Imuno-histoquímica de seções de tecido cerebral de camundongos para direcionar neurônios dopaminérgicos

Pegue uma lâmina revestida de polímero com seções de tecido cerebral de camundongo contendo neurônios dopaminérgicos que expressam tirosina hidroxilase, uma enzima chave para a síntese de dopamina.
Contorne as seções com uma caneta hidrofóbica para garantir uma coloração uniforme.
Fixe o tecido em uma solução de acetona-metanol para preservar a morfologia do tecido.
Enxágue com tampão contendo detergente para permeabilizar as membranas celulares.
Incube com anticorpos primários direcionados à tirosina hidroxilase nos neurônios dopaminérgicos e, em seguida, lave para remover os anticorpos não ligados.
Adicione anticorpos secundários marcados com corante fluorescente, corante nuclear e inibidores de RNase.
Durante a incubação, os anticorpos secundários se ligam aos anticorpos primários, os corantes nucleares marcam o núcleo e os inibidores de RNase inativam as RNases.
Enxágue com tampão. Em seguida, desidrate as seções de tecido em concentrações crescentes de etanol.
Incube em xileno para limpar o tecido.
As seções de tecido processadas estão agora prontas para microdissecção por captura a laser, que permite a visualização precisa e a dissecção dos neurônios alvo da dopamina.

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p style='background-color:#ffffff;line-height:1.38;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>Para realizar a imuno-histoquímica, use uma caneta hidrofóbica para delinear o tecido e deixá-lo secar. Em seguida, em uma solução de acetona e metanol 1 para 1, fixe o tecido a 20 graus Celsius negativos por 10 minutos. Depois de retirar o tecido do freezer, cubra as seções com 100 a 200 microlitros de anticorpo tirosina hidroxilase em PBS e triton a 1% por 10 minutos.

Em seguida, use PBS com 1% de triton para enxaguar as lâminas antes de cobrir as seções com 100 a 200 microlitros de IgG anticoelho de cabra, rotulado com Alexa Fluor 488. Incube por cinco minutos e, em seguida, use PBS para enxaguar as lâminas duas vezes. Em seguida, desidrate as amostras em uma série graduada de etanol livre de RNase por 30 segundos cada, conforme demonstrado anteriormente neste vídeo. Incubar em xileno, durante um minuto e uma segunda lavagem, durante cinco minutos. Remova as lâminas imediatamente antes de usar para LCM e deixe-as secar ao ar.