13 de março de 2012
Microbolhas mediada ruptura ultra-som focalizado da barreira sangue-cérebro (BBB) é uma técnica promissora para não-invasivo de entrega de drogas alvo no cérebro 1-3. Este protocolo descreve o procedimento experimental para guiada por MRI perturbação BBB transcraniana num modelo de rato.
O objetivo geral deste procedimento é interromper localmente a barreira hematoencefálica, permitindo a passagem de moléculas para o tecido, as quais normalmente estão confinadas à vasculatura cerebral. Isso é realizado primeiramente preparando o animal e posicionando-o em decúbito dorsal sobre um banho de água acima de um transdutor de ultrassom focalizado e um sistema de posicionamento do transdutor em três eixos. O segundo passo do procedimento é adquirir imagens de RNM para fornecer informações de direcionamento ao sistema de posicionamento.
O terceiro passo do procedimento é preparar e injetar a solução de microbolhas. O passo final do procedimento é ajustar os parâmetros de ultrassom e aplicar o ultrassom. Por fim, podem ser obtidos resultados que mostram a permeabilidade da barreira hematoencefálica nos locais submetidos à sonicação, por meio de ressonância magnética ponderada em T1 com realce por contraste.
As implicações dessa técnica estendem-se à terapia de distúrbios cerebrais e do sistema nervoso central, pois essa interrupção local e repetível da barreira hematoencefálica permite a investigação de intervenções farmacológicas para condições que anteriormente tiveram pouca resposta à terapia medicamentosa. Em geral, pessoas novas nesse método terão dificuldades, pois a manipulação e injeção das bolhas exige paciência e cuidado para evitar rompê-las antes de alcançarem o alvo. A demonstração do preparo do animal será mostrada em um passeio.
Um técnico do nosso laboratório seleciona um transdutor de ultrassom calibrado apropriado. Em seguida, coloca um banho de água com água desionizada dessonificada sobre a base de um aparelho de ressonância magnética de 1,5 Tesla ou três Tesla, montando o transdutor de ultrassom no tanque sobre uma plataforma ou sistema de posicionamento tridimensional compatível com RM, voltado para a superfície da água. O banho de água deve possuir uma placa superior para acomodar os animais após anestesia com gás isoflurano, além de ter o pêlo da região da cabeça e do pescoço depilado.
Em seguida, remova o pêlo restante usando um creme depilatório. Insira um cateter de calibre 22 com torneira de três vias na veia da cauda e realize uma lavagem com uma mistura de heparina e soro fisiológico para prevenir a formação de coágulos no cateter. Administre anestésicos injetáveis por via intramuscular e remova o animal do isoflurano.
10 minutos antes do início do experimento, aplique uma pequena quantidade de gel ultrassônico no topo da cabeça do animal para minimizar a possibilidade de bolhas de ar aprisionadas. Em seguida, posicione o animal anestesiado em decúbito dorsal no sistema de posicionamento de ultrassom, com o topo da cabeça em contato com o banho de água através de um orifício na placa superior.
A cabeça pode ser mantida no lugar usando uma barra de mordida, se disponível, ou fita fixada firmemente sobre o queixo. Em seguida, prenda as pernas ao sistema de posicionamento. Cubra o animal com uma toalha ou cobertor para mantê-lo aquecido.
Ao longo do experimento, adquira imagens ponderadas em T2 e ponderadas em T1 do cérebro em corte axial, utilizando os parâmetros de aquisição apropriados. Selecione o alvo a partir dos cortes ponderados em T2, evitando os ventrículos e a linha média do cérebro, e escolha uma profundidade no mesencéfalo.
Mova o foco do transdutor para a localização-alvo. Ative microbolhas definitivas de acordo com o protocolo do fabricante e aspire lentamente um pequeno volume para dentro de uma seringa de um mililitro. Utilizando uma agulha de 18 calibres, remova o ar aprisionado da seringa movendo suavemente o êmbolo para frente e para trás, em vez de bater.
Como isso pode romper as microbolhas, dilua as microbolhas em solução salina normal numa proporção de 10 para um, salina para microbolhas, injetando lentamente o volume necessário de microbolhas numa seringa contendo salina. Inverta suavemente a seringa para misturar completamente as microbolhas e a salina até obter uma aparência homogênea. Calcule o volume da dose necessária com base em 0,02 mililitros por quilograma de microbolhas, ou 0,2 mililitros por quilograma da solução.
Na diluição de 10 para um. Ajuste os parâmetros de sonicação utilizando pulsos de baixo ciclo de trabalho em vez de sonicação contínua. Verifique se a cabeça do animal ainda está acoplada à água.
Inicie a sonicação enquanto injeta lentamente as microbolhas no cateter da veia caudal. Em seguida, faça uma lavagem com 0,5 mililitros de soro fisiológico após a sonicação. Injete um agente de contraste para ressonância magnética pelo cateter da veia caudal, seguido por uma lavagem com 0,5 mililitro de soro fisiológico.
Realize uma ponderação em T1 até que o pico de contraste tenha passado. Sonicação. Os locais que foram interrompidos com sucesso mostrarão maior realce do que o tecido circundante. Realize uma ponderação em T2 para verificar a presença de sinal alto nos locais de sonicação, o que indica edema nesses locais.
Imagens típicas de ressonância magnética ponderadas em T1, antes e após o FUST, são mostradas aqui. Uma imagem ponderada em T1 com contraste realça aberturas focais distintas. Quatro localizações sonificadas são exibidas, com as localizações um e dois mostrando realce de contraste particularmente intenso.
Os locais um e dois também mostram alta intensidade de sinal na imagem ponderada em T2 após FUS, indicando edema. A extensão do edema ponderado em T2 às vezes pode ser mais facilmente visualizada em cortes sagitais, como aqui, cortes sagitais ponderados em CET1 e T2 através da sunação. Os locais um e três são mostrados após FUS: o edema é visível no local um, mas não no local três.
A análise espectral dos dados de emissões acústicas capturados pode mostrar emissões harmônicas e/ou subharmônicas e ultraharmônicas quando ocorre cavitação estável. Os dados capturados durante um único estímulo de 10 milissegundos a 551,5 quilohertz mostram a frequência fundamental, bem como harmônicos e subharmônicos e ultraharmônicos. O uso de frequências de sonicão mais altas resulta em aberturas mais localizadas devido ao menor tamanho do ponto focal, conforme mostrado aqui.
Frequências mais altas podem ser usadas para criar regiões menores de abertura, o que permite a investigação do mesencéfalo com menos efeitos próximos ao crânio. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar que o manuseio cuidadoso dos microbubbles é essencial para obter bons resultados. Uma vez que esta técnica seja aperfeiçoada, os pesquisadores podem começar a responder outras questões, como, qual é a eficácia da entrega de um agente terapêutico a um alvo específico no cérebro?
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Este protocolo descreve um método para a desintegração não invasiva da barreira hematoencefálica (BHE) utilizando ultrassom focalizado mediado por microbolhas. A técnica tem como objetivo facilitar a entrega direcionada de fármacos no cérebro, demonstrada por meio de procedimentos guiados por ressonância magnética em um modelo de rato.
A ultrassonografia transcraniana focalizada (FUS) com orientação por ressonância magnética permite a interrupção precisa e temporária da barreira hematoencefálica (BHE), abordando um grande gargalo na entrega de fármacos ao sistema nervoso central (SNC). Essa capacidade permite que equipes de pesquisa e desenvolvimento avaliem agentes terapêuticos que, de outra forma, seriam excluídos do tecido cerebral, apoiando a validação precoce de alvos e a redução de riscos mecanicistas. A abordagem é altamente relevante para estratégias de portfólio que buscam avançar ativos para o SNC com maior confiança preditiva.
Este protocolo de USF guiado por RMI se integra ao continuum de descoberta a pré-clínico, conectando a validação inicial de alvos e a pesquisa translacional para ativos do SNC.