JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociência
0 vistas • 3:18 min • June 17th, 2025
Pegue os neurônios corticais primários de roedores cultivados em um prato revestido com fundo de vidro contendo mídia.
Essas células expressam uma proteína associada à ELA geneticamente codificada e um biossensor de cálcio.
Substitua a mídia por um tampão com baixo teor de cloreto de potássio.
Incubar para manter a atividade neuronal em repouso e os níveis basais de cálcio.
Monte o prato em um microscópio confocal stage e posicione o tubo de perfusão.
Usando iluminação de campo claro, concentre-se nos neurônios e, em seguida, mude para imagens de fluorescência.
Usando o laser do microscópio, excite o biossensor e registre a emissão de fluorescência para determinar os níveis basais de cálcio intracelular.
Em seguida, perfunda o prato com tampão de cloreto de potássio com alto teor de potássio.
A alta concentração de potássio despolariza os neurônios, abrindo canais de cálcio dependentes de voltagem nos terminais pré-sinápticos. Isso permite o influxo de cálcio, que inicia a atividade sináptica neuronal.
O aumento do cálcio intracelular se liga ao biossensor, causando uma mudança conformacional que aumenta a fluorescência.
Continue registrando a fluorescência para medir as mudanças em tempo real nos níveis de cálcio intracelular, revelando a atividade sináptica neuronal.
48 horas após a transfecção com GCaMP6m, incubar os neurônios corticais primários de roedores com baixo teor de cloreto de potássio ACSF por 15 minutos. Em seguida, monte o prato na plataforma de imagem e visualize a fluorescência GCaMP6m usando um filtro FITC e uma objetiva de 20 ou 40 vezes. Depois de selecionar o campo de imagem e ativar o foco perfeito, tire uma única imagem estática com FITC de campo claro e canais marcadores de fluorescência para marcar os limites neuronais.
Em seguida, inicie "Executar agora" no software de aquisição e realize a gravação basal por três a cinco minutos. Em seguida, perfunda ACSF contendo 50 milimolares de cloreto de potássio para os neurônios, conforme demonstrado anteriormente, e registre por cinco minutos. Quando a aquisição da imagem parar, salve o experimento e prossiga para a análise dos dados usando o software confocal.
Para análise de imagem, abra as imagens de lapso de tempo e o software confocal e alinhe as imagens clicando em Imagem, seguido de Processamento, seguido de Alinhar documento atual. Em seguida, selecione Alinhar ao primeiro quadro. Selecione regiões de interesse ao longo dos neuritos usando a ferramenta de seleção de ROI e também marque um ROI representando a intensidade de fluorescência de fundo. Em seguida, inicie a função de medição no painel de medição de tempo para medir a fluorescência bruta ao longo do tempo para os ROIs selecionados. Após a medição, exporte as intensidades de fluorescência brutas para o software de planilha.
Este estudo investiga a medição em tempo real dos níveis intracelulares de cálcio em neurônios corticais primários de roedores utilizando um biossensor genéticamente codificado para cálcio. A metodologia envolve técnicas de imagem para avaliar a atividade sináptica neuronal por meio de alterações na fluorescência.
A imagem de cálcio em tempo real em neurônios com mutação associada à ELA permite a eliminação mecanicista de hipóteses de disfunção sináptica em modelos de doenças neurodegenerativas. Esta abordagem apoia a validação de alvos ao associar perturbações genéticas a respostas funcionais sinápticas, melhorando a confiança preditiva no estágio inicial de descoberta. O método fornece leituras quantitativas e replicáveis que orientam decisões de avançar ou não avançar nos processos de priorização de alvos.
O método se insere na continuidade entre descoberta e pré-clínico ao fornecer ensaios sinápticos funcionais que acompanham o engajamento do alvo e antecedem a triagem fenotípica em programas de doenças neurodegenerativas.
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Última atualização: 22 agosto 2026