico, ou GABA, acima de um neurônio pós-sináptico.
Coloque uma micropipeta de gravação cheia de solução iônica com um eletrodo próximo ao mesmo neurônio.
Aplique sucção fraca para criar uma vedação firme com um pequeno pedaço da membrana neuronal.
Em seguida, aplique uma forte sucção para romper a membrana remendada, permitindo o acesso ao interior do neurônio.
Entregue o GABA, um neurotransmissor inibitório, que se liga a um canal de cloreto dependente de ligante nos neurônios pós-sinápticos.
Isso abre o canal e permite que os íons cloreto entrem nos neurônios, gerando uma corrente pós-sináptica inibitória.
Em uma tensão constante, registre a corrente pós-sináptica. Um aumento na corrente pós-sináptica inibitória reflete o papel do GABA na inibição da atividade neuronal.
Transfira uma fatia de cérebro para a câmara de gravação usando uma pipeta Pasteur com sua ponta fina cortada para caber no tamanho da fatia. Em seguida, coloque uma âncora de fatia de platina acima da fatia para segurá-la na plataforma. Depois disso, encha as micropipetas de registro com solução interna e encha as micropipetas de sopro com GABA a 10 micromolares, 50 micromolares e 100 micromolares ou aCSF como controle do veículo.
Para evitar o bloqueio com detritos, aplique uma leve pressão positiva usando uma seringa de um mililitro antes de imergir o eletrodo de registro no aCSF. Sob um microscópio, posicione o eletrodo de gravação e a micropipeta de sopro de forma que as pontas apareçam no centro do monitor. Em seguida, identifique um neurônio alvo. Ajuste o foco do microscópio enquanto abaixa gradualmente a micropipeta de sopro e coloque-a acima do neurônio de gravação em um ângulo de 45 graus.
Mantenha a distância entre a ponta da micropipeta de sopro e o neurônio alvo na faixa de 20 a 40 micrômetros. Lenta e cuidadosamente, aproxime-se do neurônio com o eletrodo de registro e, em seguida, libere a pressão positiva. Aplique uma sucção fraca e breve através da tubulação conectada ao suporte do eletrodo para criar uma vedação de gigaohm. Mantenha a tensão em zero milivolts.
Após a formação da vedação gigaohm, compense a capacitância rápida e lenta manualmente ou automaticamente. Em seguida, aplique uma sucção breve e forte através da tubulação para entrar no modo de célula inteira. Em seguida, registre as correntes IPSC evocadas no modo de pinça de tensão.
Forneça inalações de GABA únicas ou emparelhadas através da micropipeta de sopro controlada por um gerador mestre de oito voltagens. Altere a duração do sopro para obter os melhores resultados das correntes IPSC evocadas e meça as correntes IPSC evocadas.
Este artigo detalha um método para registrar correntes pós-sinápticas inibitórias (IPSCs) em neurônios utilizando técnicas eletrofisiológicas. O procedimento envolve a aplicação de GABA em neurônios pós-sinápticos e a medição das correntes resultantes para compreender a inibição neuronal.
Este método permite a medição precisa de correntes pós-sinápticas inibitórias (IPSCs) em neurônios, fornecendo uma leitura quantitativa da sinalização GABAérgica. Ele apoia a validação de alvos ao confirmar a atividade funcional do receptor e a modulação da via em um sistema relevante para a doença. A abordagem aumenta a confiança preditiva em modelos pré-clínicos ao vincular os efeitos do composto a saídas eletrofisiológicas mensuráveis.
O método se insere nos fluxos de trabalho iniciais de descoberta, nos quais a validação funcional de alvos canais iônicos precede a otimização do composto inicial.
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Última atualização: 29 agosto 2026