11 de setembro de 2012
Íleo pós-operatório (POI) é uma complicação da cirurgia abdominal levando a um aumento da morbidade e permanência hospitalar prolongada. Porque estratégias profiláticas e terapêuticas faltam pesquisa intensificada é necessário. Por isso, estabeleceu um modelo de mouse padronizada e viável para o entendimento da fisiopatologia POI e estudar potenciais opções terapêuticas.
O objetivo geral dos experimentos a seguir é realizar uma manipulação intestinal para estudar o desenvolvimento e a resolução do íleo pós-operatório em um modelo roedor, o que é alcançado por meio da manipulação padronizada do intestino delgado entre dois aplicadores de algodão umedecidos. Em seguida, a transição gastrointestinal e colônica é analisada para medir a motilidade pós-operatória. Então, realiza-se a análise histoquímica e o cultivo de órgãos da camada muscular da parede do intestino delgado, a túnica muscularis externa ou me, para examinar os níveis de inflamação.
São obtidos resultados que mostram uma forte infiltração de granulócitos neutrófilos na ME e produção excessiva de óxido nítrico em culturas de ME, resultando em atrasos nos tempos de trânsito gastrointestinal e colônico. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais sobre o desenvolvimento e a solução de íleo pós-operatório, bem como na investigação de possíveis estratégias de profilaxia ou terapia. O procedimento será demonstrado por Mario Lewison, um técnico do nosso laboratório. Após administrar 0,8 a 1% de isoflurano em oxigênio a um camundongo macho, posicione o animal em posição supina e utilize fita adesiva para fixar as extremidades.
Utilize um estímulo doloroso leve para testar a sedação profunda. Em seguida, realize uma laparotomia mediana, com dois centímetros de comprimento. A seguir, insira dois retratores estéreis para manter o abdômen aberto e exteriorize cuidadosamente o intestino delgado para o lado esquerdo, colocando-o sobre gaze úmida.
Usando dois aplicadores de algodão umedecidos, remova o conteúdo luminal de todo o intestino delgado rolando simultaneamente os aplicadores do piloro até o ceco. Devolva o intestino à cavidade peritoneal sem torção, para prevenir isquemia ou obstrução mecânica, e feche com duas camadas de suturas contínuas de poliamida 5,0 não absorvíveis. Feche a incisão abdominal.
Coloque o animal sob uma lâmpada de aquecimento e monitore-o até que se recupere da anestesia. Em seguida, devolva o camundongo à sua gaiola e permita acesso a alimento e água. No dia seguinte.
Após anestesiar completamente o camundongo, estenda cuidadosamente sua cabeça e use pinças rombas para puxar a língua para fora, preencha uma seringa de um mililitro com pelo menos 100 microlitros de dextrana marcada com fluoresceína. Conecte-a a um cateter arterial e insira cuidadosamente o cateter como uma sonda gástrica no estômago. Injete rapidamente 100 microlitros de dextrana FITC e remova o cateter.
Permita que o animal recupere a consciência e aguarde 90 minutos. Após os 90 minutos, eutanazie o camundongo e remova todo o trato gastrointestinal, do estômago até o reto. Coloque o intestino sobre uma placa de poliestireno e evite esticá-lo.
Em seguida, meça o comprimento total do intestino delgado e do intestino grosso. Use cânulas para fixar o intestino sobre a placa de poliestireno. Divida o intestino delgado em 10 segmentos iguais e o intestino grosso em três segmentos iguais.
Após seccionar o intestino nas posições indicadas, lave as seções uma vez com um mililitro de tampão Krebs-bicarbonato, ou KHB. Transfira as seções para tubos de dois mililitros rotulados consecutivamente e vortexe vigorosamente, em seguida centrifugue as amostras. Em seguida, transfira o sobrenadante para tubos limpos de 1,5 mililitro numerados.
Armazenar a quatro graus Celsius no escuro até a análise. Em seguida, pipete. Duplicar alíquotas de cem microlitros de cada sobrenadante em uma placa preta de 96 poços e utilizar um leitor de fluorescência para ler a placa e verificar o tempo de trânsito colônico após anestesiar semanalmente o animal.
Examine cuidadosamente a patência do cólon inserindo uma fístula. Sonda através do ânus até o cólon usando a sonda. Insira uma bola de vidro de dois milímetros, a três centímetros dentro do cólon, e remova a sonda.
Inicie imediatamente um cronômetro. Coloque o camundongo em uma gaiola transparente e monitore-o pelo período de tempo necessário para a expulsão da bola. Para análise histoquímica de amostras médias totais.
Após cortar segmentos de tecido do intestino e imergi-los em KHB frio em uma placa contendo silicone, use agulhas de insetos para fixar o mesentério à placa. Abra os segmentos ao longo da borda mesentérica e estique o tecido até 120% de seu comprimento e largura. Prenda o tecido com agulhas começando pelo mesentério. Mecanicamente.
Seccione a túnica muscular da túnica mucosa. Fixe e cora as amostras de acordo com a parte escrita deste protocolo para cultivo. A túnica muscular.
24 horas após o procedimento de manipulação intestinal, resseque todo o intestino delgado e coloque-o em KHB frio contendo penicilina, G e estreptomicina. Corte o intestino em segmentos de três centímetros de comprimento e fixe cada um deles em um recipiente de vidro revestido com silicone usando uma tesoura fina. Remova o mesentério e deslize o intestino para uma agulha oscilante com pinça fina.
Corte suavemente a mucosa e, usando um aplicador de algodão úmido, desprenda-a da submucosa e coloque-a em KHB frio acrescido de Ps. Em seguida, corte as tiras de mucosa em pedaços de dois a quatro milímetros de comprimento e incube-as em KHB gelado com PS durante 30 minutos, lavando a amostra várias vezes.
Em seguida, transfira aproximadamente 50 a 60 miligramas de mim para uma placa estéril de 24 poços contendo 500 microlitros de DMEM. Incube o tecido a 37 graus Celsius e 5%CO2 por 24 horas. Colete o sobrenadante e centrifugue a 1000 RCF por cinco minutos.
Em seguida, quebre rapidamente e congele em nitrogênio líquido para medições de citocinas ou óxido nítrico. Por fim, utilizando um papel toalha limpo, seque o tecido muscular por 30 segundos e então pese-o. O parâmetro mais importante para avaliar a gravidade do íleo pós-operatório é o exame do trânsito gastrointestinal ou TGI in vivo.
Esta figura demonstra uma distribuição típica do dextrano-FITC ao longo do trato gastrointestinal em controles não tratados e em camundongos submetidos a manipulação intestinal 24 horas após a cirurgia. Como mostrado aqui, animais submetidos a cirurgia simulada apresentaram trânsito gastrointestinal normal, com centro geométrico calculado no ceco. Enquanto a manipulação intestinal (Im) levou a um atraso significativo no trânsito gastrointestinal no jejuno proximal, na análise da motilidade colônica utilizando uma esfera de vidro, camundongos submetidos à cirurgia simulada eliminaram a esfera entre 48 e 200 segundos, e a Im prolongou o tempo de eliminação para entre 470 e 775 segundos para medir a inflamação.
Dentro do ME, os níveis de leucócitos foram analisados usando histoquímica ou imunohistoquímica, conforme visto aqui. Poucos neutrófilos polimorfonucleares foram observados em camundongos controle; no entanto, a inflamação do intestino delgado levou à sua forte infiltração. Muitos mediadores inflamatórios liberados pelas células são difíceis de detectar no tecido.
Os cultivos de lisados de órgãos permitem a detecção de marcadores inflamatórios no cultivo. O sobrenadante, um mediador representativo na IOI, é o óxido nítrico, ou NO, que é um importante neurotransmissor inibitório no trato gastrointestinal. Esta figura mostra que o NO não pôde ser detectado no ME.
Cultura de órgãos, nos sobrenadantes de controle, animais em camundongos submetidos a procedimento simulado, foram observados níveis basais de nno. No entanto, as culturas de camundongos com intestino manipulado produzem significativamente mais nno após uma incubação de 24 horas. Uma vez dominada, esta técnica de manipulação intestinal pode ser realizada em menos de 15 minutos, se for executada corretamente.
Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como induzir o íleo pós-operatório em camundongos e como analisar sua gravidade.
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Este artigo demonstra um modelo padronizado em roedor para o estudo do íleo pós-operatório (POI) por meio da manipulação intestinal (IM), com foco na inflamação da muscularis externa (ME) e seu impacto na motilidade gastrointestinal. O protocolo inclui a avaliação in vivo do trânsito gastrointestinal e colônico, bem como métodos para separar e analisar a ME, a fim de distinguir as respostas inflamatórias em diferentes compartimentos da parede intestinal.
Modelos padronizados de roedores com manipulação intestinal permitem a avaliação rigorosa da motilidade intestinal e da inflamação específica por compartimento, fornecendo diretamente subsídios para a validação precoce de alvos em casos de íleo pós-operatório e outras doenças gastrointestinais relacionadas. A avaliação quantitativa do trânsito gastrointestinal e colônico, juntamente com o perfil imunológico da camada muscularis externa, reforça a confiança preditiva em hipóteses mecanicistas e a continuidade translacional na pesquisa pré-clínica. Essa abordagem fortalece a tomada de decisões em portfólios ao esclarecer os riscos biológicos e os pontos finais funcionais na descoberta de fármacos gastrointestinais.
Este modelo se integra ao continuum de descoberta a pré-clínico ao fornecer desfechos funcionais e imunológicos in vivo robustos para pesquisas gastrointestinais.