Name: Imagem Molecular para atingir as células progenitoras transplantadas musculares (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-27T08:54:00.000+00:00
Duration: 9 min 24 s
Description: Aprenda a avaliar o sucesso do transplante de mioblastos usando imagem de bioluminescência com gene repórter trifusão em camundongos MDX. Este método não invasivo permite rastrear células transplantadas em modelos de distrofia muscular.

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Os autores gostariam de agradecer a Sanjiv Gambhir pelo dom do gene repórter fluc/mrfp/sr39tk. Este trabalho foi financiado pela Rede de Células-Tronco (SCN) do Canadá, e Fundação de Jesse Journey.

1. Manutenção e propagação de mioblastos C2C12 <ol><li> Placa mioblastos C2C12 em um frasco de 75 cm 2, e manter as células em soro Modificado por Dulbecco de alta glucose de Eagle (DMEM-HG), suplementado com soro bovino fetal (FBS) a uma concentração final de 10%. Não permitir que as células se tornam confluentes, a qualquer momento, pois isso irá esgotar a população mioblásticas. Meio deverá ser trocado a cada outro dia Nota:. Meio sempre quente a 37 ° C num banho de água antes da sua utilização. </li><li> Quando mioblastos tornar cerca de 80% confluentes, as células de passagem para um novo frasco. Aspirar o meio de cultura. Lavar as células com 4-5 ml de Solução de Sal Equilibrada de Hanks (HBSS), para remover todos os vestígios de meio de cultura, que contém inibidor de tripsina de soro. Resumidamente lavar a camada de células com 2-3 ml de 0,25% (w / v) de solução de tripsina-EDTA para dissociar os mioblastos aderentes provenientes do frasco. Aspirar tripsina e balão lugar em estufa a 37 ° C durante 5 min. </li><li> Durante esta incubaçãoção, preparar um novo frasco com 9 ml de HG-DMEM/10% FBS. Após tripsinização, adicionam-se 10 ml de meio completo para células e tempos de pipeta 4-5 para garantir a recolha de todas as células no meio. Adicionar 1 ml de suspensão de células para o balão de novo e incubar em 5% de CO2 a 37 ° C. </li></ol> 2. A transfecção celular C2C12 <ol><li> Uma vez que as células atingiram 50% de confluência, transfectar de acordo com as instruções do fabricante a partir de Invitrogen. Resumidamente, combinar 90 ul de reagente Lipofectamine 2000 com 4,5 ml de meio OPTI-MEM. Em outro tubo, combinar 36 ug trifusion CMV-DNA do gene repórter com 4,5 ml OPTI-MEM. Flick cada tubo para combinar e esperar 5 min. Combinar o conteúdo de ambos os tubos, misturar gentilmente e incubar à temperatura ambiente durante exactamente 30 minutos Nota:. Um segundo frasco deve também ser configurado para células não transfectadas que apenas recebem Lipofectamine e OPTI-MEM para servir como um controlo negativo. </li><li> Remover meio de células C2C12 e adicionar 15,5ml de fresco HG-DMEM/10 FBS%. Adicionar meio de transfecção para levar o volume total a 20 ml. </li><li> Permitir que as células durante a noite para transfectar pelo menos durante 20 horas a 37 ° C. </li><li> No dia seguinte, aspirar meio de transfecção e juntar 10 ml HG-DMEM/10% de FBS. </li><li> Ver células em um microscópio invertido fluorescente. Capture o campo claro e vermelho imagens de fluorescência (usando um cubo TRITC filtro; MRFP ex / em: 584/607 nm). Contar o número de células que expressam RFP visualizados sob fluorescência dividido pelo número total de células vistas sob campo brilhante para múltiplos campos de visão para gerar a eficiência da transfecção. </li></ol> 3. Avaliação da sobrevivência celular Ensaio / MTT <ol><li> Um dia antes da transfecção, placa de 1x10 5 células C2C12 em cada poço de uma placa de 24 poços. As células devem ser plaqueadas em 500 uL volumes de HG-DMEM/10% de FBS. </li><li> No dia seguinte, os mioblastos transfectam durante a noite, como descrito anteriormente. Siga as sugestões do fabricante para transfecção Reagenvolumes de t para uma placa de 24 poços. Incubar de um conjunto de poços com Lipofectamine apenas (sem ADN) como um controlo. Ver células sob fluorescência para assegurar que a transfecção apropriada ocorreu. </li><li> Remover meio de transfecção e mioblastos incubar com 5 mg / ml tiazolil azul de tetrazólio (MTT) em HG-DMEM/10% de FBS. Adicionar D-luciferina a oito dos poços transfectadas, e incubar a 37 ° C durante quatro horas. </li><li> Remover meio de poços. Solubilizar os cristais de formazan azuis, adicionando 180 ul de isopropanol a cada poço. Agitar a 37 ° C durante 15 min. </li><li> Evitando qualquer precipitado solução pipeta, em uma placa de 96 poços e ler a absorvância a 575 nm. </li></ol> 4. Preparação de Mioblastos para transplante <ol><li> Remover meio, lavar mioblastos com HBSS, e Tripsinizar as células como descrito em 1.1. </li><li> Re-suspender as células em 4 ml de meio completo. </li><li> Usando um hemocitómetro, contagem de células para gerar volumes contendo 10 6 mioblastos. Pipeta volume em microtubos estéreis 1,5 ml. Com uma eficiência de transfecção de ~ 10%, estes valores indicam que 100.000 células que expressam luciferase são detectáveis ​​no scanner ExploreOptix GE após o transplante. </li><li> Atingir um volume final de injecção de 15 uL, contendo 10 6 células C2C12. Se necessário, centrifugar microtubos em 2000 rpm durante um minuto. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante com uma pipeta. Re-suspender as células em 15 ul de HG-DMEM sem FBS. </li></ol> 5. O implante de células <ol><li> Anestesiar rato com isoflurano a 2% / 2% O 2. Arrancar pêlos da região dorsal do membro posterior. Manter a anestesia com 1,5% de isoflurano / O 2 a 2%. </li><li> Assegurar mioblastos C2C12 são bem suspensa. Com o mouse em uma posição de bruços, estender o membro posterior e usar uma seringa de insulina para injetar células diretamente na cabeça lateral do músculo gastrocnêmio em um ângulo de 30 °. Injectar mioblastos transfectados na pata traseira direita e int mioblastos não transfectadoso O membro (esquerda) contralateral traseira. </li><li> Realizar uma varredura bioluminescência base: Rapidamente transferir mouse para estágio no scanner óptico, colocando o mouse em uma posição de bruços. Ligue a linha de anestésico. Para garantir o mouse permanece anestesiado, uma segunda pessoa deve estar presente para ligar a linha de anestésico, enquanto os outros lugares o animal no scanner. </li><li> Suavemente estender o membro traseiro para que a área de injecção é visível. Membros de fitas traseiras no lugar com um adesivo suave como fita médica. </li><li> Fechar a câmara e garantir que a luz não pode aceder ao interior do scanner, como isto irá aumentar o sinal de fundo detectado. O scanner deve ser definido como parâmetros incluídos nas instruções do fabricante para obter imagem de bioluminescência. Especificamente, garantir &quot;não laser&quot; é selecionado. </li><li> Desenhe uma região de interesse (ROI) em torno da área depenados e varredura início. </li></ol> 6. Injecção de Substrato Fluc, D-luciferina, em rato Mdx &lt;ol&gt; <li> Enquanto o rato é anestesiado por via intraperitoneal injectar 150 mg / kg de substrato de luciferase do pirilampo, D-luciferina (de um a 40 mg / ml de solução concentrada, constituída de acordo com as instruções do fabricante). </li><li> Recuperar mouse e permitir um período de 15 minutos antes de preparar a captação do rato para a próxima verificação. </li></ol> 7. BLI para Target Luc expressam PPM Após Implante em ratos de DMD <ol><li> Após o período de absorção, anestesiar rato de novo, como se descreveu em 5.1. </li><li> Transferir o mouse de volta para o leitor óptico e executar outra verificação bioluminescência da mesma maneira como a verificação do fundo. </li><li> Embora um período de 20 min a absorção deve fornecer a intensidade máxima do sinal, uma verificação subsequente pode ser realizada. </li><li> Após a conclusão da aquisição da imagem, sacrificar o mouse de acordo com as diretrizes definidas pelo Comitê de Ética Institucional animal e do Canadian Council on Animal Care (CCAC). Isolar muscular dos membros posteriores e local imediatamente in formalina a 10% para corrigir para emblocamento parafina. Realização da coloração imuno-histoquímica para luciferase para confirmar a injeção intramuscular de mioblastos. </li></ol>

<ol><li>Emery, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+muscular+dystrophies%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">The muscular dystrophies.</a> Lancet. 359, 687-695 (2002).</li>
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</ol>

Autores têm nada a revelar.

Neste estudo, descrevemos uma rápida e fiável molecular imaging, a abordagem de gene repórter de mioblastos não invasiva alvo / PPM após o transplante. Embora este estudo demonstra a localização de curto prazo de PPM transplantados via bioluminescense imaging (BLI), o modo pelo qual as células são alvejados podem, de facto, ser facilmente aplicado a uma avaliação longitudinal do enxerto de células, através da implantação de células que expressam estavelmente o gene repórter. Para este fim, o n...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> Mioblastos C2C12 </td><td> ATCC </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Meio de Dulbecco Modificado de Eagle </td><td> Life Technologies </td><td> 12800-017 </td><td></td></tr><tr><td> de soro fetal bovino </td><td> Life Technologies </td><td> 12483020 </td><td></td></tr><tr><td> 0,25% Tripsina-EDTA </td><td> Life Technologies </td><td> 25200-72 </td><td></td></tr><tr><td> Hanks Balanced Salt Solution </td><td> Sigma Aldrich </td><td> H6648 </td><td></td></tr><tr><td> Lipofectamine 2000 </td><td> Life Technologies </td><td> 11668-019 </td><td></td></tr><tr><td> Nikon Eclipse TE2000-5 </td><td> Nikon Instruments Inc. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Xenolight D-luciferina </td><td> PerkinElmer </td><td> 122796 </td><td> 40 mg / ml em PBS </td></tr></tbody></table>

imagem molecular para atingir as células progenitoras transplantadas musculares

Molecular Imaging to Target Transplanted Muscle Progenitor Cells

Distrofia muscular de Duchenne (DMD) é uma doença genética grave neuromuscular que afeta 1 em cada 3.500 meninos, e é caracterizada por degeneração muscular progressiva 1, 2. Em pacientes, a capacidade das células satélites do músculo residentes (SCs) para regenerar miofibras danificadas torna-se cada vez menos eficaz 4. Assim, o transplante de células progenitoras musculares (PPM) / mioblastos de indivíduos saudáveis ​​é uma abordagem terapêutica promissora para DMD. Um grande limitação para a utilização da terapia de células-tronco, contudo, é uma falta de tecnologias de imagem fiáveis ​​para acompanhamento a longo prazo das células implantadas, e para avaliar a sua eficácia. Aqui, nós descrevemos um método não invasivo, a abordagem em tempo real, para avaliar o sucesso do transplante de mioblastos. Este método tira vantagem de um gene repórter unificado de fusão composta de genes (a luciferase do pirilampo [flutuações], proteína fluorescente vermelha monomérica [MRFP] e SR39 timidina-quinase [sr39tk]) Expre cujossion pode ser trabalhada com diferentes modalidades de imagem 9, 10. Uma variedade de métodos de imagem, incluindo tomografia por emissão de pósitrons (PET), emissão de fóton único tomografia computadorizada (SPECT), ressonância magnética (MRI), de imagem óptica, e alta freqüência 3D ultra-som já estão disponíveis, cada um com suas vantagens e limitações 11. Bioluminescência de imagem (BLI) estudos, por exemplo, têm a vantagem de ser de custo relativamente baixo e de alto rendimento. É por este motivo que, no presente estudo, que fazem uso da luciferase do pirilampo sequência do gene (flutuações) repórter contido dentro do gene de fusão e de imagem de bioluminescência (BLI) para a localização de curto prazo de mioblastos C2C12 viáveis ​​após a implantação num ratinho modelo de DMD (distrofia muscular no cromossomo X [mdx] mouse) 12-14. Importante, BLI nos fornece um meio para analisar a cinética de PPM rotulados pós-implantação, e vai ser útil para rastrear células repetidamente sobre tIME e migração seguinte. Nossa abordagem de gene repórter ainda nos permite mesclar várias modalidades de imagem em um único sujeito vivo, dada a natureza tomográficos, resolução espacial fina e capacidade de escalar até animais maiores e os seres humanos 10,11, PET irá formar a base do trabalho futuro que sugerem podem facilitar a tradução rápida dos métodos desenvolvidos nas células a modelos pré-clínicos e para aplicações clínicas.

Aquando de 50-60% de confluência, mioblastos C2C12 foram transitoriamente transfectadas com o referido gene repórter construção de fusão composta de luciferase de pirilampo [flutuações], monomérica da proteína fluorescente vermelha [MRFP] e SR39 timidina quinase [sr39tk] (Figura 1A). A eficiência de transfecção foi calculado por meio de microscopia de fluorescência (Figura 1B, C), fazendo uso da sequência MRFP na nossa construção repórter. A capacidad...

Um meio não-invasivo para avaliar o sucesso do transplante de mioblastos é descrito. O método leva vantagem de um gene de fusão unificada repórter composto de genes cuja expressão pode ser trabalhada com diferentes modalidades de imagem. Aqui, fazemos uso de um<em&gt; Flutuações</em&gt; Seqüência do gene repórter para atingir as células através de imagem de bioluminescência.

Imagem Molecular para atingir as células progenitoras transplantadas musculares

Duchenne muscular dystrophy (DMD) is a severe genetic neuromuscular disorder that affects 1 in 3,500 boys, and is characterized by progressive muscle ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar de forma não invasiva o sucesso do transplante de mioblastos usando uma abordagem de gene repórter e imagem de bioluminescência. Isso é conseguido pela introdução do gene relatado por trifusão que expressa f Luke, MRFP e SR três 90 tk sob o controle do promotor do CMV na linha celular de mioblastos C dois C 12 imortalizada. O segundo passo é quantificar o número de mioblastos que expressam o gene porter.Neste estudo, a eficiência da transfecção é calculada contando as células que expressam MRFP em um microscópio de fluorescência. Em seguida, 10 a cinco células modificadas em um volume igual ou inferior a 15 microlitros são implantadas por via intramuscular no membro posterior de camundongos MDX distróficos. As células transfectadas da UNT são implantadas no membro posterior contralateral como controle e, em seguida, uma varredura de linha de base é realizada.A etapa final é intraperitoneal, injetar o substrato genético relatado por Luke Lúcifer após um período de captação de cerca de 20 minutos, realizar uma segunda varredura de bioluminescência para adquirir uma imagem das células implantadas. Em última análise, a captação de Lúcifer é observada especificamente em células que expressam f Luke sem bioluminescência detectável em células de controle que não expressam o gene de relatório. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da tecnologia de transferência de perda leve, como a migração de células pós-implantação, bem como a sobrevivência celular após o transplante.As implicações desta técnica se estendem à terapia para doenças musculares, como a distrofia muscular de Duchenne, porque é um meio rápido e confiável de atingir células de forma não invasiva Após o transplante, podemos avaliar a área enxertada ao longo do tempo e avaliar o sucesso ou fracasso do tratamento. Demonstrando o procedimento estarão Kelly gut pe, uma estudante de pós-graduação, e Rebecca Mcg, uma técnica de pesquisa de nosso laboratório, desculpe, Cultura C dois mioblastos C 12 em meio de águias modificado com alto teor de glicose dcos com 10% de soro bovino fetal de acordo com os procedimentos padrão para esta linha celular. Não permita que as células se tornem mais de 80% confluentes, pois isso esgotará a população miótica.Para preparar as células para a transfecção primeiro, colha as células do frasco de estoque cobrindo brevemente a camada de células de enxágue do HBSS com tripsina. Em seguida, aspirar rapidamente a tripsina e colocar o frasco na incubadora de cultura de tecidos por cinco minutos. Durante a incubação, preparar dois frascos T 75 contendo cada um nove mililitros de meio de cultura.Quando o tempo de incubação estiver concluído, adicione 10 mililitros de meio ao frasco e enxágue o meio sobre o fundo do frasco quatro a cinco vezes para garantir a coleta de todas as células. Em seguida, semear cada um dos balões T 75 com um décimo da suspensão celular do balão T 75. Ao tentar este procedimento pela primeira vez, realize um ensaio de MTT para avaliar o efeito da marcação celular na sobrevivência e diferenciação celular e a viabilidade de mioblastos modificados antes do transplante.Quando as células atingirem 50% de confluência, transfectar um frasco T 75 com 36 microgramas do gene repórter de fusão CMV Tri em um volume de 4,5 mililitros de ideal usando Lipofectamine 2000 de acordo com as instruções do fabricante. Além disso, realizar uma transfecção simulada do segundo frasco T 75 usando apenas lipo 2000 e optimum sem DNA como controle negativo. Deixe as células transfectarem por pelo menos 20 horas a 37 graus Celsius no dia seguinte, aspire o meio de transfecção e substitua pelo volume adequado de meio de cultura usando um microscópio fluorescente invertido.Capture imagens de fluorescência de campo claro e vermelho para calcular a eficiência da transfecção. Após a colheita do mioblasto transfectado por tripsina e resus suspendendo as células em quatro mililitros de meio completo, use um hemocitômetro para realizar uma contagem de células. Pipete 10 para as seis células em um microtubo estéril de 1,5 mililitro com uma eficiência de transfecção de cerca de 10% Este número de células deve dar origem a 100.000 matrizes de Lúcifer detectáveis expressando células após o transplante, o volume final de injeção deve ser de 15 microlitros.Se o volume no tubo for maior que isso, centrifugue os microtubos a 2000 RPM por um minuto, asate o supinato e, em seguida, dobre novamente em um volume máximo de 15 microlitros de crescimento. Meio sem FBS Após induzir a anestesia no camundongo usando 2% de flúor, mude para 1,5% de flúor para manutenção da anestesia. Durante o procedimento, coloque o mouse em decúbito ventral e arranque os pelos da área dos membros posteriores dorsais.Certifique-se de que os mioblastos C e C 12 estejam bem suspensos e, em seguida, carregue a suspensão celular em uma seringa de insulina. Injete as células diretamente na cabeça lateral do músculo gastrointestinal em um ângulo de 30 graus. Depois de injetar mioblastos transfectados no membro posterior direito, repita o procedimento com mioblastos transfectados UNT no membro posterior contralateral.Realize uma varredura de bioluminescência de linha de base. Uma pessoa deve transferir rapidamente o mouse para o palco no scanner óptico, colocando o mouse em uma posição de bruços. Uma segunda pessoa conecta simultaneamente a linha anestésica para garantir que o camundongo permaneça anestesiado.Estenda suavemente os membros posteriores e use fita adesiva para manter o membro no lugar, de modo que ambas as áreas de injeção fiquem visíveis. Feche a câmara e certifique-se de que nenhuma luz possa acessar o interior do scanner, pois isso aumentará o sinal de fundo detectado. O scanner deve ser ajustado para os parâmetros incluídos nas instruções do fabricante para imagens de bioluminescência.Desenhe uma região de interesse ao redor da área injetada arrancada e inicie a varredura para obter a imagem de linha de base enquanto o camundongo está anestesiado. Intraperitoneal. Injete 150 miligramas por quilograma de substrato de luciferase de vaga-lume Lúcifer em. Coloque o mouse em uma gaiola limpa e deixe-o se recuperar da anestesia.Aguarde um período de absorção de 15 minutos antes de preparar o mouse para a próxima varredura. Após o período de absorção de 15 minutos. Anestesie o mouse e transfira para o scanner como antes.Execute uma segunda varredura por luminescência da mesma maneira que a varredura em segundo plano. O período total de captação de 20 minutos deve fornecer intensidade máxima do sinal, mas uma varredura subsequente pode ser realizada, se desejado. Este esquema mostra a construção do repórter CMV Tri Fusion.O painel esquerdo mostra a imagem de campo brilhante de C dois mioblastos C 12 transfectados com o plasmídeo repórter de fusão, e o painel direito mostra a mesma região de uma imagem de fluorescência como visto aqui. Uma região de interesse é desenhada para envolver a área dos membros posteriores depenados onde os mioblastos foram injetados. A bioluminescência não é detectada durante uma varredura em segundo plano.Aos 23 minutos após a injeção de Luciferian, um sinal claro é detectado no membro posterior direito, onde a luciferase expressando mioblastos foi injetada. Nenhuma bioluminescência é detectada no membro posterior contralateral injetado com mioblastos não ressecados, como visto. Aqui, a imuno-histoquímica usando um anticorpo luciferase de vaga-lume confirma a implantação intramuscular de células C duas C 12 transfectadas.Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de usar técnicas de cultura de tecidos assépticos e práticas apropriadas de manuseio de animais após seu desenvolvimento. Essa técnica abriu caminho para pesquisadores no campo das doenças musculares explorarem a eficácia da terapia celular por enquanto em modelos pré-clínicos de pequenos animais de uma doença. Então, mais tarde, no ambiente clínico em pacientes, depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como implantar células e como localizar de forma não invasiva mioblastos transplantados projetados usando imagens de bioluminescência.

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Descreve-se o método de células-tronco de programação para superexpressão fatores terapêuticos para angiogênese utilizando nanopartículas poliméricas biodegradáveis. Processos descritos incluem a síntese do polímero, a transfecção de células estaminais derivadas de tecido adiposo, in vitro, e para validar a eficácia das células estaminais programadas para promover a angiogénese num modelo de isquemia dos membros posteriores de murino.

Células-tronco de programação para Therapeutic angiogênese Usando nanopartículas poliméricas biodegradáveis

O isolamento e cultura de uma população pura de células satélites quiescentes, uma população de células estaminais musculares, é essencial para a compreensão da haste músculo biologia celular e regeneração, bem como o transplante de células estaminais para terapias em distrofia muscular e outras doenças degenerativas.

Isolamento, cultura e transplante de células musculares satélite

Este protocolo descreve a radiomarcação de células-tronco mesenquimais equinas e sua implantação em lesões tendinosas no cavalo, a fim de determinar a sobrevivência celular e a distribuição tecidual usando cintilografia gama.

In Vivo Imaging and Rastreamento de Tecnécio-99m Rotulado de Medula Óssea Células-Tronco Mesenquimais em Equine Tendinopatia

Aqui usamos bioluminescentes, raio-x e positron-emissão calculado a tomografia computadorizada/tomografia computadorizada de imagem para estudar a atividade como a inibição de mTOR impactos tumores de medula óssea-incorporada do mieloma múltiplo em um modelo de transplante. Isto permite análises fisiologicamente relevantes, não-invasivo e multimodais do efeito antimieloma de terapias direcionamento incorporada a medula óssea mieloma tumores na vivo.

Imagem de tomografia computadorizada multimodal bioluminescentes e emissão positrônica Tomography/computacional de mieloma múltiplo Xenografts de medula óssea em camundongos NOG

Descrevemos o transplante intraparenquimal de células progenitoras neurais transduzidas com um vetor de repórter duplo expressando proteína fluorescente verde-luciferase (GFP) no cérebro do camundongo. Após o transplante, o sinal de luciferase é repetidamente medido usando bioluminescência in vivo e células enxertadas expressas por GFP identificadas em seções cerebrais usando microscopia de fluorescência.

Transplante intracerebral e rastreamento de bioluminescência in vivo de células progenitoras neurais humanas no cérebro do camundongo

O protocolo aqui apresentado permite a identificação e análise de alta dimensão de células-tronco musculares e progenitoras por citometria de massa de célula única e sua purificação por FACS para estudos aprofundados de sua função. Essa abordagem pode ser aplicada para estudar a dinâmica de regeneração em modelos de doenças e testar a eficácia de intervenções farmacológicas.

Identificação e análise de progenitores miogênicos in vivo durante lesão muscular esquelética aguda por citometria de massa de célula única de alta dimensão

A terapia celular oferece uma intervenção promissora para a fibrose pulmonar usando células progenitoras para reparar tecidos danificados e melhorar a função pulmonar. Como a imagem desempenha um papel fundamental no rastreamento da integração celular, descrevemos o rastreamento in vivo guiado por imagens de partículas magnéticas da terapia celular para fibrose pulmonar em um modelo de camundongo.

Rastreamento in vivo guiado por imagem de células progenitoras epiteliais pulmonares distais transplantadas para fibrose pulmonar usando imagens de partículas magnéticas

Aprenda a avaliar o sucesso do transplante de mioblastos usando imagem de bioluminescência com gene repórter trifusão em camundongos MDX. Este método não invasivo permite rastrear células transplantadas em modelos de distrofia muscular.

Imagem Molecular para atingir as células progenitoras transplantadas musculares

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