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Comece com uma configuração de eletrofisiologia contendo uma fatia de prosencéfalo de camundongo submersa em um aCSF oxigenado.
O aCSF contém um bloqueador de canais iônicos que inibe seletivamente os canais de íons de sódio, impedindo a excitação neuronal induzida por sódio.
Os neurônios corticais expressam proteínas sensoras fluorescentes de detecção de glutamato.
Localize um único botão axonal do neurônio pré-sináptico capaz de liberar glutamato, um neurotransmissor excitatório, na sinapse, uma junção onde ele se conecta com os neurônios pós-sinápticos.
Posicione um eletrodo de estimulação próximo a este botão e aplique correntes despolarizantes.
Isso excita o neurônio pré-sináptico, causando um influxo de íons de cálcio e facilitando a liberação de glutamato.
Inicie o registro da intensidade de fluorescência ao redor do botão selecionado.
O glutamato liberado interage com as proteínas sensoras e receptores nos neurônios pós-sinápticos.
Enquanto isso, ilumine a área selecionada com luz laser, fazendo com que as proteínas do sensor ligadas ao glutamato fiquem fluorescentes; uma intensidade de fluorescência crescente indica liberação de glutamato.
Com o tempo, o glutamato se dissocia das proteínas do sensor e entra no astrócito, causando uma diminuição na intensidade da fluorescência, indicando a depuração do glutamato.
Para visualizar a liberação e a depuração do glutamato usando as unidades XY do microscópio, coloque o botão positivo do sensor de glutamato testado próximo ao centro do campo de visualização. Após interromper a aquisição, clique na imagem com o botão esquerdo do mouse para determinar a posição XY do centro do botão em repouso. As coordenadas XY do cursor definido serão exibidas.
Usando os dados de calibração, calcule as coordenadas do local onde o feixe de laser deve ser enviado para a excitação da fluorescência do sensor de glutamato, usando as fórmulas indicadas. Para criar uma sequência de um ponto no software de controle do laser, selecione o ponto na caixa Adicionar à sequência na página Sequência do software de controle do laser e defina as execuções e o atraso de execução como 0 e a sequência a ser executada no TLL. Em seguida, clique em Iniciar sequência.
No software de controle da câmera, selecione os parâmetros de imagem apropriados e selecione Iniciar externo para o modo de disparo. Clique em Receber sinal no software de controle da câmera. Em seguida, inicie o protocolo experimental estabelecido para o dispositivo de disparo e implemente o teste do protocolo experimental com o cronograma apropriado para que a câmera adquira 400 quadros com uma frequência de 2,48 kilohertz durante 1 teste com uma frequência de repetição de 0,1 hertz ou inferior.
Para identificar sinapses patológicas, ative as rotinas de elevação e calcule a média e o desvio padrão da intensidade de fluorescência para a região de interesse selecionada em repouso. Determine e encaixote a área ocupada por pixels com uma intensidade de fluorescência em repouso maior que a média mais 3 desvios padrão e determine um diâmetro virtual em mícrons, assumindo uma forma circular da área de super limiar.
Representar graficamente a intensidade de fluorescência em relação ao tempo como a diferença entre o valor real da intensidade de fluorescência e o valor da intensidade de fluorescência em repouso dividido pelo valor da intensidade de fluorescência em repouso. Determinar a amplitude de pico da resposta de fluorescência. Execute um ajuste monoexponencial para o decaimento do pico da resposta de fluorescência e determine a constante de tempo de decaimento, tau d.
Para estimar a amplitude máxima em uma determinada sinapse, selecione o pixel com a maior mudança na intensidade de fluorescência, que é o melhor indicador da carga de glutamato apresentada à maquinaria de depuração da sinapse.