Imagem ao vivo da atividade ciliar de células ependimárias em uma seção do cérebro de camundongo

0 vistas2:56 min • May 29th, 2025

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Pegue uma seção sagital do cérebro de um camundongo para expor os ventrículos, que são cavidades cheias de líquido cefalorraquidiano, ou LCR.

As células ependimárias que revestem os ventrículos possuem cílios móveis que impulsionam o LCR para facilitar sua circulação.

Coloque a seção em um prato com fundo de vidro contendo um meio rico em nutrientes para sustentar a atividade ciliar.

Transfira o prato para a câmara climatizada de um microscópio de contraste de interferência diferencial, ou DIC, para manter a viabilidade celular durante a imagem.

A microscopia DIC emprega um prisma para dividir a luz polarizada, direcionando-a através da amostra ao longo de diferentes caminhos.

Variações no índice de refração em todo o corpo de prova introduzem diferenças de fase entre os feixes.

Um segundo prisma recombina os feixes, criando interferência que produz uma imagem de alto contraste com efeito tridimensional, aumentando a visibilidade de estruturas finas.

Localize células ependimárias funcionais com cílios móveis observando o movimento da bolha gerado por seu batimento.

Usando imagens DIC de alto contraste, registre os cílios para quantificar sua frequência de batimento.

Para obter imagens das seções, coloque as fatias de cérebro em placas de cultura com fundo de vidro de 30 milímetros contendo 1 mililitro de meio com alto teor de glicose e ajuste o ambiente da câmara do microscópio fechada para 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono, usando uma lente objetiva de imersão em óleo de 60x.

Em seguida, concentre-se nas células com luz transmitida DIC regular. Em seguida, seguindo a direção do movimento da bolha DMEM, como um guia para a localização dos cílios ependimários móveis, use o filtro DIC para selecionar uma área contendo células saudáveis com cílios móveis no ventrículo lateral do cérebro. Após a identificação dos cílios ependimários, ajuste a luz e foque para obter uma imagem satisfatória.

Em seguida, defina os parâmetros de imagem ao vivo no software de imagem. Por exemplo, aqui imagens de 24 bits estão sendo adquiridas, com o binning da câmera definido como 1 vezes 1, combinado com a objetiva de 60x e um tempo de exposição de 5 a 10 milissegundos.

Abra a abertura do microscópio para o nível ideal por um tempo mínimo de exposição e colete as imagens DIC. Observe o fluxo de imagens ao vivo para a câmera para fornecer aquisição de imagem rápida e imediata sem demora. A velocidade de batimento dos cílios pode então ser calculada com base na exigência de tempos mínimos de exposição para obter um contraste de imagem suficiente.

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Última atualização: 1 agosto 2026