Name: Procedimento para a fabricação de nanofibras biofuncionais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-10T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: Aprenda a fabricar nanofibras biofuncionais decoradas com grupos funcionais para interação específica com proteínas usando eletrofiação. Este método combina polimerização aniônica viva com técnicas de caracterização por RMN e microscopia confocal.

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Este trabalho foi financiado pela NSF HRD-0630456, um NSF CREST Programa e NSF é DMR-0934142.

1. Síntese de α, ω-dihydroxyl Polymer [HO-PEO-P2MS-PEO-OH] <ol><li> Montar reactor de polimerização, como mostrado na Figura 1. O reactor para esta experiência consiste em um ml de fundo redondo 100 2-pescoço balão que possui um conjunto padrão de cone exterior (Chemglass), duas placas de controlo de fluxo com torneiras de passagem (Chemglass), e uma haste de Teflon agitação. Um adaptador (Figura 1) foi utilizado para manter a Ultra Alta Pureza Azoto (UHP) que flui através do sistema, a fim de impedir que o ar e a humidade entrem no sistema inerte. Adaptador B (Figura 1), foi utilizada para injectar o monómero, solvente e iniciador para o balão de reacção. </li><li> Seque 200 ml de tetra-hidrofurano (THF) ao longo de metal de Na, utilizando benzof enona como indicador, para um mínimo de 6 horas sob atmosfera de azoto seco. </li><li> Secar 10 ml de 2-metoxiestireno sobre hidreto de cálcio, durante 24 horas. </li><li> Preparar um banho de temperatura fria mantida a -78 ° C, utilizando uma suspensão de isopropanol and azoto líquido. </li><li> Adicionar 25 ml de THF no balão de reacção de polimerização (ver Figura 1), sob azoto gasoso e manter reactor sob atmosfera de azoto através de toda a polimerização. </li><li> Lugar frasco de 100 ml de fundo redondo em pasta. </li><li> Adicionam-se 2 ml (0,27 mmol / ml) da solução de iniciador para o balão de reacção. </li><li> Injectar o primeiro monómero, 2-metoxiestireno (4 ml) para dentro do balão de reacção. </li><li> Permitir que a reacção prosseguir durante 40 min. </li><li> Adicionar 1 mL do segundo monómero, óxido de etileno. </li><li> Permitir que a polimerização prosseguir à temperatura ambiente durante dois dias. </li><li> Terminar o polímero com HCl (6 M) / metanol (1/20, vol / vol). </li><li> Purifica-se o polímero por precipitação em hexano e seco de polímero num forno de vácuo. </li><li> Caracterizar o polímero utilizando RMN. </li></ol> 2. Funcionalização de α, ω-dihydroxyl Polímero com N-2 ,4-DNP-Ε-amino capróico obter o Polym Funcionaler, CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP <ol><li> Em um balão de três tubuladuras, coloque o α, ω-dihydroxyl polímero (0,05 mmol), o ácido N-2 ,4-E-DNP-amino capróico (0,25 mmol), DCC (0,15 mmol) e DMAP (0,005 mmol) e secar em linha de vácuo durante 4 horas. </li><li> Destila-se diclorometano anidro (10 ml) ao balão. </li><li> Desligar o vácuo sob atmosfera de azoto e agita-se reacção durante 12 horas à temperatura ambiente. </li><li> Filtrar mistura de reacção e recuperação de polímero por precipitação por duas vezes em hexano e metanol. </li><li> Seco precipitou polímero numa estufa de vácuo a 40 ° C. </li><li> Determinar a estrutura e funcionalidade do polímero através de FT-IR e RMN H 1. </li></ol> 3. Preparação da solução para CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP/SWCNT Electrospinning <ol><li> Dissolver 20% w da CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP em clorobenzeno. </li><li> Dissolver 20% e 40% w w de Poliestireno (MW 800.000) em clorobenzeno a preparar duas soluções. Quanto maior o poliestireno molecular é utilizado para cada veze polímeros de cadeia de cadeia de emaranhamento e de obter a viscosidade óptima necessária para electrospinning. </li><li> Misturar as soluções de polímero preparadas em 3,1 e 3,2 para formar 1:1 e 1:2 dos polímeros e adicionar 1% p nanotubos de carbono com paredes simples (SWCNT) à mistura e agita-se durante a noite para uma distribuição uniforme de nanotubos de carbono. </li></ol> 4. Electrospinning of Polymer-CNT Composite <ol><li> Montar o electrospinning configurada como mostrado na Figura 2. No lado direito da figura é a Glassman fonte de alta tensão. Próximo a ele é um stand réplica em que a bolacha de silício é ligado. Para a esquerda é uma outra posição em que a retorta seringa é montada por trás e que é a luz para a visualização do processo à medida que progride. </li><li> Utilizando uma seringa hipodérmica, retirar uma pequena quantidade da mistura CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP/polystyrene/SWCNT (cerca de 1 ml) e montar a seringa hipodérmica com o suporte de retorta. </li><li> Uma bolacha de silício é o monteed transversalmente a partir da seringa de forma segura a uma distância de 10 cm, e o clipe de terra da fonte de alta tensão está ligado a ele. </li><li> Fixar o clipe tendo a alta voltagem a ser aplicada à agulha da seringa, o êmbolo um pouco (para suspender uma gota sobre a ponta da agulha), e, neste ponto, está pronto electrospinning. </li><li> Potência na fonte de alta tensão e ajuste medidor de tensão a 10 kV. Dependendo da natureza dos polímeros no compósito, as tensões mais altas pode ser necessário, especialmente se nanofibras sob cem nanómetros de diâmetro são desejados. </li><li> Pastilha de silício desmontar e colocar em um dessecador durante a noite para secar completamente. </li></ol> 5. Caracterização de nanofibras <ol><li> De imagem inicial de nanofibras é feita com microscópio óptico para observar a perspectiva geral das fibras. </li><li> Utilize Microscópio Eletrônico de Varredura para observar pequenos detalhes, como morfologia, tamanho dos poros de diâmetro, média, etc </li><li> Transportara imagem ainda mais com um microscópio de força atômica para observar 3-D topografia de fibras, etc </li></ol> 6. Especificidade de ligação de nanofibras com Proteína IgE anti-DNP <ol><li> Prepara-se uma solução de 4 ug / l marcado por fluorescência, FITC-IgE (Fluoresceína E Isothio-cianato-imunoglobulina) em PBS-BSA (Tampão fosfato salino-Albumina de Soro Bovino) a solução. </li><li> Coloque um pequeno pedaço de wafer de silício em que há nanofibras sobre uma lamela bem MatTek. Incubar as nanofibras nesta solução durante uma hora. A incubação é feito com cuidado pipetando para fora, 10 ul solução IgE no wafer de silício. </li><li> Após a incubação, remove IgE não ligada através de lavagem por três vezes com a solução tampão de PBS-BSA. A solução de PBS é dispensada suavemente sobre a parede da cápsula MatTek, a fim de evitar esguichar o tampão directamente sobre as nanofibras. Roda o prato suavemente com a mão, para distribuir solução tampão em nanofibras. Remova cuidadosamente tampão com uma pipeta e returfa esta mais duas vezes. </li><li> Para o controlo, a incubação em nanofibras de IgG marcado com fluorescência (não-específico para DNP) sob as mesmas condições. </li><li> Visualize as fibras encadernados com um microscópio confocal para observar a ligação com a IgE. Para o nosso estudo, o microscópio confocal Leica utilizado foi TCS SP2 com 63x lente. </li></ol> 7. Corrente-Tensão Comportamento de nanofibras <ol><li class="jove_content"> Conecte dois posicionadores micro a uma fonte de corrente muito baixa, como a 6430 Keithley SourceMeter sensível. A configurado para a determinação do comportamento de tensão de corrente é mostrada na Figura 3. Esta figura mostra a estação de sonda utilizada para determinar as características iniciais IV das nanofibras. É constituída pela Bausch e Lomb Microscópio MicroZoom, um vácuo Stage mandril, e quatro microposicionadores utilizados na sondagem. No canto superior direito é a Agilent 34405A multímetro digital utilizado para medir a tensão e abaixo que é o<html> Keithley 6430 Sub-Femtoamp medidor Fonte remoto usado para a fonte de baixas correntes que eram de entrada nas fibras. </li><li class="jove_content"> Montar os braços de sonda de micro os posicionadores sobre a esteira de fibras em lados opostos com as pontas das fibras que tocam. </li><li class="jove_content"> Conectar outros dois posicionadores micro a um multímetro digital, montar os braços sonda-nos entre os outros dois e desembarcar as dicas sobre o tapete de fibra. Certifique-se de que as quatro pontas são colineares como possível. </li><li class="jove_content"> Quantidades variáveis ​​de entrada actual da Keithley (tipicamente na gama nanoamps). </li><li class="jove_content"> Medir a queda de tensão através das pontas exteriores, para cada magnitude de corrente de origem. </li><li class="jove_content"> Traçando estes valores indicam o tipo de dispositivo, o tapete funciona como fibra. </li></ol> 8. Resultados representativos Polímero Funcional &quot;&gt; O método para a síntese de α, ω-bi [2,4-dinitrofenil capróico] [poli (óxido de etileno)-b-poli (2-metoxiestireno)-b-poli (óxido de etileno)] (CDNP-PEO- P2MS-PEO-CDNP) é mostrado na Figura 4. uma estrutura do polímero funcional foi confirmada por FT-IR (Figura 5) e 500 MHz 1H RMN (Figura 6). O FT-IR mostra o completo desaparecimento do a-OH de absorção larga cerca de 3.500 cm -1, indicando funcionalização quantitativa com o grupo CDNP. Isto também é confirmado pelo espectro de RMN mostrado na Figura 6. Usando a integração dos picos do espectro de RMN, foi determinado que o CDNP-PEO polímeros-P2MS-PEO-CDNP são quantitativamente funcionalizado. Nanofibras Na Figura 7, uma esteira de nanofibras condutoras obtidas por electrospinning CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / poliestireno / SWCNT de clorobenzeno é shprópria. Imagens confocais obtidos mostraram que a proteína de IgE liga-se com o DNP sobre a superfície da fibra. 3 Esta é uma indicação da especificidade de ligação do electrospun DNP-polímeros para com o anticorpo IgE. A intensidade da luz é um indicador da presença de IgE nas nanofibras como a proteína é fluorescente etiquetado. A Figura 8a é uma imagem AFM (microscópio de força atómica) de uma das nanofibras, obtidos por este processo e A Figura 8b mostra a dimensão deste nanofibras em particular é cerca de 150 nm de diâmetro. Por este processo fibras entre 100-700 nm são obtidos. Neste momento atual é um desafio para preparar fibras com uma dimensão específica. Isto é consistente com o que é observado por outros grupos. 4 Figura 9 mostra imagens de SEM de CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / poliestireno / SWCNT nanofibras e o diâmetro das nanofibras estavam entre 200 nm a 300 nm. Existem três SEM imagens de nanofibers mostrado em diferentes ampliações. Estudo das três imagens mostra as morfologias das fibras são lineares e frisado. O objetivo geral é o de preparar as fibras que são na sua maioria linear. Figura 10 mostra o gráfico IV de esteiras de nanofibras preparados a partir de CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / poliestireno / SWCNT. O gráfico mostra o comportamento de um resistor (ôhmica). Quando o antigénio é ligado aos nanofibras, esperamos ver uma mudança no comportamento IV da esteira de fibras, como esta mudança na resistência é uma característica que sugere que as fibras funcionais têm aplicação potencial como o componente activo em sensores para a detecção de moléculas isoladas . <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig1.jpg" /> Figura 1. Reactor de polimerização para a síntese do α, polímero ω-dihydroxyl. A) O ponto de injeção de nitrogênio para o fluxo de gás UHP. B.) O ponto de injecção para o solvente, iniciador de monómero, e. C) O navio de reação. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig2.jpg" /> Figura 2. Instalação utilizada para electrospinning usando um Glassman fonte de alta tensão. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig3.jpg" /> Figura 3. Configuração usada para medir parcelas IV com um Sub-femtoamp remoto SourceMeter (Keithley). <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig4.jpg" /> Figura 4. Uma abordagem). Sintética para a preparação de OH-PEO-P2MS-PEO-OH polímeros. B) Funcionalização de α, ω-di-hidroxi [poli (óxido de etileno)-b-poli (2-metoxiestireno)-b-poli (óxido de etileno)]. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig5.jpg" /> Figura 5. Espectros FT-IR de (A) OH-PEO-P2MS-PEO-OH, precursor CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP e (B) CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP. <img alt="Figura 6"src = &quot;/ files/ftp_upload/4135/4135fig6.jpg&quot; /&gt; Figura 6. RMN de protão de 500 MHz de CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP. <img alt="Figura 7" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig7.jpg" /> Figura 7. Uma imagem) A ligação de FITC-IgE com electrospun fibras CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP de clorobenzeno. B) imagem do microscópio confocal do controle (nanofibras com IgG). <img alt="Figura 8" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig8.jpg" /> Figura 8. A) imagem de AFM electrospun Fibers CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP de clorobenzeno e B) perfil de dimensão AFM ou seja, de uma fibra mostrada na Figura 5a. <img alt="Figura 9" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig9.jpg" /> Figura 9. MEV de CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / poliestireno / SWCNT nanofibras. <img alt="Figura 10" src="/files/ftp_upload/4135/4135fig10.jpg"/&gt; Figura 10. IV trama dos tapetes de nanofibras preparados a partir de CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / poliestireno / SWCNT.

<ol><li>Sannigrahi, B., Sil, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+Characterization+of+%CE%B1%2C%CF%89-bi%5B2%2C4-dinitrophenyl+%28DNP%29%5D+poly%282-methoxystyrene%29+Functional+Polymers.+Preliminary+Evaluation+of+the+Interaction+of+the+Functional+Polymers+with+RBL+Mast+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Macromolecular+Science%2C+Part+A%22%5BJournal%5D)">Synthesis and Characterization of α,ω-bi[2,4-dinitrophenyl (DNP)] poly(2-methoxystyrene) Functional Polymers. Preliminary Evaluation of the Interaction of the Functional Polymers with RBL Mast Cells.</a> Journal of Macromolecular Science, Part A. 45, 664-671 (2008).</li>
<li>Gordon, K., Sannigrahi, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+Optically+Active+Helical+Poly%282-methoxystyrene%29.+Enhancement+of+HeLa+and+Osteoblast+Cell+Growth+on+Optically+Active+Helical+Poly%282-methoxystyrene%29+Surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomaterials+Science%22%5BJournal%5D)">Synthesis of Optically Active Helical Poly(2-methoxystyrene). Enhancement of HeLa and Osteoblast Cell Growth on Optically Active Helical Poly(2-methoxystyrene) Surfaces.</a> Journal of Biomaterials Science. 2, 2055-2072 (2009).</li>
<li>Baird, E. J., Holowka, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+Effective+Poly%28Ethylene+Glycol%29+Architectures+for+Specific+Inhibition+of+Immune+Receptor+Activation%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Highly Effective Poly(Ethylene Glycol) Architectures for Specific Inhibition of Immune Receptor Activation.</a> Biochemistry. 2, 12739-12748 (2003).</li>
<li>Ramakrisna, S., Fugihara, K., Lim, W. -E., Ma, Z. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRamakrisna%2C+S+%22Introductions+to+Electrospinning+and+Nanofibers%22">Introductions to Electrospinning and Nanofibers</a>. , World Sceintific. (2005).</li>
<li>Kameoka, J., Craighead, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Oriented+Polymeric+Nanofibers+on+Planar+Surfaces+by+Electrospinning%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Physics+Letters%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Oriented Polymeric Nanofibers on Planar Surfaces by Electrospinning.</a> Applied Physics Letters. 83, 371-3773 (2003).</li>
<li>Ramakrishna, S., Lala, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymer+Nanofibers+for+Biosensor+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Topics+in+Applied+Physics%22%5BJournal%5D)">Polymer Nanofibers for Biosensor Applications.</a> Topics in Applied Physics. 109, 377-392 (2007).</li>
<li>Reuven, D., Sil, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Archetypical+Conductive+Polymer+Structure+for+Specific+Interaction+with+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Macromolecular+Science+Part+A%3A+Pure+and+Applied+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Archetypical Conductive Polymer Structure for Specific Interaction with Proteins.</a> Journal of Macromolecular Science Part A: Pure and Applied Chemistry. , Forthcoming (2012).</li>
<li>Ogunro, O., Karunwi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chiral+Asymmetry+of+Helical+Polymer+Nanowire%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physical+Chemistry+Letters%22%5BJournal%5D)">Chiral Asymmetry of Helical Polymer Nanowire.</a> The Journal of Physical Chemistry Letters. 1, 704-707 (2010).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste relatório, nós apresentamos uma abordagem poderosa para preparar nanofibras biofuncionais. As nanofibras são decorados com um grupo funcional que é específico para uma proteína modelo. O procedimento e abordagem relatado nesta comunicação é de natureza geral e pode ser utilizado para preparar nanofibras decorados com qualquer grupo funcional desejado. A polimerização viva aniónico é poderoso método para sintetizar estruturas poliméricas controladas covalentemente ligados a qualquer número de grupos funcionais de i...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Metal de sódio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 282065 </td></tr><tr><td> Benzofenona </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 239852 </td></tr><tr><td> 2-metoxiestireno </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 563064 </td></tr><tr><td> Tetrahidrofurano </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 178810 </td></tr><tr><td> Clorobenzeno </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 319996 </td></tr><tr><td> Solteiro CNT paredes </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 704113 </td></tr><tr><td> Poliestireno </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 81416 </td></tr><tr><td> Wafers de silício </td><td> Silício da Quest Int&#39;l </td><td> 720200 </td></tr><tr><td> Zeiss FESEM </td><td> Carl Zeiss Inc. </td><td> Ultra 60 </td></tr><tr><td> Probestation com Bausch &amp; Lomb MicroZoom II Microscópio de Alto Desempenho </td><td> Bausch e Lomb </td><td></td></tr><tr><td> Leica sistema de digitalização confocal </td><td> Leica Microsystems </td><td> TCS SP2 </td></tr><tr><td> Sub-femtoamp SourceMeter remoto </td><td> Keithley Instruments </td><td> 6430 </td></tr><tr><td> Autoranging multímetro digital </td><td> Keithley Instruments </td><td> 175A </td></tr><tr><td> Bomba de seringa </td><td> Chemyx Inc. </td><td> Fusão 200 </td></tr><tr><td> Zeiss Microscópio Óptico </td><td> Carl Zeiss Inc. </td><td> Zeiss / Axiotech </td></tr></tbody></table>

procedimento para a fabricação de nanofibras biofuncionais

Procedure for Fabricating Biofunctional Nanofibers

Electrospinning é um método de transformação eficiente para a preparação de nanofibras decorados com grupos funcionais. Nanofibras decorados com grupos funcionais podem ser utilizados para estudar o material de biomarcadores interacções isto ato como biossensores com potencial como detectores de moléculas isoladas. Desenvolvemos uma abordagem eficaz para a preparação de polímeros funcionais em que a funcionalidade tem a capacidade de se ligar especificamente a uma proteína modelo. No nosso sistema modelo, o grupo funcional é 2,4-dinitrofenilo (DNP) e a proteína é anti-DNP IgE (imunoglobulina E). O polímero funcional, α, ω-bi [2,4-dinitrofenil capróico] [poli (óxido de etileno)-b-poli (2-metoxiestireno)-b-poli (óxido de etileno)] (CDNP-PEO-P2MS-PEO- CDNP), é preparado por polimerização aniónica vivo. O iniciador difuncional utilizado na polimerização foi preparado por reacção de transferência de electrões de α-metilestireno e metal (espelho) de potássio. O monómero de 2-metoxiestireno foi adicionadaprimeiro para o iniciador, seguindo-se a adição do segundo monómero, óxido de etileno, e, finalmente, o polímero vivo foi terminado por metanol. O α, ω-dihydroxyl polímero [HO-PEO-P2MS-PEO-OH] foi feito reagir com N-2 ,4-DNP-∈-amino capróico, por acoplamento DCC, resultando na formação de α, ω-bi [ 2,4-dinitrophenylcaproic] [poli (óxido de etileno)-b-poli (2-metoxiestireno)-b-poli (óxido de etileno)] (CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP). Os polímeros foram caracterizados por FT-IR, 1H NMR e Cromatografia de Permeação em Gel (GPC). As distribuições de pesos moleculares dos polímeros foram estreito (1.1-1.2) e polímeros com pesos moleculares superiores a 50.000 foi usado neste estudo. Os polímeros foram pós amarelos e solúveis em tetra-hidrofurano. A solúvel em água CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP / DMEG (glicol dimethoxyethylene) complexo se liga e consegue ligação estado constante com solução IgE dentro de alguns segundos. Maior peso molecular (isto é insolúvel em água em torno de 50.000) CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP polímeros, contendo 1% de nanotubos de carbono de parede única (SWCNT) foram transformadas em nanofibras electroactivas (100 nm a 500 nm de diâmetro) sobre o substrato de silício. Espectroscopia de fluorescência mostra que o anti-DNP IgE interage com as nanofibras por ligação com os grupos funcionais DNP decorando as fibras. Estas observações sugerem que nanofibras adequadamente funcionalizados promessa para o desenvolvimento de dispositivo de detecção de biomarcadores.

Uma abordagem eficiente para a preparação de nanofibras decorados com grupos funcionais capazes de interagir especificamente com as proteínas é descrito. A primeira abordagem requer a preparação de um polímero funcionalizado com o grupo funcional apropriado. O polímero funcional é fabricado em nanofibras por electrospinning. A eficácia da ligação das nanofibras com uma proteína é estudada por microscopia confocal.

Procedimento para a fabricação de nanofibras biofuncionais

O eletrofiação é um método de processamento eficaz para a preparação de nanofibras decoradas com grupos funcionais. Nanofibras decoradas com grupos funcionais...

O objetivo geral deste procedimento é preparar nanofibras revestidas com grupos funcionais. Primeiro, sintetize um copolímero em bloco de dois estirenos metoxi e óxido de etileno por meio de polimerização iônica, e caracterize-o por espectroscopia de RMN de prótons. Em seguida, eletrofie a solução do polímero funcional e do nanotubo de parede simples em uma nanofibra composta.Em seguida, determine o comportamento de tensão elétrica das nano fibras após sua exposição à proteína IgE E.Ultimamente, combinar a ANI e uma polimerização vivente com eletrofiação pode produzir nano fibras decoradas com grupos funcionais capazes de se ligar a proteínas específicas. Nessa abordagem para fabricação de nano fibras biofuncionais, uma polimerização vivente permite a síntese facilitada de polímeros biofuncionais com pesos moleculares controlados. Além disso, a técnica de eletrofiação permite a preparação de nano fibras decoradas com grupos funcionais, os quais podem interagir especificamente com proteínas.Este método pode fornecer informações valiosas para diagnósticos médicos. Também pode ser aplicado a outros sistemas, como o monitoramento de qualquer molécula única desejada no ambiente, incorpo

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