JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociência
0 vistas • 4:49 min • July 8th, 2025
Comece com um camundongo anestesiado e geneticamente alterado com a cabeça presa em um adaptador de sustentação da cabeça.
O cérebro do camundongo expressa uma proteína fluorescente que permite a detecção de atividades neurais.
Faça a barba e esterilize sequencialmente o couro cabeludo antes de cortá-lo.
Remova o tecido conjuntivo para expor o crânio.
Marque as áreas-alvo e aplique uma camada de cola.
Use uma microbroca para afinar o crânio na área marcada.
Remova o pedaço do crânio para expor o cérebro.
Aplique líquido cefalorraquidiano artificial para manter o cérebro úmido.
Instale uma janela óptica na área e sele-a com cola, que fornece uma base para a fixação do cimento.
Aplique cimento dental preto para bloquear a luz.
Repita o procedimento do outro lado do crânio.
Permita que o animal se recupere.
Para obter imagens da atividade neural, coloque o mouse anestesiado seguro sob o microscópio e adquira imagens.
Confirme a falta de resposta ao beliscão do dedo do pé em um camundongo Thy1-GCaMP6s anestesiado de 20 a 25 gramas, 1 e 1/2 a 2 e 1/2 mês de idade e aplique pomada nos olhos do animal. Coloque o mouse em uma almofada de aquecimento coberta com uma cortina estéril e use um adaptador de fixação da cabeça para os mouses estabilizarem a cabeça. Raspe a maior parte do couro cabeludo com uma navalha de dois gumes e limpe a pele exposta com almofadas de preparação de álcool estéreis sequenciais e esfoliantes com solução de iodopovidona. Em seguida, use uma tesoura para fazer um corte retangular de 2 por 3 milímetros no couro cabeludo.
Usando um cotonete, empurre a pele para o lado para criar uma área de exposição de mais de 3 milímetros de diâmetro e use uma lâmina microcirúrgica romba para remover suavemente o tecido conjuntivo preso ao crânio. Com uma broca odontológica, marque suavemente um círculo de 3 milímetros de diâmetro ao redor da área S1. Depois de fazer um círculo semelhante no lado esquerdo do crânio, aplique uma fina camada de supercola de cianoacrilato em ambos os lados do osso para fornecer uma base para a aplicação de cimento dentário.
Sob um microscópio de dissecação, use uma microbroca de alta velocidade para afinar um sulco circular no lado direito do crânio ao redor da área S1 para criar uma borda lisa, aspirando os detritos ósseos com vácuo, conforme necessário. Depois de atingir uma profundidade óssea de aproximadamente 2/3, afinar lenta e cuidadosamente o terço restante do osso até que um retalho ósseo circular seja completamente liberado do crânio circundante. Use uma pinça # 5/45 para remover lenta e cuidadosamente o pedaço circular de osso para expor a dura-máter, tomando cuidado para evitar danificar os vasos piais.
Depois de remover um retalho ósseo do lado esquerdo do crânio da mesma maneira, enxágue a janela óptica do lado direito do crânio com solução salina estéril e verifique se há imperfeições em um microscópio estereoscópico. Instale a janela óptica sobre a região da craniotomia com a parte superior da janela apoiada no crânio e a parte inferior dentro da abertura craniotomizada, apoiada na dura-máter na presença de líquido cefalorraquidiano. Use a super cola de cianoacrilato para selar a parte superior da borda da janela óptica até o crânio.
Quando a cola secar, aplique cimento dental preto na borda do vidro, no resto do lado direito do crânio exposto e nas margens da ferida para bloquear a luz. Em seguida, instale a janela óptica esquerda e permita que o animal se recupere com monitoramento até a decúbito total. 7 a 10 dias após o procedimento, colocar o animal anestesiado no adaptador de fixação da cabeça em uma almofada de aquecimento, sob um microscópio de dois fótons, cuidando para que a janela óptica e o lado direito do crânio estejam orientados perpendicularmente ao eixo óptico do microscópio.
Adquira uma imagem inicial do mapa de referência da janela craniana usando iluminação de campo claro com ampliação de 4 vezes. Depois de adquirir várias imagens da mesma região de interesse, imagine a dinâmica do cálcio dentro da área S1 no hemisfério esquerdo e calcule as mudanças na fluorescência de cada região de interesse em ambos os lados do crânio.
Este artigo descreve um protocolo detalhado para a obtenção de imagens da atividade neural em camundongos geneticamente modificados utilizando um microscópio de dois fótons. O procedimento envolve a criação de uma janela craniana para permitir a observação direta da atividade cerebral, garantindo ao mesmo tempo a segurança e o bem-estar do animal.
O estabelecimento de imagens confiáveis de atividade neural em modelos transgênicos apoia a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas na descoberta de fármacos para o sistema nervoso central. A técnica de janela craniana permite o monitoramento longitudinal e quantitativo da dinâmica neuronal, aumentando a confiança preditiva em hipóteses terapêuticas de estágios iniciais. Essa abordagem reduz a incerteza biológica ao fornecer leituras diretas e transponíveis do engajamento do alvo e da modulação da via em sistemas relevantes para a doença.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação inicial do alvo até a identificação de compostos líderes e os testes de eficácia pré-clínica, apoiado por sua capacidade de realizar medições quantitativas repetidas da atividade neural.
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Vídeos relacionados
0 Visualizações
Última atualização: 29 agosto 2026