Coloração por imunofluorescência de tecido fibrovascular doente derivado de paciente embebido em gel

0 vistas4:31 min • April 28th, 2025

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Tome fibrina reidratada embebida em gel, fixada e permeabilizada com tecido fibrovascular doente derivado do paciente. Este tecido contém estruturas neovasculares irregulares com células endoteliais e pericitos.

Trate o tecido com uma solução de bloqueio para evitar a ligação de anticorpos não específicos.

Incubar com anticorpos primários direcionados a proteínas de superfície em células endoteliais e pericitos.

Enxágue com tampão para remover os anticorpos não ligados e, em seguida, incube no tampão.

Após a lavagem do tampão, incube com anticorpos secundários conjugados com corante fluorescente para se ligar aos anticorpos primários.

Lave com tampão para remover o excesso de anticorpos e incube em tampão.

Após a lavagem do tampão, adicione um corante nuclear para corar os núcleos das células. Enxágüe com tampão e água deionizada para remover o corante não ligado.

Transfira o tecido para uma lâmina de microscópio.

Aplique a mídia de montagem e sele com uma lamínula contendo a mídia de montagem de endurecimento rápido.

Após a secagem ao ar, armazene a lâmina em baixa temperatura. Em seguida, faça a imagem do tecido sob um microscópio de epifluorescência para visualizar o arranjo espacial das células endoteliais e pericitos dentro das estruturas neovasculares.

Incline a placa em um suporte e incube as gotículas em 500 microlitros de solução de bloqueio por duas horas em temperatura ambiente. Preparar a mistura de anticorpos primários de acordo com o protocolo de texto.

Em seguida, use uma espátula de borda arredondada para transferir as gotículas para uma placa de fundo redondo de 96 poços. Incube as gotículas em 30 microlitros de mistura de anticorpos primários por gota durante a noite a 4 graus Celsius. No dia seguinte, transfira as gotículas para uma placa de 12 poços contendo 2 mililitros de solução de lavagem por poço. Enxágue as gotículas com três lavagens de 5 minutos. Em seguida, lave as gotículas com nove lavagens de 30 minutos.

No dia seguinte, enxágue as gotas três vezes com PBS. Preparar a mistura de anticorpos secundários conjugados com fluoróforo apropriada de acordo com o protocolo de texto. Transfira as gotículas para uma placa de fundo redondo de 96 poços, conforme demonstrado anteriormente. E incube a placa com 30 microlitros de mistura de anticorpos secundários por quatro horas em temperatura ambiente, protegida da luz.

Após 4 horas, transfira as gotículas para uma placa de 12 poços contendo 2 mililitros de solução de lavagem por poço. Primeiro, enxágue as gotículas com três lavagens de 5 minutos. Em seguida, lave as gotículas com quatro lavagens de 30 minutos.

No dia seguinte, enxágue as gotículas cinco vezes com solução de lavagem por 30 minutos e três vezes com PBS por 30 minutos. No dia seguinte, transfira as gotículas para uma placa de fundo redondo de 96 poços, conforme demonstrado anteriormente. Contra-corar as gotículas com a coloração nuclear de Hoechst durante 30 minutos à temperatura ambiente. Transfira as gotículas para uma placa de 12 poços contendo 2 mililitros de PBS por poço. E enxágue três vezes com PBS.

Em seguida, aplique uma camada estreita de meio de montagem de endurecimento rápido ao longo das bordas de uma lamínula quadrada. E deixe secar por um minuto. Em seguida, enxágue uma gota mergulhando-a em um poço de uma placa de 12 poços contendo água deionizada. E transfira a gota para uma lâmina de microscópio.

Em seguida, dispense 15 microlitros de meio de montagem anti-desbotamento não endurecedor na gota. Posicione suavemente a lamínula sobre a gota com o meio de montagem voltado para a lâmina. E deixe-o assentar.

Deixe as lâminas secarem por duas horas em temperatura ambiente e guarde-as a 4 graus Celsius durante a noite. Finalmente, crie imagens das lâminas com um microscópio de epifluorescência vertical equipado com uma função de seccionamento óptico na objetiva de 20x ou 40x.

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Última atualização: 22 agosto 2026