Name: Usando RNA mediada estratégia de alimentação Interferência em tela para genes envolvidos na regulação do tamanho corporal na Nemátodo C. elegans (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-13T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 22 s
Description: Aprenda a técnica de alimentação por RNAi para identificar genes que regulam o tamanho corporal em C. elegans. Este método permite triagens genéticas em larga escala para estudar a sinalização DBL-1/TGF-β no desenvolvimento.

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Agradecemos James Clark para a prestação de figuras de animais em vários pontos de tempo de desenvolvimento. C. elegans estirpes neste estudo foram obtidos a partir do Centro de Genética Caenorhabditis, que é suportado pelo National Center for NIH Research Resources (NCRR). Este trabalho foi financiado pelo CIRG 1817 da CUNY a JL e CDS, e pelo NIH 1R15GM073678-01 e 1R15GM097692-01 a CSD Agradecemos ao Dr. William J Rice, Dr. Nathalia Holtzman, e Melissa Silvestrini para comentários sobre o manuscrito. Este trabalho foi realizado em cumprimento parcial das exigências para um grau de doutoramento do Centro de Pós-Graduação da Universidade da Cidade de Nova York (S. Xiong).

1. Preparando Placas de alimentação RNAi de transporte sequência do gene alvo <ol><li> Se o uso de bibliotecas disponíveis comercialmente RNAi (por exemplo, de LifeSciences Fonte BioScience), vá para o passo 1.4. Alternativamente, clonar seqüências de genes-alvo em vetor L4440, um worm comumente usado RNAi plasmídeo 8, por meio de protocolo de clonagem padrão. </li><li> Transformar o plasmídeo recombinante na estirpe bacteriana HT115 (DE3), a cultura deles em placas de agar LB com 25 ug / ml de carbenicilina e 12,5 ug / ml de tetraciclina, e escolher um único clone para uso futuro. </li><li> Enquanto isso, transforma o vector vazio L4440 na estirpe bacteriana HT115 para usar como um controlo para as experiências. </li><li> Cultura tanto recombinantes e vazio L4440-transportam bactérias em 1 ml de caldo LB com 100 ug / ml de ampicilina durante a noite a 37 ° C. Tetraciclina não é adicionado devido ao fato de que ela diminui a eficiência RNAi. </li><li> Adicionar mais 5 ml de caldo LB com 100 ug / ml de ampicilina durante a noite para a culture, incubar por mais 4-6 horas a 37 ° C. </li><li> Semente de 0,5 ml recombinante ou vazio L4440 de transporte de cultura bacteriana sobre as placas sem-fim de RNAi. Rotular todas as placas com o nome de clone. </li><li> Marcar as placas e incubar durante a noite a 37 ° C para crescer camada bacteriana, que são as placas de RNAi com ou sem sequência do gene alvo. Pelo menos duas chapas devem estar preparados para cada condição. </li></ol> 2. Worms cultura nas placas de alimentação RNAi <ol><li> Chama esterilizar a ponta de uma pick verme platina fio. Usar o verme escolher para escolher 6-10 quarta fase larval (L4) para cada placa hermafroditas RNAi que contém L4440 ou recombinante ou vazio, os animais irão utilizar as bactérias como uma fonte de alimento. </li><li> Deixe hermafroditas crescer a 20 ° C (uma condição de cultura padrão para C. elegans) durante a noite, se tornarão adultos jovens no dia seguinte. </li><li> Transferir 6-10 jovens adultos em uma nova placa de RNAi correspondentemente rotulados e preparados. </li><li> Deixe oadultos põem ovos de 4-6 horas, em seguida, remover todos os adultos da placa; este passo é sincronizar a progênie. Uma vez que as mães são removidos, começar a contar o tempo. Este é o tempo zero. </li><li> Incubar as placas a 20 ° C para permitir que animais crescem ao estágio de desenvolvimento específico, neste protocolo, escolhemos jovens adultos para análise fenotípica. Para knockdowns que se desenvolvem a uma taxa normal, 72 h de incubação é suficiente para que os animais se tornem adultos jovens. No entanto, vários genes afectam o desenvolvimento dos animais de forma diferente. Se RNAi faz com que animais a crescer a um ritmo diferente, os jovens adultos pode ser identificada como aqueles hr não mais do que 24 passado completou L4 com desenvolvimento vulvar e 2-6 embriões no útero (se fértil). Para identificar outros estágios de desenvolvimento, o pesquisador deve usar o desenvolvimento gonadal e vulvar como um guia. </li></ol> 3. Fenótipos pontuação de tamanhos de RNAi Tratada Worms <ol><li> Colocar duas camadas de fitas coloridas etiqueta sobre uma lâmina de vidro. Fazer dois doslâminas de vidro se. Em seguida, colocar uma placa de vidro novo entre as duas lâminas com fita. Melt agarose a 2% em água; aplicar uma gota para o centro da lâmina de vidro novo, em seguida, pressionar a lâmina de vidro segundo no topo para fazer uma fina camada de agarose a 2%, tal como descrito anteriormente 9. </li><li> Uma vez agarose é solidificado, retire a lâmina de vidro superior, o slide com agarose almofada está pronto para carregar vermes. Slides etiqueta com o nome do clone. </li><li> Adicionar 10 ul de 25 mM de NaN3 para a almofada de agarose; escolher animais 30-40 no 3 NaN solução para imobilizá-los, em seguida, colocar a lamela na parte superior; repetição para ambos recombinante e vazio L4440 de transporte de animais tratados com RNAi. </li><li> Imagem os vermes sob estereomicroscópio usando lente objetiva de 2,5 x; aqui usamos Leica câmera digital com suporte Qcapture software. </li><li> Para a calibração, em primeiro capturar uma imagem de uma régua micrométrica standard. Em seguida, abra a imagem no Image-Pro Software, clique em &quot;medida&quot; e escolha &quot;calibração&quot; e escolha&quot;Assistente de calibração espacial&quot;. Com a &quot;calibrar a imagem ativa&quot; selecionada, clique em &quot;Avançar&quot;. Introduza o nome para a calibração e garantir que as unidades de referência espaciais estão definidas para micrômetro. Em seguida, marque a opção &quot;criar uma referência de calibração&quot; e clique em &quot;Avançar&quot;. Clique em &quot;linha de referência empate.&quot; Uma barra de escala de referência aparecerá. Mude a posição da barra de escala para combinar com as extremidades do micrômetro, em seguida, indicar que a referência indica 1.000 unidades. Clique em &quot;OK&quot;, &quot;Next&quot; e &quot;Finish&quot;. </li><li> Quando o software estiver calibrado, abrir uma imagem de worm. Em seguida, selecione sob a &quot;medida&quot; menu, selecione &quot;calibração&quot; e clique em &quot;select espacial&quot;. No menu suspenso, selecione o nome do arquivo criado para a calibração do micrômetro. Então, sob a &quot;medida&quot; menu, selecione &quot;medições&quot;. Na janela que se abre, selecione a ferramenta livre desenhar e traçar uma linha através do centro do corpo do animal, da cabeça à cauda com rato do computador (Figura 1). O comprimento será relatado na janela. Agoravocê tem dois grupos de dados: comprimento do corpo dos animais tratados com RNAi gene alvo e os animais controle tratados com vetor L4440 vazio. </li><li> Exportar as medidas de comprimento em um arquivo do Microsoft Excel, ou outro software adequado estatística. Analisar os dados através do cálculo da média e desvio padrão para cada amostra. Em seguida, compare amostras utilizando teste t de Student. </li></ol>

<ol><li>Melnyk, C. W., Molnar, A., Baulcombe, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intercellular+and+systemic+movement+of+RNA+silencing+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+J%22%5BJournal%5D)">Intercellular and systemic movement of RNA silencing signals.</a> Embo J. 30, 3553-3563 (2011).</li>
<li>Wall, N. R., Shi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+RNA%3A+can+RNA+interference+be+exploited+for+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Small RNA: can RNA interference be exploited for therapy.</a> Lancet. 362, 1401-1403 (2003).</li>
<li>Kalantidis, K., Schumacher, H. T., Alexiadis, T., Helm, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+silencing+movement+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">RNA silencing movement in plants.</a> Biol. Cell. 100, 13-26 (2008).</li>
<li>Shim, M. S., Kwon, Y. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+targeted+delivery+of+siRNA+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Febs.+J%22%5BJournal%5D)">Efficient and targeted delivery of siRNA in vivo.</a> Febs. J. 277, 4814-4827 (2010).</li>
<li>Amarzguioui, M., Rossi, J. J., Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Approaches+for+chemically+synthesized+siRNA+and+vector-mediated+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Approaches for chemically synthesized siRNA and vector-mediated RNAi.</a> FEBS Lett. 579, 5974-5981 (2005).</li>
<li>Kamath, R. S., Ahringer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+RNAi+screening+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans.</a> Methods. 30, 313-321 (2003).</li>
<li>Savage-Dunn, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+screen+for+small+body+size+mutants+in+C.+elegans+reveals+many+TGFb+pathway+components%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Genetic screen for small body size mutants in C. elegans reveals many TGFb pathway components.</a> Genesis. 35, 239-247 (2003).</li>
<li>Timmons, L., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+interference+by+ingested+dsRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Specific interference by ingested dsRNA.</a> Nature. 395, 854(1998).</li>
<li>Sulston, J. E., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-embryonic+cell+lineages+of+the+nematode%2C+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Post-embryonic cell lineages of the nematode, Caenorhabditis elegans.</a> Dev. Biol. 56, 110-156 (1977).</li>
<li>Wang, J., Tokarz, R., Savage-Dunn, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+expression+of+TGF%CE%B2+signal+transducers+in+the+hypodermis+regulates+body+size+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The expression of TGFβ signal transducers in the hypodermis regulates body size in C. elegans.</a> Development. 129, 4989-4998 (2002).</li>
<li>Liang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Caenorhabditis+elegans+schnurri+homolog+sma-9+mediates+stage-+and+cell+type-specific+responses+to+DBL-1+BMP-related+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The Caenorhabditis elegans schnurri homolog sma-9 mediates stage- and cell type-specific responses to DBL-1 BMP-related signaling.</a> Development. 130, 6453-6464 (2003).</li>
<li>Savage-Dunn, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGF-%CE%B2+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">TGF-β signaling.</a> WormBook. , 1-12 (2005).</li>
<li>Simmer, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+the+putative+RNA-directed+RNA+polymerase+RRF-3+makes+C.+elegans+hypersensitive+to+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Loss of the putative RNA-directed RNA polymerase RRF-3 makes C. elegans hypersensitive to RNAi.</a> Curr. Biol. 12, 1317-1319 (2002).</li>
<li>Wang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+misexpression+of+germline+P+granules+and+enhanced+RNA+interference+in+retinoblastoma+pathway+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Somatic misexpression of germline P granules and enhanced RNA interference in retinoblastoma pathway mutants.</a> Nature. 436, 593-597 (2005).</li>
<li>De Robertis, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evo-devo%3A+variations+on+ancestral+themes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Evo-devo: variations on ancestral themes.</a> Cell. 132, 185-195 (2008).</li>
<li>Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ingestion+of+bacterially+expressed+dsRNAs+can+produce+specific+and+potent+genetic+interference+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans.</a> Gene. 263, 103-112 (2001).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste protocolo, descrevemos o nosso método para a identificação de mutantes defeituosos o tamanho do corpo de C. elegans alimentação por RNAi. Este método é aplicável para a identificação dos componentes de sinalização de TGF-β. Uma vez que estes componentes são altamente conservadas através da evolução 15, tais telas são relevantes para elucidar os mecanismos moleculares de TGF-β sinalização em todos metazoários. Uma consideração importante na concepção de uma tal tela é a estirpe de partida. Nós d...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Verme placas de RNAi 17,7 g Mix Médio Worm 60 g Agar Adicionar H 2 O a 3 litros. Autoclave. Adicionar 3 ml de 1M IPTG (estéril) e 3 ml de 25 mg / ml de carbenicilina (estéril), e depois verte-se sobre 60 placas de Petri milímetros. Placas de vermes 17,7 g Mix Médio Worm 0,6 g de sulfato de estreptomicina 60 g Agar Adicionar H 2 O a 3 litros. Autoclave. Despeje em 60 milímetros pratos de Petri. Mix Médio Worm 55 g de Tris-Cl 24 g de Tris-OH 310 g de Bacto Peptona 800 mg Colesterol 200 g de NaCl Misturar completamente e ter a certeza de evitar pedaços; esta mistura em pó pode ser armazenado durante muitos meses antes da utilização. 2% de agarose 0,5 g de agarose Anúnciod 25 ml dH 2 O. O calor no forno de microondas até dissolver. 1M isopropil β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG) 2 g IPTG Dissolver em10 mL de dH2O 1M NaN3 6,5 g de NaN3 Adicionar dH 2 O para 100 ml 25 mM de NaN3 2,5 ml de NaN3 1M Adicionar dH 2 O para 100 ml Caenorhabditis elegans de Caenorhabditis Genetics Centro L4440 plasmídeo (transporta resistência à ampicilina gene) Bactérias estirpe HT115 (DE3) (contém IPTG induzível da polimerase T7; deficiente para ARNase III gene (uma dsRNAse), que também transporta gene de resistência à tetraciclina) 16 60 milímetros placas de Petri 100 milímetros placas de Petri 14 ml de fundo redondo cultura tubos Falcon lâminas de vidro lamínulas 1-20 pipetador ul 20-200 pipetador ul 200-1000 ulpipetador 1-200 uL pontas de pipeta 200-1000 uL pontas de pipeta 1,5 ml tubos Eppendorf platina escolha verme fio </td></tr></tbody></table>

usando rna mediada estratégia de alimentação interferência em tela para genes envolvidos na regulação do tamanho corporal na nemátodo<em&gt; c. elegans</em

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

Double-strand RNA de interferência mediada (RNAi) é uma estratégia eficaz para derrubar alvo de expressão gênica 1-3. Ele foi aplicado a muitos sistemas de modelos, incluindo plantas, invertebrados e vertebrados. Existem vários métodos para atingir RNAi in vivo 4,5. Por exemplo, o gene alvo pode ser transformado em um vetor de RNAi, e, em seguida, de forma permanente ou transitória transformado em linhas celulares ou células primárias para alcançar efeitos knockdown do gene, alternativamente sintetizados oligonucleótidos de cadeia dupla a partir de genes alvo específicos (RNAi oligos) pode ser transitoriamente transformadas em linhas celulares ou células primárias de silenciar genes alvo, ou sintetizados moléculas de ARN de cadeia dupla pode ser microinjectado num organismo. Uma vez que o nemátodo C. elegans usa bactérias como fonte de alimento, a alimentação dos animais com bactérias expressando RNA de cadeia dupla contra genes alvo proporciona uma estratégia viável 6. Aqui apresentamos uma alimentação RNAimétodo para marcar fenótipo tamanho do corpo. Tamanho do corpo em C. elegans é regulado principalmente pelo TGF-β - ligante como DBL-1, de modo que este ensaio é adequado para a identificação de TGF-β componentes de sinalização 7. Usamos diferentes cepas incluindo duas linhagens de RNAi hipersensíveis repetir os experimentos de alimentação de RNAi. Nossos resultados mostraram que RRF-3 tensão nos deu o melhor fenótipo RNAi esperado. O método é de fácil execução, reprodutível e facilmente quantificada. Além disso, o nosso protocolo minimiza o uso de equipamento especializado, pelo que é adequado para laboratórios menores ou aqueles em instituições predominantemente de graduação.

Em nossa pesquisa, focamos na regulação do tamanho corporal pela via DBL-1/TGF-β. A perda da função dos resultados DBL-1 via de tamanho pequeno corpo, incluindo um menor comprimento de corpo comparado com animais de tipo selvagem 7,10,11. Assim, telas para C. mutantes tamanho elegans do corpo são capazes de identificar os componentes de sinalização de TGF-β e modificadores. DBL-1 sinalização é mediada por uma via de transdução conservada TGF-β sinal que inclui os receptores da superfície cel...

Nós demonstramos como usar a técnica de alimentação RNAi para derrubar genes-alvo e pontuação fenótipo tamanho do corpo<em&gt; C. elegans</em&gt;. Este método poderia ser utilizado para um ecrã de grande escala para identificar potenciais componentes genéticos de interesse, tais como aqueles que estão envolvidos na regulação do tamanho do corpo por sinalização DBL-1/TGF-β.

Usando RNA mediada estratégia de alimentação Interferência em tela para genes envolvidos na regulação do tamanho corporal na Nemátodo<em&gt; C. elegans</em

A interferência mediada por RNA de fita dupla (RNAi) é uma estratégia eficaz para silenciar a expressão de genes alvo1-3. Ela tem sido aplicada em diversos sistemas modelo...

Este vídeo demonstra um procedimento para identificar genes que regulam o crescimento e o tamanho corporal. Utilizando interferência de RNA ou RNAi para inativar genes candidatos, primeiramente são preparados placas contendo bactérias que expressam RNA de fita dupla, que tem como alvo os genes de interesse. Hermáfragas no quarto estágio larval são transferidas para as placas de RNAi.Uma vez que atingem o estágio de adulto jovem, são transferidos para novas placas de RNAi para pôr ovos. Após várias horas, são removidos, deixando populações sincronizadas de embriões. No estágio desejado de desenvolvimento, a prole é coletada e montada em lâminas.Finalmente, são adquiridas imagens microscópicas dos vermes. A análise da imagem demonstra alterações no tamanho corporal provocadas pela inativação gênica. Embora este método possa ser usado para identificar reguladores da via de sinalização TGF beta, ele também pode ser aplicado a outras vias que regulam o desenvolvimento pós-embrionário em *C. elegans*, como a via de sinalização da insulina.Inicie este procedimento clonando as sequências do gene alvo no vetor L 4 4 4 0 A, um plasmídeo de RNAi comumente usado em vermes; transforme o plasmídeo recombinante na linhagem bacteriana HT one 15 DE three. Incube as bactérias transformadas em placas de ágar LB contendo 25 microgramas por mililitro de carbonic e 12,5 microgramas por mililitro de tetraciclina, em seguida escolha uma única colônia para uso futuro.Enquanto isso, transforme o vetor vazio L 4 4 4 0 na linhagem bacteriana HT one 15. Para utilizar como controle para o cultivo dos experimentos, incube as bactérias transformadas em um mililitro de caldo LB com 100 microgramas por mililitro de ampicilina durante a noite a 37 graus Celsius.A tetraciclina não é adicionada porque reduz a eficiência do RNAI. Adicione outros cinco mililitros de caldo LB com 100 microgramas por mililitro de ampicilina ao cultivo noturno e, em seguida, incube por mais quatro a seis horas a 37 graus Celsius. Quando o cultivo estiver pronto, plaque 0,5 mililitro de bactérias experimentais ou controle nas placas de vermes com RNAI, identificadas com o nome apropriado do clone.Devem ser preparadas pelo menos duas placas para cada condição. Incube as placas durante a noite a 37 graus Celsius. No dia seguinte.Uma camada uniforme de bactérias deve estar presente, expressando RNAi com ou sem a sequência do gene alvo. Os animais utilizarão as bactérias como fonte alimentar. Assim que as placas de alimentação com RNAi estiverem prontas, esterilize a ponta de um fio de platina com chama.Em seguida, use o fio de platina para transferir de seis a dez larvas em estágio L4 ou L quatro C. elegans hermafroditas para cada placa de RNAi. Incube os hermafroditas a 20 graus Celsius durante a noite. No dia seguinte, os animais estarão em estágio de adultos jovens.Transfira-os para uma nova placa RNAi apropriadamente rotulada e preparada. Incube as placas a 20 graus Celsius por quatro a seis horas para permitir que os adultos depositem ovos. Após a incubação, remova todos os adultos da placa para sincronizar a prole.Uma vez removidos os adultos, comece a contar o tempo. Este é o tempo zero. Incube as placas a 20 graus Celsius para permitir que os animais cresçam até a fase de desenvolvimento de interesse.Aqui, adultos jovens serão escolhidos para análise fenotípica. Para os animais com redução da expressão gênica que se desenvolvem em ritmo normal, é necessário um período de incubação de 72 horas. Tenha em mente que diversos genes afetam o desenvolvimento do animal de maneira distinta, portanto os tempos de incubação podem precisar ser ajustados.Se o RNAi causar aos animais um crescimento em uma taxa diferente, adultos jovens podem ser identificados como aqueles com no máximo 24 horas após o L4, com desenvolvimento VUL completo e dois a seis embriões no útero, conforme mostrado aqui. Para identificar outros estágios de desenvolvimento, o pesquisador deve usar o desenvolvimento gonadal e VUL como guia. Uma vez que os animais tenham crescido até o estágio apropriado, prepare-se para avaliar os fenótipos de tamanho corporal dos vermes tratados com RNAi.Em seguida, coloque duas camadas de fita adesiva colorida em uma lâmina de vidro com espessura de um milímetro, conforme mostrado aqui. Prepare duas dessas lâminas de vidro. Depois, posicione uma lâmina de vidro nova entre as duas lâminas com a fita e aplique uma gota de Agros 2% fundido em água.No centro da nova lâmina de vidro, pressione uma segunda lâmina de vidro por cima para formar uma almofada fina de agarose. Uma vez que a agarose tenha solidificado, remova a lâmina superior. A lâmina com a almofada de agarose está pronta para receber os vermes.Rotule a lâmina com o nome do clone. Adicione 10 microlitros de azida de sódio 25 milimolar ao suporte aros. Em seguida, usando um fio de platina como antes, transfira 30 a 40 animais para a solução de azida de sódio.Para imobilizá-los, coloque uma lamínula por cima. Faça isso tanto para os animais recombinantes quanto para os L 4 4 4 0 vazios portadores de RNAi tratados. Em seguida, posicione a lâmina micrométrica sob o microscópio estereoscópico com uma lente objetiva de 2,5 x.Usando o software Q Capture ou outro similar, capture uma imagem da régua micrométrica e salve-a. Em seguida, coloque os vermes sob o microscópio e capture as imagens. Para medir primeiro o comprimento do corpo, abra a imagem da régua micrométrica no software Image Pro.Em seguida, clique em medir e escolha calibração. Depois, selecione o assistente de calibração espacial com a opção calibrar a imagem ativa selecionada. Clique em próximo.Digite o nome para a calibração e certifique-se de que as unidades de referência espacial estejam definidas em mícrons. Em seguida, marque a caixa Criar uma calibração de referência e clique em Avançar. Clique em desenhar linha de referência.Uma barra de escala de referência aparecerá. Reposicione a barra de escala para alinhá-la às extremidades do micrômetro. Em seguida, indique que a referência corresponde a 1000 unidades.Clique em OK. Depois e em concluir. Uma vez que o software estiver calibrado, abra uma imagem de um verme.Em seguida, no menu medir, selecione calibração e depois clique em selecionar espacial. No menu suspenso, selecione o nome do arquivo criado para a calibração do micrômetro. Em seguida, no menu medir, selecione medições na janela que abrir.Selecione a ferramenta de desenho livre e, utilizando o mouse do computador, trace uma linha pelo centro do corpo do animal, do cabeça ao rabo. O comprimento será exibido na janela. Repita este processo para todos os animais no campo.Exporte as medidas de comprimento para um arquivo do Microsoft Excel ou outro software estatístico apropriado. Analise os dados calculando a média e o desvio padrão para cada amostra. Em seguida, compare os resultados de cada grupo utilizando um teste t de Student.A proteína DBL um da superfamília do fator de crescimento transformador beta ou TGF beta é necessária para a ativação da via do TGF beta. Em resposta à ativação do sinal, os transdutores de sinal intracelulares smad translocam-se para o núcleo e iniciam a transcrição gênica. Ver elegância na qual a via do TGF beta é interrompida apresenta tamanho corporal menor, incluindo comprimento corporal mais curto do que animais do tipo selvagem.Assim, telas para C. elegans são capazes de identificar componentes e modificadores da sinalização TGF beta e testar a eficácia do RNAi por alimentação para a identificação de mutantes de tamanho corporal. O RNAi foi usado para reduzir os componentes da via DBL-1, SMA-3 e SMA-6, em quatro linhagens diferentes de C. elegans.As linhagens de C. elegans testadas incluíram duas com hipersensibilidade a RNAi: A um, Lin 15 B e RF três, bem como a linhagem selvagem padrão N dois e a linhagem LIN 36, cuja sensibilidade ao RNAi é semelhante à de N dois, conforme demonstrado aqui. Quando a expressão de SMA três ou SMA seis foi interrompida, os animais exibiram um tamanho corporal significativamente menor do que os animais controle, exceto no caso de RNAi para SMA seis em Lin 36. Fundo em RF três.Os comprimentos corporais de adultos jovens após o tratamento com RNAi foram de 84 a 95% dos animais tratados apenas com vetor. Em um fundo genético Lin-15B, os comprimentos corporais de adultos jovens após RNAi foram de 68 a 86% dos animais controle. No entanto, a linhagem lin-15B produz pouca prole.Isso as torna inadequadas para triagem em larga escala. Portanto, sugere-se o uso da linhagem RF de três cepas para essas técnicas. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como identificar genes que regulam o crescimento e o tamanho corporal utilizando a técnica de interferência por RNI.

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Enquanto dsRNA alimentação em C. elegans é uma ferramenta poderosa para avaliar a função do gene, os protocolos atuais para telas de alimentação em grande escala resultar em eficiências knockdown variáveis. Descreve-se um protocolo melhorado para a realização em grande escala de RNAi telas de alimentação, que resulta em knockdown altamente eficaz e reprodutível de expressão do gene.

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C. elegans tem emergido como um novo modelo genético para estudar as interações patógeno-hospedeiro. Aqui nós descrevemos um protocolo para infectar C. elegans com Salmonella typhimurium, juntamente com a técnica de interferência dupla vertente RNAi para examinar o papel dos genes do hospedeiro na defesa contra a infecção por Salmonella.

Um protocolo para infectar<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Com<em&gt; Salmonella typhimurium</em

Aqui detalhamos protocolos projetados especificamente para monitorar defeitos morfogênicos que ocorrem durante as fases inicial e tardia do alongamento embrionário do nematóide Caenorhabditis elegans. Em última análise, esses protocolos são projetados para identificar genes que regulam essas fases e caracterizar suas necessidades diferenciais ao longo do eixo ântero-posterior do embrião.

Novas métricas para Caracterizar Embryonic Alongamento do nemátodo<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Este protocolo demonstra como controlar uma translocação nuclear da proteína sob estresse de calor, usando uma fluorescência verde (GFP) de proteína proteína da fusão como um marcador e 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) coloração. O DAPI protocolo de coloração é rápido e preserva os sinais de Localização subcellular GFP e proteína.

Detectar a localização Subcellular da proteína por marcação de proteína de fluorescência verde e 4' 6-Diamidino-2-phenylindole de coloração em Caenorhabditis elegans

Para estudar as interações acompanhante-acompanhante e acompanhante-substrato, realizamos telas de interação sintética em elegans caenorhabditis usando interferência de RNA em combinação com mutações leves ou sobre-expressão de acompanhantes e monitorar disfunção proteica específica do tecido no nível do organismo.

Usando elegans caenorhabditis para tela para interações de acompanhantes específicas de tecido

Caenorhabditis elegans servem como um excelente sistema de modelos com métodos robustos e de baixo custo para levantamento da vida saudável, vida útil e resiliência ao estresse.

Pesquisando métodos de baixo custo para medir a expectativa de vida e a saúde em Caenorhabditis elegans

Aprenda a técnica de alimentação por RNAi para identificar genes que regulam o tamanho corporal em C. elegans. Este método permite triagens genéticas em larga escala para estudar a sinalização DBL-1/TGF-β no desenvolvimento.

Usando RNA mediada estratégia de alimentação Interferência em tela para genes envolvidos na regulação do tamanho corporal na Nemátodo C. elegans (Vídeo) | JoVE Journal

Usando RNA mediada estratégia de alimentação Interferência em tela para genes envolvidos na regulação do tamanho corporal na Nemátodo

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