Imagem microscópica de neurônios em uma seção do cérebro de camundongo usando coloração metálica de Golgi-Cox

0 vistas2:37 min • April 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Comece com uma seção espessa do cérebro que foi corada com solução de Golgi-Cox para escurecer seletivamente os neurônios e contracorada com violeta de cresil para destacar a região do cérebro.

Coloque-os em uma lâmina que foi pré-tratada com um agente de limpeza para aumentar a transparência do tecido.

Coloque a lâmina na platina do microscópio, aplique óleo de silicone e abaixe a lente objetiva até que ela entre em contato com o óleo.

O óleo de silicone corresponde ao índice de refração da lente objetiva e da lâmina, permitindo imagens detalhadas.

Foca na amostra e, em seguida, ajusta a exposição e o balanço de brancos da câmara para obter a melhor qualidade de imagem.

Foca na camada superior para definir o limite superior e, em seguida, na camada inferior para definir o limite inferior.

Ajuste o espaçamento entre imagens com sobreposição suficiente para captar detalhes de projeções neuronais.

Repita a imagem em locais diferentes para capturar áreas de interesse e, em seguida, sobreponha essas imagens para criar uma representação tridimensional dos neurônios.

Para capturar pilhas de imagens de alta resolução da área que contém o neurônio de interesse, primeiro selecione uma objetiva de imersão em óleo de silicone de 30x 1,05 NA no microscópio. Em seguida, aplique 3 a 4 gotas de óleo de imersão de silicone na lâmina. Coloque a objetiva sobre a corrediça, garantindo o contato entre a objetiva e o óleo. Foque a imagem e ajuste as definições da câmara, incluindo a exposição e o equilíbrio de brancos no software de imagem. Em seguida, defina os limites superior e inferior da pilha de imagens focalizando a parte superior da seção e selecionando Definir, ao lado da parte superior da pilha, na janela de aquisição de imagem.

Em seguida, concentre-se na parte inferior da seção e selecione Definir ao lado da parte inferior da pilha. Defina a distância do passo para 1 mícron inserindo 1 mícron ao lado da distância entre as imagens dentro da janela de aquisição de imagem. Por fim, capture a pilha de imagens selecionando adquirir pilha de imagens na janela de aquisição de imagens. Repita as etapas anteriores para capturar toda a área de interesse, certificando-se de que todas as pilhas de imagens se sobreponham em pelo menos 10% nos eixos x e y.

09:08

Transplantes faciais em Xenopus laevis Os embriões

Vídeos relacionados

0 Visualizações

09:44

Avaliação da complexidade dendrítica do hipocampo em ratos idosos usando o método de Golgi-Cox

Vídeos relacionados

0 Visualizações

13:08

Localização de quantitativa de uma proteína de Golgi por imagem sua massa centro de fluorescência

Vídeos relacionados

0 Visualizações

09:21

Labeling DiOLISTIC de Neurônios de roedores e não-humanos fatias do cérebro do primata

Vídeos relacionados

0 Visualizações

01:27

Análise Microscópica Eletrônica de Dano Axonal no Nervo Óptico de Camundongos com Lesão Cerebral

Vídeos relacionados

0 Visualizações

02:36

Imunomarcação de interneurônios em uma secção hipocampal de rato

Vídeos relacionados

0 Visualizações

02:58

Coloração imuno-histoquímica de fibras nervosas no núcleo basal de Meyner do cérebro de camundongo

Vídeos relacionados

0 Visualizações

03:25

Imagem de mitocôndrias neuronais usando um microscópio eletrônico de varredura serial de face de bloco

Vídeos relacionados

0 Visualizações

08:43

Visualizar os Efeitos de uma experiência precoce positiva, Tátil Estimulação, em dendríticas Morfologia e Synaptic conectividade com Golgi-Cox Coloração

Vídeos relacionados

0 Visualizações

07:30

Primer para imunohistoquímica em tecido criosseccionada cérebro de um rato: Exemplo de coloração para Microglia e Neurônios

Vídeos relacionados

0 Visualizações

Última atualização: 1 agosto 2026