Name: A Unidade Funcional Motor na placa de cultura: Co-cultivo de explantes da Medula Espinhal e as células musculares (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-12T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: Aprenda a reproduzir uma unidade motora funcional in vitro por co-cultivo de células musculares humanas primárias com explantes de medula espinhal de embriões de rato. Este método permite estudar a inervação muscular e avaliar fenótipos celulares.

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Nosso trabalho é apoiado pela National Science Foundation suíço (SNF), a Iniciativa Suíça em Biologia de Sistemas (SystemsX.ch), a Muscular Dystrophy Association EUA (MDA), a Associação Française contre les Miopatias (AFM), o United mitocondrial Doença Fundação (UMDF), a Gebert-Ruf Fundação Programa das Doenças Raras (GRF), a Sociedade Suíça de Investigação das doenças musculares (SSEM / FSRMM), a Swiss Life &quot;Jubiläumsstiftung für Volksgesundheit und Forschung medizinische&quot;, a Roche Research Foundation e da Universidade de Basileia.

1. Preparação da cultura de células humanas muscular primária <ol><li> Estabelecer as culturas de células humanas musculares de acordo com a técnica de explante-re explante-4. Primeiro, remova não-tecido muscular das biópsias. Em seguida, incorporar 1 mm 3 explantes musculares em um coágulo de plasma, que permite que os fibroblastos de emergir dos explantes. </li><li> Os explantes incorporados são transferidos para um prato de plasma gelatina revestido e deixá-los crescer em meio de crescimento normal (MEM suplementado com meio de 25% 199, 10% de soro fetal bovino [FBS], 1% de penicilina / estreptomicina, 10 insulina ug / ml, 10 ng / ml factor de crescimento epidérmico humano [EGF], 12,5 ng / ml factor de crescimento fibroblástico humano [FGF]) em uma monocamada. As células que surgem a partir dos explantes sob essas condições são as células musculares. Estas células continuam a crescer em uma monocamada após a remoção dos explantes. </li><li> Cultura das células aneurally 0,1% de gelatina em placas revestidas em meio de crescimento normal. As células podem seraneurally cultivadas e amplificadas, conforme necessário. É preferível utilizar células musculares em uma passagem entre 3 e 8 para executar os co-culturas. É fundamental para inervar miotubos jovens, após este ponto, as co-culturas têm um alto risco de fracassar. Além disso, miotubos não deve ser demasiado grande e muito espessa. </li><li> Dois dias antes da inervação está prevista placa, as células musculares em 35 pratos de tecido mm de cultura (ou 6 placas de poços) com uma densidade de 500.000 células por placa em meio de crescimento normal. Em que a densidade, as células estão na confluência adequada para iniciar a fusão no dia seguinte, e subsequente inervação do dia depois disso. Utilizando essas condições, os miotubos estão na fase certa para inervação ideal e contração das fibras, portanto, posterior. </li><li> No dia seguinte, substituir o meio de crescimento normal, com uma média de fusão composta de MEM suplementado com meio de 25% 199, 5% de FBS, a insulina 10 mg / ml e 1% de penicilina / estreptomicina. </li></ol> 2. Isolati<html> no do rato embrionárias Explantes da Medula Espinal Todo o procedimento para isolar os explantes da medula espinal é realizada sob um microscópio binocular, em Solução Salina Equilibrada de Hank (HBSS, Gibco / Invitrogen ref 14.170) contendo 10% de soro fetal bovino (FBS). <ol><li> É crucial que os embriões de ratos estão entre ED 13 e 14 como um estágio de desenvolvimento diferente comprometeria todo o processo. Sacrifique uma mulher grávida com CO 2 e recolher a cadeia embrião inteiro em meio HBSS. Isolar cada embrião e decapitar as crianças para a eutanásia. </li><li> Dissecar a medula espinal embrionária do resto do corpo de uma só peça e remover o músculo e tecido conjuntivo envolvente. Tenha muito cuidado para manter os gânglios da raiz dorsal (DRGs) ligados à medula espinhal para garantir a inervação funcional. </li><li> Cada fatia da medula espinal transversalmente de uma maneira que cada explante contém pelo menos 2 DRG ligada a ela (explantes de 1 mm 3). </li></ol><html> ove_title &quot;&gt; Inervação 3. das células musculares humanas embrionárias de rato com explantes da Medula Espinal <ol><li> Remover o meio de fusão sobre a cultura de células do músculo, deixando uma fina camada de meio sobre a monocamada. </li><li> Coloque os frascos cuidadosamente sobre a camada de células musculares, cinco explantes uniformemente espaçadas por 35 prato mm. </li><li> Adicionar muito lentamente, solte meio de fusão sábio, em cada explante. É necessário adicionar meio para as células musculares para sobreviver, mas não demasiado para permitir que os explantes a aderir primeiro e fazer contacto com as células. Se o meio não é adicionado corretamente (muito forte ou médio muito), os explantes irá flutuar e irá falhar para inervar as células musculares. </li><li> Uma vez que os explantes começar a aderir, no topo da média de fusão a 2 ml por 35 prato mm, e pôr os pratos com muito cuidado de volta para a incubadora. </li></ol> 4. Manutenção dos heterólogos nervo-músculo Co-culturas <ol><li> Alterar o meio de fusão duas vezes por semana. </li></ol>_title &quot;&gt; 5. resultados representativos Logo que dois dias depois da inervação, é possível ver as neurites que emergem de cada explante e estabelecimento de contactos com as células musculares, representados pelas estruturas botão-like (Fig. 1). Já em 4-6 dias após a inervação, algumas fibras individuais começará a se contrair. As contracções persistir durante vários meses, mantida simplesmente mudando o meio de cultura duas vezes por semana. Após cerca de 2 semanas, o explante medula espinal-se degenera, mas a inervação é conservada. Isto é normal. Uma fina camada de componente do nervo permanece na superfície da camada de células do músculo. Esta rede nervoso é suficiente para manter a funcionalidade do bloco do motor. Se os explantes flutuar no meio de um dia após a inervação, eles nunca irá aderir. Isto acontece quando a camada de células do músculo énão é suficientemente confluentes, ou quando o meio é adicionado demasiado aproximadamente. Às vezes, os explantes, mas não adere neuritos surgirão. Isto é provavelmente devido à falta de DRG ligado a ele. Neste caso também, a inervação não será estabelecida. Manipular os pratos com muito cuidado na primeira semana, como os explantes ainda pode se desprendem facilmente. Para trocar a mídia de fusão, adicionar o líquido gota a gota com uma velocidade mínima para evitar desprendimento de células. <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3616/3616fig1.jpg" /> Figura 1. Da medula espinhal célula muscular explantes co-culturas do dia 1 ao dia 15.

<ol><li>Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+myotube+differentiation+in+vitro+in+different+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions.</a> Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).</li>
<li>Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+muscle+cultured+in+monolayer+and+cocultured+with+fetal+rat+spinal+cord%3A+importance+of+dorsal+root+ganglia+for+achieving+successful+functional+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation.</a> J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).</li>
<li>Braun, S., Croizat, B., Lagrange, M. C., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+muscular+abnormalities+in+culture+in+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Constitutive muscular abnormalities in culture in spinal muscular atrophy.</a> Lancet. 345, 694-695 (1995).</li>
<li>Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+program+for+investigating+adult+human+skeletal+muscle+grown+aneurally+in+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture.</a> Neurology. 25, 58-67 (1975).</li>
<li>Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+types+required+to+efficiently+innervate+human+muscle+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro.</a> Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).</li>
<li>Lefebvre, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+spinal+muscular+atrophy-determining+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a spinal muscular atrophy-determining gene.</a> Cell. 80, 155-165 (1995).</li>
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<li>Durbeej, M., Campbell, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscular+dystrophies+involving+the+dystrophin-glycoprotein+complex%3A+an+overview+of+current+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models.</a> 12, 349-361 (2002).</li>
<li>Schnabel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroscience%3A+Standard+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neuroscience: Standard model.</a> Nature. 454, 682-685 (2008).</li>
<li>Benatar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lost+in+translation%3A+treatment+trials+in+the+SOD1+mouse+and+in+human+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS.</a> Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).</li>
<li>Dorchies, O. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+innervation+and+differentiation+of+X-linked+myotubular+myopathy+muscle+cells+in+a+nerve-muscle+coculture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromuscul.+Disord%22%5BJournal%5D)">Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system.</a> Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).</li>
<li>McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+innervation+of+cultured+human+muscle+overexpressing+betaAPP+experimentally+and+genetically%3A+relevance+to+inclusion-body+myopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies.</a> Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).</li>
</ol>

Não temos nada a divulgar.

Uma ferramenta fisiológica in vitro para estudar a função da célula muscular em contexto normal e patológico é do maior interesse para os myologists, porque as culturas de células musculares geralmente não recapitular a importância de várias células e células do tipo conexões. A adição de neurónios motores purificado para as células musculares não é suficiente para alcançar uma unidade de motor funcional uma vez que a presença de células de Schwann é necessária para a inervação para ser eficiente 5, ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de Catálogo </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 14170 </td></tr><tr><td> MEM </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31095 </td></tr><tr><td> Meio 199 </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31153 </td></tr><tr><td> Soro Fetal Bovino </td><td> Fetal Clone Perbio </td><td> SH30066.03 </td></tr><tr><td> Insulina </td><td> Sigma </td><td> I9278 </td></tr><tr><td> EGF humano </td><td> Sigma </td><td> E9644 </td></tr><tr><td> FGF humano </td><td> Sigma </td><td> F0291 </td></tr><tr><td> A penicilina / estreptomicina solução </td><td> Gibco </td><td> 15140 </td></tr></tbody></table>

a unidade funcional motor na placa de cultura: co-cultivo de explantes da medula espinhal e as células musculares

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Humanos células musculares primárias cultivadas em monocamada aneurally raramente contrato espontaneamente, porque, na ausência de um componente do nervo, diferenciação celular é limitada e motor estimulação neuronal está ausente 1. Estas limitações dificultar o estudo in vitro de muitas doenças neuromusculares em células musculares em cultura. Importante, as restrições experimentais de monolayered, células musculares em cultura pode ser superado pela inervação funcional de miofibras com explantes da medula espinal em co-cultura. Aqui, nós mostram os diferentes passos necessários para atingir um inervação, eficiente adequado de células musculares humanos primários, levando à completa contracção diferenciação e de fibras de acordo com o método desenvolvido por Askanas 2. Para fazer isso, as células musculares são co-cultivadas com explantes espinal medula de embriões de ratos em ED 13,5, com o gânglio da raiz dorsal ainda ligado às fatias de medula espinhal. Depois de alguns dias, o músculo fibros começar a contrato e, eventualmente, tornar-se cruz-estriado através inervação por neurites funcionais projetando a partir dos explantes da medula espinhal que ligam para as células musculares. Esta estrutura pode ser mantida durante vários meses, simplesmente por troca regular do meio de cultura. As aplicações desta ferramenta de valor inestimável são numerosas, pois representa um modelo funcional para análises multidisciplinares de desenvolvimento muscular humana e inervação. Na verdade, uma completa de novo instalação junção neuromuscular ocorre em um prato de cultura, permitindo uma fácil medição de muitos parâmetros em cada passo, num contexto fundamental e fisiológico. Só para citar alguns exemplos, genômicos e / ou estudos de proteômica pode ser realizada diretamente sobre as co-culturas. Além disso, os efeitos pré e pós-sináptica pode ser e especificamente avaliados separadamente na junção neuromuscular, porque ambos os componentes vêm de diferentes espécies,de rato e humano, respectivamente. O nervo músculo-co-cultura pode também ser realizada com células musculares humanas isoladas de pacientes que sofrem de músculo ou doenças neuromusculares 3, e assim pode ser usado como uma ferramenta de rastreio de drogas candidatas. Finalmente, nenhum equipamento especial, mas uma instalação de BSL2 regular é necessária para reproduzir uma unidade de motor funcional em um prato de cultura. Este método, assim, é valiosa para ambos o músculo, bem como as comunidades de investigação neuromusculares para estudos fisiológicos e mecanicista da função neuromuscular, num contexto normal e doença.

Células musculares cultivadas são um modelo inadequado para recapitular músculo inervado<em&gt; In vivo</em&gt;. Uma unidade de motor funcional pode ser reproduzida<em&gt; In vitro</em&gt; Por inervação diferenciados humanos células musculares de ratos embrionários primários usando explantes da medula espinhal. Este artigo descreve como co-culturas de explantes da espinal medula e células musculares são estabelecidos.

A Unidade Funcional Motor na placa de cultura: Co-cultivo de explantes da Medula Espinhal e as células musculares

Células musculares primárias humanas cultivadas aneuralmente em monocamada raramente contraem espontaneamente porque, na ausência de um componente nervoso, a célula...

O objetivo geral deste procedimento é reproduzir uma unidade motora funcional in vitro. Isso é conseguido cultivando células musculares humanas primárias em conjunto com explantes de medula espinhal isolados de embriões de rato. Os implantes da medula espinhal são então deixados para inervar as células musculares humanas com o explante ainda fixado.O cultivo é cuidadosamente alimentado com meio até que as células musculares se diferenciem completamente. O fenótipo molecular e/ou celular das células musculares diferenciadas pode então ser avaliado por meio de uma seleção de ferramentas moleculares. A demonstração visual deste método é fundamental porque, em primeiro lugar, é difícil aprender a isolar a medula espinhal.Acima de tudo, é necessário ser muito delicado ao adicionar o meio de cultura às células musculares inovadoras. Eutanizar uma rata prenhe com embriões entre os estágios ED 12,5 e ED 13,5.Seja preciso, pois esta etapa é crucial para todo o procedimento. Disseque o útero e colete toda a cadeia de embriões em meio HBSS com 10% de FBS sob um estereomicroscópio, isole e decapite cada embrião individualmente. Isole a medula espinhal em uma única peça e remova o músculo e o tecido conjuntivo circundantes.Para fazer isso primeiro, fixe os embriões com tesoura microcirúrgica. Corte uma linha de cada lado da medula espinhal e retire cuidadosamente a pele. Em seguida, coloque o embrião de lado e isole cuidadosamente a medula espinhal com o gânglio da raiz dorsal ou DRG ainda anexado.A inervação funcional não ocorrerá se os gânglios da raiz dorsal não permanecerem ligados à medula espinhal. A medula espinhal é mais clara do que o tecido conjuntivo e o músculo rosa ao redor. Remova cuidadosamente os tecidos circundantes sem perturbar os gânglios da raiz dorsal.Uma vez isolada, utilize a agulha de uma microseringa para cortar transversalmente cada medula espinhal em cubos com pelo menos dois gânglios da raiz dorsal (DRGs) anexos. Esses fragmentos terão cerca de um milímetro cúbico e já estarão prontos para serem cultivados em co-cultura com uma cultura padrão de células musculares humanas. Este protocolo exige que as células musculares humanas sejam cultivadas a partir de biópsias de tecido.Consulte o protocolo escrito para obter detalhes sobre este procedimento. Comece removendo o meio de fusão do cultivo de células musculares, deixando uma fina camada de meio sobre o monocamada. Em seguida, coloque cuidadosamente o x explan sobre a célula muscular.Cinco explantes X espaçados uniformemente podem ser acomodados em cada placa de 35 milímetros. Adicione lentamente o meio de fusão sobre cada explante X, gota a gota. Não adicione o meio de fusão muito rapidamente ou em excesso de volume.Caso contrário, os explantes de x flutuarão e não conseguirão inervar as células musculares. Em seguida, coloque cuidadosamente as placas de volta no incubador. Continue adicionando o meio lentamente.Quando manipulados com cuidado, os explantes x deixarão de flutuar no meio e aderirão às células em cerca de uma hora. Uma vez aderidos, aumente o volume do meio de fusão para dois mililitros por placa de 35 milímetros. Se, após aguardar a noite toda, os explantes x ainda estiverem flutuando no meio, então a camada de células musculares não estava suficientemente confluente ou o meio foi adicionado incorretamente.Dois, aproximadamente. Esses X explan nunca aderirão duas vezes por semana. Substitua todo o meio de fusão gota a gota, bem lentamente, para evitar a dessanexação celular.Os X explan são bastante frágeis durante a primeira semana e podem se soltar facilmente. Essa é uma técnica muito boa porque, após a inovação, basta medir ou coletar o meio de cultura para quantificar o ome das culturas co-cultivadas. E, se você escolher cuidadosamente as ferramentas moleculares, poderá diferenciar o que provém do músculo e o que provém do nervo.Dois dias após a inervação, os neuritos emergem de cada explante e estabelecem contatos com as células musculares, representados por estruturas semelhantes a botões. Quando os neuritos não emergem, a inervação falhará provavelmente devido à falta de adesão dos gânglios da raiz dorsal (DRG). Já entre quatro a seis dias após a inervação, algumas fibras individuais começam a contrair.As contrações persistiram por muitos meses, mantidas simplesmente pela troca do meio de cultura duas vezes por semana. Após cerca de duas semanas, como esperado, os explantes da medula espinhal degeneraram por si mesmos, mas as inervações foram conservadas. Uma fina camada de componentes nervosos permaneceu na superfície da camada de células musculares, e essa rede nervosa foi suficiente para manter a funcionalidade da unidade motora.Uma das grandes vantagens desta técnica é a possibilidade de coletar amostras de pacientes e medir ou comparar o fenótipo das culturas co-cultivadas entre a amostra controle e a do paciente. E, seguindo este procedimento, você pode utilizar técnicas clássicas bastante comuns, como PCR em tempo real, Western blot e imuno-histoquímica, e realmente estudar o fenótipo muscular ou nervoso das culturas co-cultivadas.

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

O micro-dissecados técnica de explantes é um método robusto e confiável para isolar proliferativa das células do músculo esquelético juvenil, adulto ou músculos embrionárias como fonte de células-tronco do músculo esquelético. Excepcionalmente, estas células têm sido clonal para produzir derivados do músculo esquelético linhas de células-tronco usado para in vivo o transplante.

Adultas e embrionárias Cultura Microexplant Músculo Esquelético e isolamento de células-tronco musculares

Uma forma alternativa de isolar motoneurônios embrionárias de camundongos a partir da medula espinhal é descrito. O método leva em consideração o fato de que a lectina pode ligar para a afinidade baixo do nervo receptor do fator de crescimento p75NTR. Este preplating lectina baseado permite uma purificação semelhante ao que, com um anticorpo específico contra o p75NTR.

Lectina baseado em isolamento e cultura de motoneurônios embrionárias de rato

Demonstramos como dissecar e cultura pinto gânglio statoacoustic E4 e E6 explantes medula espinhal. Explantes são cultivados sob condições sem soro em gel de colágeno 3D por 24 horas. Neuritos resposta é testado com o meio do fator de crescimento suplementado com proteína e revestido contas.

Dissecção e Cultura do Gânglio pintainho Statoacoustic e Explantes da Medula Espinhal em géis de colágeno para Ensaios crescimento de neuritos

Tecido muscular de engenharia tem um grande potencial na medicina regenerativa, como modelo de doença e também como uma fonte alternativa para a carne. Aqui descreve-se a engenharia de uma construção de músculo, neste caso, a partir de células progenitoras, mioblastos de rato e a estimulação por pulsos eléctricos.

Os tecidos músculo esquelético de engenharia a partir de células progenitoras mioblastos murinos e Aplicação da estimulação elétrica

Cultura de lâminas de facilitar a manipulação do gene de desenvolvimento do embrião e perturbações farmacológicas. No entanto, as condições de cultura devem assegurar que o desenvolvimento normal pode prosseguir dentro do ambiente reduzido da fatia. Ilustramos um protocolo que facilita o desenvolvimento normal, medula espinhal prosseguir durante pelo menos 24 horas.

Embrião de galinha Spinal Cord Protocolo Cultura Slice

Aqui apresenta-se um protocolo que é baseado em fatias de medula espinhal cultivadas em matrizes multi-eléctrodos para estudar a regeneração funcional de ligações propriospinal in vitro.

Investigando regeneração funcional em organotï¿½icas Medula Espinhal Co-culturas cultivadas em Arrays Multi-eletrodo

O transporte axonal é um mecanismo crucial para a saúde dos neurônios motores. Neste protocolo fornecemos um método detalhado para rastrear o transporte axonal de compartimentos ácidos e mitocôndrias em axônios de neurônios motores usando câmaras microfluidas.

Transporte Axonal de Organelas em Culturas de Neurônios Motores usando sistema de câmaras microfluidas

Neste protocolo é descrito um método de cultivo in vitro e análise funcional para células-tronco musculares, que preserva a maioria de suas interações com seu nicho endógeno.

Ensaio de cultura de myofibra única para a avaliação da funcionalidade de células-tronco musculares adultas Ex Vivo

Este manuscrito descreve um protocolo detalhado para produzir matrizes de microtissues musculares esqueléticos humanos 3D e minimamente invasivos a jusante em ensaios de função situ, incluindo força contraítil e análises de manuseio de cálcio.

Avaliação de métricas funcionais da saúde muscular esquelética em microtissues musculares esqueléticas humanas

Descrevemos um método para gerar unidades motoras humanas em dispositivos microfluidos comercialmente disponíveis, co-culminando neurônios motores pluripotentes induzidos por células-tronco com miótubos primários derivados do mesoangioblast, resultando na formação de junções neuromusculares funcionalmente ativas.

Geração de Unidades Motoras Humanas com Junções Neuromusculares Funcionais em Dispositivos Microfluidos

Aprenda a reproduzir uma unidade motora funcional in vitro por co-cultivo de células musculares humanas primárias com explantes de medula espinhal de embriões de rato. Este método permite estudar a inervação muscular e avaliar fenótipos celulares.

A Unidade Funcional Motor na placa de cultura: Co-cultivo de explantes da Medula Espinhal e as células musculares

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