Name: Geração Teratoma na Cápsula do Testículo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 24 s
Description: Aprenda o ensaio de teratoma para avaliar a pluripotência de células-tronco pluripotentes humanas em camundongos imunodeficientes. Este método demonstra diferenciação em três camadas germinativas.

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Este trabalho foi financiado por doações CIRM # TR-1250, RT1-01108, e CL1-00502.

Nota: Todos os procedimentos com animais devem ser aprovados pelo IACUC ou equivalente. Todo o equipamento cirúrgico deve ser esterilizado antes da cirurgia. Luvas estéreis, cortinas e gaze deve ser usada. 1. Preparação antes da cirurgia <ol><li> Obtenha 6 semanas de idade Mus musculus CbySmn.CB17-Prkdc SCID / J camundongos machos ou estirpe imunocomprometidos outro rato. </li><li> Esterilizar todos os instrumentos cirúrgicos, luvas e gaze. </li><li> Dissociar hPSCs ser injetados com accutase. </li><li> Contar as células e ressuspender 1.000.000 células por 20-30 uL em Matrigel diluído 1:1 em DMEM/F-12. Manter as células no gelo até terminar. </li><li> Note-se que muitas vezes é útil para fazer uma corrida através do experimento, onde Trypan Blue é injectado. Isso vai ajudar a identificar problemas potenciais antes que as células são desperdiçados. </li><li> No biotério, anestesiar o mouse de acordo com procedimentos aceitos de sua instituição. Em nossos experimentos, utilizamos uma AnesthESIA máquina com isoflurano. Os camundongos foram inicialmente colocadas em uma câmara de indução com o oxigênio 1l/min e 3-4% de isoflurano. Uma vez anestesiados, com um cone de nariz 1l/min oxigénio e 2-3% de isoflurano foi usado. </li><li> Raspar o abdómen com tesouras, e limpar a parede anterior do abdómen do rato, a partir do centro do abdómen e de trabalho dos ponteiros do relógio para o exterior. Primeiro uso da solução de iodo-povidona, em seguida, lavar com etanol 70%. Repita 3 vezes, mudando esfregaços de cada vez. Transferir o animal a uma almofada de aquecimento para manter o animal quente no interior de uma cultura de tecidos ou capuz de dissecação. </li><li> Fazer uma incisão 1 centímetro longitudinal através da pele e do peritoneu com tesouras cirúrgicas estéreis imediatamente abaixo do nível da articulação da anca. </li><li> Enquanto mantém o peritônio com uma pinça, descem em direção ao quadril direito com outro forcept estéril e puxe o tecido adiposo branco, juntamente com testículos conectados. </li><li> Coloque os testículos em gaze estéril. </li><li> Encha uma tuberculina ou Hamilton (1cc) seringa wiº os hPSCs a ser injetado. Note que é uma boa idéia de incluir um controle de linha hPSC que você sabe que é pluripotente, como WA09 (também conhecido como H9). Desta forma, você tem um controle positivo que você pode usar para determinar se a injecção ou a cirurgia foi falha. </li><li> Lentamente injectar as hPSCs (20-30 uL) para o centro da cápsula testículo longe de qualquer vasos sanguíneos principais, parando se a cápsula testicular começa a inchar. </li><li> Remover a agulha lentamente para evitar o refluxo das células. </li><li> Usando uma pinça, transferir os testículos e costas tecido adiposo à sua posição original no abdómen. </li><li> Fechar o peritônio com 2 ou 3 suturas reabsorvíveis e feche a pele com autoclips. </li><li> O mouse deve ser mantido quente até ele se recupera e dado algum tipo de analgésico (ver o que é aceito em seu viveiro) após a cirurgia duas vezes ao dia por 1-2 dias. Note-se que nem o anestésico nem o analgésico com interferir com o desenvolvimento do tumor. </li><li> Monitorar ªanimais e para o crescimento do tumor por 6-12 semanas. Muito raramente, os tumores podem crescer a 5 mm de tamanho antes de 6 semanas após a injecção, assim, é importante para monitorar os animais. Se isso acontecer, os animais devem ser sacrificados e os tumores tratados e analisados ​​como de costume. </li><li> Uma vez que o tumor é palpável e atinge aproximadamente 5 mm de tamanho, anestesiar o rato e sacrificá-lo de acordo com procedimentos aceitos protocolos animais. </li><li> Remover tumor e documento nesse sentido - tamanho medida, fotografia, pesar. </li><li> Corte tumor em pedaços pequenos e fixar em solução de paraformaldeído 4%. Armazenar em paraformaldeído a 4% até amostras são enviadas para um patologista para seccionamento de coloração, e análise. </li></ol> 2. Resultados representativos: Quando este protocolo é feita como descrito ea linha de células injectadas é pluripotentes, uma palpável, visualmente óbvia do tumor, deverá formar dentro de 12 semanas, no máximo. Para estabelecidas linhas hPSC como WA09, que se costuma vertumores em 6 semanas. Para as linhas de IPSC, não é incomum para ver tumores dentro de 8-10 semanas. É muito importante para injectar ratinhos com uma linha que é conhecido por ser pluripotentes, como um controlo positivo, a fim de ter a certeza de que o procedimento foi realizado correctamente. Tumores costumam olhar muito heterogênea e têm muitos cistos em anexo (Figura 1). Análise das amostras de tumor por um patologista deveria mostrar tecidos diferenciados a partir de todas as três camadas germinais (Figura 2). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3177/3177fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="A Figura 1"> Figura 1. Teratoma hPSC típica derivado na cápsula testículo. Seguindo o protocolo descrito, um milhão de WA09 células foram injectadas na cápsula testículos de um rato imune comprometida. Seis semanas mais tarde um teratoma foi observada. A) Teratoma puxado do rato. B) Feche acima do retrato do teratoma. Observe as estruturas de heterogeneidade e cisto. <img alt="A Figura 2" src='"files/ftp_upload/3177/3177fig2.jpg'> Figura 2. Hematoxilina e Eosina seções do teratoma mostram tecidos de cada camada germinativa. Após a fixação, o teratoma foi seccionado e corado com hematoxilina e eosina. Análise por um patologista revelou a presença de células de cada uma das 3 camadas germinais.

<ol><li>Bradley, A., Evans, M., Kaufman, M. H., Robertson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+germ-line+chimaeras+from+embryo-derived+teratocarcinoma+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Formation of germ-line chimaeras from embryo-derived teratocarcinoma cell lines.</a> Nature. 309, 255-255 (1984).</li>
<li>Evans, M. J., Kaufman, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+in+culture+of+pluripotential+cells+from+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos.</a> Nature. 292, 154(1981).</li>
<li>Martin, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+pluripotent+cell+line+from+early+mouse+embryos+cultured+in+medium+conditioned+by+teratocarcinoma+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 78, 7634-7634 (1981).</li>
<li>Downing, G. J., Battey, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technical+assessment+of+the+first+20+years+of+research+using+mouse+embryonic+stem+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Technical assessment of the first 20 years of research using mouse embryonic stem cell lines.</a> Stem Cells. 22, 1168-1168 (2004).</li>
<li>Thomson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282, 1145-1145 (1998).</li>
<li>Reubinoff, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+from+human+blastocysts%3A+somatic+differentiation+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro.</a> Nat Biotechnol. 18, (2000).</li>
<li>Muller, F. J., Goldmann, J., Loser, P., Loring, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+call+to+standardize+teratoma+assays+used+to+define+human+pluripotent+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">A call to standardize teratoma assays used to define human pluripotent cell lines.</a> Cell Stem Cell. 6, 412-412 (2010).</li>
<li>Brivanlou, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cells.+Setting+standards+for+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Stem cells. Setting standards for human embryonic stem cells.</a> Science. 300, 913-913 (2003).</li>
<li>Lensch, M. W., Schlaeger, T. M., Zon, L. I., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Teratoma+formation+assays+with+human+embryonic+stem+cells%3A+a+rationale+for+one+type+of+human-animal+chimera%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Teratoma formation assays with human embryonic stem cells: a rationale for one type of human-animal chimera.</a> Cell Stem Cell. 1, 253-25 (2007).</li>
<li>Gertow, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organized+development+from+human+embryonic+stem+cells+after+injection+into+immunodeficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Stem.+Cells.+Dev%22%5BJournal%5D)">Organized development from human embryonic stem cells after injection into immunodeficient mice.</a> Stem. Cells. Dev. 13, 421-421 (2004).</li>
<li>Gertow, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+human+embryonic+stem+cell-derived+teratomas+for+the+assessment+of+pluripotency%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Stem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of human embryonic stem cell-derived teratomas for the assessment of pluripotency.</a> Curr Protoc Stem Cell Biol. Chapter 1, Unit1B 4-Unit1B 4 (2007).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O método aqui apresentado fornece um altamente confiáveis, simples meios de geração de teratomas de hPSCs na cápsula testicular. Existem vários parâmetros críticos nesta técnica. Em particular, é importante para injectar linhas celulares hPSC que são conhecidos por serem pluripotentes como controlo. Outros parâmetros importantes incluem o intervalo de tempo entre a injecção ea observação do tumor. Para linhas de células como WA09, teratomas deve ser observado em 6-8 semanas. Para novas linhas de IPSC, descobrimos que muitas vezes são necessárias 10 semanas. Outra preocupação é o número de células injectadas. Nós injetar um milhão de células, mas o teste pode ser feito facilmente com poucas células. Além disso, o meio de injecção é importante. Nós descobrimos que os melhores resultados quando as células são injectadas numa mistura 1:1 de matrigel e DMEM/F-12, em oposição a PBS ou DMEM/F-12.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Accutase </td><td> Invitrogen </td><td> A1110501 </td></tr><tr><td> DMEM/F-12 </td><td> Invitrogen </td><td> 113300-032 </td></tr><tr><td> Matrigel </td><td> BD Biosciences </td><td> 354277 </td></tr></tbody></table>

geração teratoma na cápsula do testículo

Teratoma Generation in the Testis Capsule

As células estaminais pluripotentes (PSC) têm a característica única que eles podem diferenciar em células de todas as três camadas germinais. Isto torna-os de uma ferramenta potencialmente útil para o tratamento de muitas doenças diferentes. Com o advento das células pluripotentes induzidas estaminais (iPSCs) e pesquisa de continuar com células estaminais embrionárias (hESCs), há uma necessidade de ensaios que possam demonstrar que uma linha de células particular é pluripotentes. Transmissão germinativa tem sido o padrão ouro para demonstrar a pluripotência das células-tronco embrionárias do rato (MESC) linhas 1,2,3. Utilizando este ensaio, os investigadores podem mostrar que uma linha de MESC pode fazer todos os tipos de células no embrião incluindo células germinativas 4. Com a geração de linhas humano ESC 5,6, o ensaio apropriado para provar pluripotência destas células era clara, uma vez CES humanos não podem ser testados para a transmissão da linha germinativa. Como um substituto, o ensaio de teratoma é actualmente utilizado para demonstrar a pluripotrência de células-tronco pluripotentes humanas (hPSCs) 7,8,9. Embora este ensaio tem vindo recentemente sob escrutínio e novas tecnologias estão sendo ativamente explorados, o ensaio de teratoma é o padrão ouro atual 7. Neste ensaio, as células em questão são injectados um rato imune comprometida. Se as células são pluripotentes, um teratoma desenvolverá eventualmente e secções do tumor irá mostrar tecidos a partir de todas as 3 camadas germinais 10. No ensaio de teratoma, hPSCs pode ser injetado em diferentes áreas do mouse. Os locais de injecção mais comuns incluem a cápsula testículo, a cápsula do rim, o fígado, ou para a perna por via subcutânea ou por via intramuscular 11. Descrevemos aqui um protocolo robusto para a geração de teratomas de hPSCs utilizando a cápsula testículo como o local para o crescimento do tumor.

As células pluripotentes humanas estaminais (hPSCs) têm o potencial para tratar uma miríade de diferentes doenças. A utilidade destas células reside no facto de que eles podem diferenciar-se em qualquer tipo de célula no corpo. Descrevemos aqui o ensaio teratoma, que é usado para demonstrar a pluripotência das hPSCs.

Geração Teratoma na Cápsula do Testículo

As células-tronco pluripotentes (CTPs) possuem a característica única de poderem se diferenciar em células de todas as três camadas germinativas. Isso as torna...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar a pluripotência por meio da geração de teratomas na cápsula testicular de camundongos imunocomprometidos utilizando células-tronco pluripotentes humanas ou CTPHs. Comece colhendo uma cultura das CTPHs putativas a serem testadas quanto à pluripotência. Em seguida, realize uma cirurgia para expor os testículos do camundongo e injete as células na cápsula testicular.Coloque os testículos de volta em sua localização original e feche cirurgicamente o camundongo; após seis a doze semanas, examine o tumor resultante por histologia para verificar a presença de células de cada uma das camadas germinativas. Em última análise, os resultados podem demonstrar que uma linhagem de CPH é verdadeiramente pluripotente ao mostrar que ela é capaz de se diferenciar em células derivadas das três camadas germinativas em um camundongo imunocomprometido. Embora novos métodos para demonstrar a pluripotência de células-tronco humanas tenham sido recentemente descritos, o ensaio de teratoma permanece como o padrão-ouro na área para demonstrar o procedimento será tron, um técnico sênior no meu laboratório de cultura.Cultive as células-tronco pluripotentes humanas até a confluência e, em seguida, dissocie os HPSEs com Accutase, conte as células e re-suspenda 1 milhão de HPCs por injeção. Primeiro, depile o abdômen de camundongos machos imunocomprometidos com seis semanas de idade anestesiados usando uma tesoura elétrica. Limpe a parede anterior do abdômen do camundongo com solução de iodopovidona, iniciando do centro do abdômen e movendo-se em sentido horário para fora.Em seguida, lave a área raspada com etanol 70%. Repita o processo três vezes, trocando os cotonetes a cada vez. Para realizar o procedimento cirúrgico, transfira o animal para uma placa aquecida dentro de uma câmara estéril com tesoura cirúrgica estéril.Realize uma incisão longitudinal de um centímetro através da pele e do peritônio logo abaixo do nível da articulação do quadril, segurando o peritônio com pinças. Alcance com outro par de pinças estéreis em direção ao quadril direito e puxe o tecido adiposo branco junto com os testículos anexos. Agora, encha uma seringa tuberculínica de um CC com as hpsc a serem injetadas. Injete lentamente de 20 a 30 microlitros de H PSCs no centro da cápsula testicular, longe de quaisquer vasos sanguíneos principais.Remova lentamente a agulha para evitar o refluxo das células usando pin&ccedil;as. Retorne os test&iacute;culos e o tecido adiposo para sua posi&ccedil;&atilde;o original no abd&ocirc;men. Feche o perit&ocirc;nio com dois ou tr&ecirc;s pontos reabsorv&iacute;veis e feche a pele com clipes autom&aacute;ticos.Após a cirurgia, administre analgesia duas vezes ao dia conforme necessário. Monitore o animal quanto ao crescimento tumoral palpável ao longo de seis a doze semanas. Quando o tumor atingir aproximadamente cinco milímetros, remova-o do camundongo sacrificado para documentação.Fotografe o tumor e meça o tamanho e o peso. Em seguida, corte o tumor em pequenos pedaços e fixe em solução de paraformaldeído 4% para histopatologia. Normalmente, um teratoma é observado após seis a doze semanas.Neste exemplo, 1 milhão de células-tronco pluripotentes humanas WA oh nove foram injetadas na cápsula testicular de um camundongo imunocomprometido. O exame detalhado do teratoma revela heterogeneidade e muitos cistos aderidos. Como esperado.As análises histopatológicas indicam a presença de células derivadas dos três folhetos germinativos. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de incluir uma linhagem celular controle positivo que se sabe ser bastante potente, para garantir que o ensaio foi realizado corretamente. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa ideia de como determinar se uma linhagem de células-tronco humanas é ou não pluripotente.

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Medicina

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