Name: Isolamento e Enriquecimento da Human adiposo-derivadas células estromais para Osteogenesis Aprimorado (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-12T14:30:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: Aprenda a isolar subpopulações de células-tronco adiposas humanas com potencial osteogênico aprimorado usando citometria de fluxo. Este método avança a medicina regenerativa e terapias translacionais para reconstrução craniofacial.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este estudo foi financiado pelo National Institutes of Health Research concessão R01-DE021683-01 e National Institutes of Health Research concessão R01-DE019434 para MTL; Howard Hughes Medical Institute Research Fellowship para MTCDCW foi apoiado pela ACS Franklin Martin Faculdade Research Fellowship, O Laboratório Hagey for Pediatric Regenerative Medicine, e do Instituto de Pesquisa de Saúde Infantil da Universidade de Stanford Faculdade Scholar Award.

NOTA: Todas as amostras dos pacientes foram obtidos com o consentimento informado, e os protocolos experimentais foram revistos e aprovados pela Stanford University Institutional Review Board (Protocolo nº 2188 e # 9999). 1. Isolamento celular e Cultura: <ol><li> Obter tecido adiposo subcutâneo humano de pacientes saudáveis ​​do sexo feminino submetidos a lipoaspiração eletiva do abdômen, flanco, e / ou região de coxa sob anestesia local / geral. Certifique-se de que Institutional Review Board (IRB) a aprovação foi obtida para o protocolo de isolar ASC de tecidos humanos, e siga as precauções de segurança institucionais ao trabalhar com esses materiais. </li><li> Para obter o SVF a partir do tecido adiposo lipoaspirated, lava-se a primeira lipoaspirado três vezes com volumes iguais de solução salina tamponada 1x com fosfato estéril (PBS). Aspirar cuidadosamente e descartar a camada aquosa inferior. </li><li> Preparar o tampão de digestão de colagenase: 0,075% de colagenase do Tipo I em HankBalanced Salt Solution (HBSS). Preparar tampão de FACS: 2% de FBS, 1% P188 e 1% de Pen-Strep em PBS. Filtrar ambas as soluções através de um tamanho de poro de 0,22 um fluxo rápido filtro polietersulfona disponível comercialmente. </li><li> Para digerir o tecido adiposo lavada, adicionar um volume igual de tampão de digestão com colagenase e colocar vaso de digestão de forma segura em um banho de água com agitação durante 60 min a 37 ° C (cerca de 180 agitações / min). NOTA: É melhor utilizar um vaso de digestão volume maior do que o necessário, pois isso permite uma digestão durante a agitação máxima (isto é, 250 ml de tampão de digestão com colagenase, de 250 ml de tecido adiposo lavado em um frasco estéril 1L). </li><li> Neutraliza-se a actividade enzimática por adição de um volume igual de tampão de FACS e permitindo a sentar-se à TA durante 5 min. Em seguida, centrifugar a 233 xg durante 20 min a 4 ° C. </li><li> Aspirar cuidadosamente e desprezar o sobrenadante, tomando cuidado para não perturbar o SVF pellet de alta densidade. </li><li> Ressuspender o sedimento em 5-10 ml de RT vermelhocélulas de tampão de lise, com base no tamanho da pelota. Deixar a solução sentar à temperatura ambiente durante 5 min e centrifugar a 233 xg durante 5 min à temperatura ambiente. </li><li> Aspirar o sobrenadante e ressuspender o sedimento, adicionando 5-10 ml de meio de crescimento tradicional, com base no tamanho da pelota (Dulbecco Modified Eagle Medium [DMEM] / FBS a 10% / 1% de solução de penicilina-estreptomicina [pen-strep]). </li><li> Filtra-se a suspensão através de um filtro de células de 100 mm de nylon para remover os detritos celulares. </li><li> Centrifuga-se a 233 xg durante 5 min a 4 ° C, e desprezar o sobrenadante sem perturbar o sedimento. </li><li> Ressuspender o sedimento em 5-10 ml de meio de crescimento tradicional, com base no tamanho do sedimento. </li><li> Coloque 2 x 10 6 células em uma placa de cultura de 15 centímetros padrão e estabelecer culturas primárias O / N a 37 ° C / 21% de O2, 5% de CO 2. Mantém-se a níveis sub-confluente para impedir a diferenciação espontânea a 37 ° C / 21% de O2, 5% de CO 2 em meio de crescimento. A densidade celular em um plenamente: NOTAconfluente 15 centímetros da placa é de aproximadamente 4-6 x 10 6 células. </li></ol> 2. Coloração <ol><li> ASC Cultura em meio de crescimento tradicional, a 37 ° C / 21% de O2, 5% de CO 2, por 36 horas antes da coloração / classificação. </li><li> ASC carona de placas de cultura utilizando Accutase (de acordo com o protocolo do fabricante). </li><li> Lave as células uma vez com tampão de FACS (PBS com 2% de FBS e 1% de pen-strep). </li><li> Centrifuga-se a 233 xg durante 5 min a 4 ° C. </li><li> Desprezar o sobrenadante sem perturbar o sedimento. Ressuspender as células em 0,5-1 mL de tampão de FACS (dependendo do número de células e a quantidade de anticorpo desejado). NOTA: O volume da suspensão de células, de acordo com as recomendações do fabricante do anticorpo FACS, determina a concentração de anticorpos. No entanto, a titulação da concentração de anticorpo, utilizando uma concentração de partida de 1: 100, é normalmente aconselhada se é a primeira vez que a utilização de um anticorpo. </li><li> Contar o número total decélulas utilizando um hemocitómetro. </li><li> Reserva alíquotas de 100 ul em tubos de 1,5 ml de centrífuga a ser utilizado para uma amostra não corado e controlos de cor única (de acordo com o número de anticorpos fluorescentes utilizados). </li><li> Adicionar os anticorpos monoclonais marcados com fluorescência adequados (em concentrações pré-determinadas, segundo as instruções do fabricante) e incubar durante 20-30 minutos em gelo, protegida da luz. <ol><li> Para etiquetar subpopulação osteogénico: Diluir anti-CD90 (APC CD90 anti-humano (Thy1)) ou anti-CD105 (FITC anti-CD105 humano (endoglina)) em tampão de SCAF até uma concentração de 1:50. </li><li> Para identificar as outras populações de células (por exemplo, hematopoiética e células endoteliais): Diluir anti-CD45 (anti-CD45 humano do Pacífico azul), anti-CD34 (anti-CD34 humano APC), e / ou anti-CD31 (anti-humano CD31 PE ) em tampão de FACS para uma concentração de 1:50. </li><li> Se não utilizando anticorpos directamente conjugados, utilizar um anticorpo primário biotinilado com um segundo conjugado de estreptavidina-apropriadaanticorpo ária, tal como estreptavidina PE-Cy7, a uma diluição de 1: 100. </li></ol></li><li> Após a incubação, lavar as células duas vezes: encher os tubos com tampão de SCAF e centrifugar a 233 xg durante 5 min a 4 ° C, o sobrenadante por aspiração. </li><li> Ressuspender as células em 400-500 amostras ul FACS tampão e filtro através de um 70 um filtro de células nylon para remover aglomerados de células. </li><li> Transferir células marcadas em tubos de FACS com topo do filtro e manter as amostras em gelo durante a duração da análise. </li></ol> 3. activadas por fluorescência celular NOTA: Os passos seguintes mandato conhecimento prévio em células activadas por fluorescência (FACS) ou a assistência de um técnico especializado. <ol><li> Usando o software FACS adequadas, parcelas de análise de projeto para examinar dispersão para a frente (FSC), dispersão lateral (SSC), ficoeritrina (PE) -Texas Red, Blue Pacific, Fluorescein Isothiocyanate (ITCF), aloficocianina (APC) e qualquer outro uso fluorophored para marcar as células. </li><li> Antes de carregar no separador de células, brevemente vórtice cada amostra para voltar a suspender as células. </li><li> Começar com a análise da amostra não corado, de modo a definir portas para a população total de células, para excluir os detritos celulares, e para determinar a linha de base da autofluorescência. </li><li> Adiciona-se iodeto de propídio (PI) para a amostra não corado e analisá-lo, a fim de visualizar a população de células vivas na população total de células. Construir um portão em torno desta população. </li><li> Analisar uma amostra de controlo de cor única para cada fluorocromo, a fim de definir a compensação de fluorescência. </li><li> Analisar a amostra corada para definir a posição de portas para a classificação. </li><li> Adicionar PI para a amostra corada de forma a corar as células mortas. </li><li> Organize as populações de células marcadas. Separar por quer tubos de 1,5 ml de centrífuga ou tubos cónicos (15 ml) contendo meio de cultura. </li><li> Cessar a triagem manual, uma vez a quantidade necessária de células foi obtido. </li><li> Nósing FACS, executar uma verificação de pureza por análise de uma pequena fracção (por exemplo., células 500) da população de células obtidas. NOTA: Este passo confirma a pureza das populações de células classificadas. Idealmente, a pureza deverá ser superior a 90-95%. </li><li> Centrifugar células a 233 xg durante 5 min a 4 ° C imediatamente após a conclusão de triagem e ressuspender em 1 ml de meio fresco contendo 10% de FBS. NOTA: A quantidade de material utilizado pode ser aumentado com base no tamanho do sedimento celular. </li><li> Placa em placas revestidas com gelatina para melhorar a viabilidade celular. Dependendo do rendimento celular final, a placa de 300.000 células por cavidade em uma placa de 6 poços, 100000 células por poço numa placa de 12 poços. </li></ol>

<ol><li>Narsinh, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell+transcriptional+profiling+reveals+heterogeneity+of+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Single cell transcriptional profiling reveals heterogeneity of human induced pluripotent stem cells.</a> J Clin Invest. 121, 1217-1221 (2011).</li>
<li>Thorsen, T., Maerkl, S. J., Quake, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+large-scale+integration%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Microfluidic large-scale integration.</a> Science. 298, 580-584 (2002).</li>
<li>Warren, L., Bryder, D., Weissman, I. L., Quake, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factor+profiling+in+individual+hematopoietic+progenitors+by+digital+RT-PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Transcription factor profiling in individual hematopoietic progenitors by digital RT-PCR.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 17807-17812 (2006).</li>
<li>Warren, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptional+instability+is+not+a+universal+attribute+of+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">Transcriptional instability is not a universal attribute of aging.</a> Aging Cell. 6, 775-782 (2007).</li>
<li>Aalami, O. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+of+a+mouse+model+of+calvarial+healing%3A+differences+in+regenerative+abilities+of+juveniles+and+adults%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Applications of a mouse model of calvarial healing: differences in regenerative abilities of juveniles and adults.</a> Plast Reconstr Surg. 114, 713-720 (2004).</li>
<li>Levi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD105+protein+depletion+enhances+human+adipose-derived+stromal+cell+osteogenesis+through+reduction+of+transforming+growth+factor+beta1+%28TGF-beta1%29+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+biological+chemistry%22%5BJournal%5D)">CD105 protein depletion enhances human adipose-derived stromal cell osteogenesis through reduction of transforming growth factor beta1 (TGF-beta1) signaling.</a> The Journal of biological chemistry. 286, 39497-39509 (2011).</li>
<li>Chen, X. D., Qian, H. Y., Neff, L., Satomura, K., Horowitz, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thy-1+antigen+expression+by+cells+in+the+osteoblast+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bone+Miner+Res%22%5BJournal%5D)">Thy-1 antigen expression by cells in the osteoblast lineage.</a> J Bone Miner Res. 14, 362-375 (1999).</li>
<li>Malladi, P., Xu, Y., Yang, G. P., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functions+of+vitamin+D%2C+retinoic+acid%2C+and+dexamethasone+in+mouse+adipose-derived+mesenchymal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+engineering%22%5BJournal%5D)">Functions of vitamin D, retinoic acid, and dexamethasone in mouse adipose-derived mesenchymal cells.</a> Tissue engineering. 12, 2031-2040 (2006).</li>
<li>Levi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depot-specific+variation+in+the+osteogenic+and+adipogenic+potential+of+human+adipose-derived+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+reconstructive+surgery%22%5BJournal%5D)">Depot-specific variation in the osteogenic and adipogenic potential of human adipose-derived stromal cells.</a> Plastic and reconstructive surgery. 126, 822-834 (2010).</li>
<li>James, A. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrogen%2Festrogen+receptor+alpha+signaling+in+mouse+posterofrontal+cranial+suture+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Estrogen/estrogen receptor alpha signaling in mouse posterofrontal cranial suture fusion.</a> PloS one. 4, e1720(2009).</li>
<li>Locke, M., Feisst, V., Dunbar, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concise+review%3A+human+adipose-derived+stem+cells%3A+separating+promise+from+clinical+need%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Concise review: human adipose-derived stem cells: separating promise from clinical need.</a> Stem Cells. 29, 404-411 (2011).</li>
<li>Glotzbach, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Information+Theoretic%2C+Microfluidic-Based+Single+Cell+Analysis+Permits+Identification+of+Subpopulations+among+Putatively+Homogeneous+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">An Information Theoretic, Microfluidic-Based Single Cell Analysis Permits Identification of Subpopulations among Putatively Homogeneous Stem Cells.</a> PLoS One. 6, e21211(2011).</li>
<li>Zhu, M., Heydarkhan-Hagvall, S., Hedrick, M., Benhaim, P., Zuk, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manual+isolation+of+adipose-derived+stem+cells+from+human+lipoaspirates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Manual isolation of adipose-derived stem cells from human lipoaspirates.</a> J. Vis. Exp. , e50585(2013).</li>
<li>Mitchell, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunophenotype+of+human+adipose-derived+cells%3A+temporal+changes+in+stromal-associated+and+stem+cell-associated+markers%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers.</a> Stem Cells. 24, 376-385 (2006).</li>
<li>McMurray, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoscale+surfaces+for+the+long-term+maintenance+of+mesenchymal+stem+cell+phenotype+and+multipotency%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Mater%22%5BJournal%5D)">Nanoscale surfaces for the long-term maintenance of mesenchymal stem cell phenotype and multipotency.</a> Nat Mater. 10, 637-644 (2011).</li>
<li>Katz, A. J., Tholpady, A., Tholpady, S. S., Shang, H., Ogle, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface+and+transcriptional+characterization+of+human+adipose-derived+adherent+stromal+%28hADAS%29+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Cell surface and transcriptional characterization of human adipose-derived adherent stromal (hADAS) cells.</a> Stem Cells. 23, 412-423 (2005).</li>
<li>McIntosh, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immunogenicity+of+human+adipose-derived+cells%3A+temporal+changes+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">The immunogenicity of human adipose-derived cells: temporal changes in vitro.</a> Stem Cells. 24, 1246-1253 (2006).</li>
<li>Choudhery, M. S., Badowski, M., Muise, A., Pierce, J., Harris, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+age+negatively+impacts+adipose+tissue-derived+mesenchymal+stem+cell+expansion+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+translational+medicine%22%5BJournal%5D)">Donor age negatively impacts adipose tissue-derived mesenchymal stem cell expansion and differentiation.</a> Journal of translational medicine. 12, 8(2014).</li>
<li>Yoshimura, K., Suga, H., Eto, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+stem%2Fprogenitor+cells%3A+roles+in+adipose+tissue+remodeling+and+potential+use+for+soft+tissue+augmentation%5BTitle%5D)+AND+%22Regenerative+medicine%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived stem/progenitor cells: roles in adipose tissue remodeling and potential use for soft tissue augmentation.</a> Regenerative medicine. 4, 265-273 (2009).</li>
<li>Chung, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD90+%28Thy-1%29+Positive+Selection+Enhances+Osteogenic+Capacity+of+Human+Adipose-Derived+Stromal+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">CD90 (Thy-1) Positive Selection Enhances Osteogenic Capacity of Human Adipose-Derived Stromal Cells.</a> Tissue Eng Part A. , (2012).</li>
</ol>

Nenhum dos autores têm um interesse financeiro em qualquer um dos produtos, dispositivos ou drogas mencionadas neste artigo. Nenhum dos autores tem qualquer interesse financeiro competindo para relatar.

Actualmente, o isolamento de subpopulações homogéneas de ASC de SVF de tecido adiposo humano continua a ser um desafio embora objectivo desejável. Isolamento de subpopulações ASC pró-osteogénicas é particularmente desejável, uma vez que tais células podem ser utilizadas para estudar a formação e a homeostase do tecido esquelético. No entanto, o SVF de tecido adiposo abriga heterogeneidade significativa no que diz respeito a conter capacidade celular e potencial de diferenciação. 11 A base molecular para esta ...

A natureza heterogênea das populações de células-tronco ainda não é totalmente compreendida e continua sendo um grande impedimento para o desenvolvimento de aplicações terapêuticas baseadas em células-tronco clinicamente eficazes. Uma das maneiras mais comuns de caracterizar uma população heterogênea de células-tronco é empregar um método de classificação celular, como a classificação celular ativada por fluorescência (FACS), para separar as células com base em seus perfis de expressão de marcadores de superfície. À medida que os métodos de classificação se tornam mais complexos, torna-se possível identificar subpopulações funcionais de células mais distintas. As tecnologias baseadas em microfluídica estão se tornando cada vez mais utilizadas na análise da expressão gênica no nível de uma única célula. A reação em cadeia da polimerase quantitativa multiplexada (qPCR) dentro de um chip microfluídico permite uma análise transcricional de célula única de alta resolução eficaz e confiável. 1-5
Em um estudo anterior usando perfil transcricional de célula única de 48 genes, foi observada uma heterogeneidade transcricional considerável entre os ASCs. 6 No entanto, a distribuição dos genes MSX2, BMP-5, BMP-7, ALP, OCN, RUNX2 exibiu uma forte associação com um aglomerado de células que possuem perfis transcricionais altamente osteogênicos. Para isolar as células de acordo com esse perfil de expressão gênica osteogênica, os padrões de expressão de antígenos de superfície foram correlacionados com os padrões de transcrição e a expressão do marcador de superfície da endoglina (CD105) foi posteriormente descoberta como intimamente correlacionada com o potencial de diferenciação osteogênica aprimorado das ASCs. Independentemente da expressão de CD105, a expressão do receptor de superfície Thy-1 (CD90), uma proteína de membrana ligada a glicosil-fosfatidilinositol previamente demonstrada por Chen et al. estar associada a células osteoprogenitoras, também foi correlacionada com a expressão gênica osteogênica. 6,7 Esses achados oferecem a oportunidade de isolar prospectivamente subpopulações dentro do conjunto heterogêneo maior de ASCs com maior capacidade osteogênica para aplicações de engenharia de tecido ósseo baseadas em células.

<table><tbody><tr><td>Tubos Cônicos Descartáveis de 250 ml</td><td>Corning (Thomas Scientific)</td><td>2602A43</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-Estreptomicina (10,000 U/ml)</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>DMEM, glicose alta, Suplemento GlutaMAX Gibco</td><td></td><td>10566-016</td><td></td></tr><tr><td>PBS, pH 7.4</td><td>Gibco</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Betadine - Solução Antisséptica Povidona/Iodo</td><td>Purdue;</td><td>PFC-67618015017</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Sal Balanceada Hank's, 1X</td><td>Cellgro</td><td>21-023-CV</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino, Certificado, Origem dos EUA</td><td>Gibco</td><td>16000-044</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase de&nbsp; Clostridium histolyticum</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C0130-5G</td><td></td></tr><tr><td>ACCUTASE Solução de Desprendimento de Células</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>7920</td><td></td></tr><tr><td>APC Mouse Anti-Human CD90</td><td>BD Pharmingen</td><td>559869</td><td></td></tr><tr><td>FITC Mouse anti-Human CD105 (Endoglin)</td><td>BD Pharmingen</td><td>561443</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Human CD45 eFluor 450 (substituição do Azul Pacífico)&nbsp;</td><td>eBioscience</td><td>48-9459-41</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Human CD34 APC</td><td>eBioscience</td><td>17-0349-41</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Human CD31 (PECAM-1) PE</td><td>eBioscience</td><td>12-0319-41</td><td></td></tr><tr><td>Estreptavidina PE-Cy7</td><td>eBioscience</td><td>25-4317-82</td><td></td></tr><tr><td>BD FACS Aria II instrumento</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD FACSDiva Software</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento e enriquecimento da human adiposo-derivadas células estromais para osteogenesis aprimorado

Isolation and Enrichment of Human Adipose-derived Stromal Cells for Enhanced Osteogenesis

As células estromais mesenquimais derivadas da medula óssea (BM-MSCs) são consideradas o padrão-ouro para aplicações de engenharia de tecidos baseadas em células-tronco. No entanto, o processo pelo qual eles devem ser colhidos pode estar associado a uma morbidade significativa da área doadora. Em contraste, as células estromais derivadas do tecido adiposo (ASCs) são mais facilmente abundantes e mais facilmente colhidas, tornando-as uma alternativa atraente às BM-MSCs. Como as BM-MSCs, as ASCs podem se diferenciar em células de linhagem osteogênica e podem ser usadas em aplicações de engenharia de tecidos, como semeadura em andaimes para uso em defeitos esqueléticos craniofaciais. As ASCs são obtidas a partir da fração vascular estromal (SVF) do tecido adiposo digerido, que é uma mistura heterogênea de ASCs, células endoteliais e murais vasculares, células musculares lisas, pericitos, fibroblastos e células circulantes. A análise por citometria de fluxo mostrou que o perfil do marcador de superfície para ASCs é semelhante ao das BM-MSCs. Apesar de vários relatos publicados estabelecerem marcadores para o fenótipo ASC, ainda há falta de consenso sobre os perfis que identificam células osteoprogenitoras nessa população heterogênea. Este protocolo descreve como isolar e usar uma subpopulação de ASCs com capacidade osteogênica aprimorada para reparar defeitos de calvária de tamanho crítico.

Usando CD90 como um marcador para células com melhores resultados de osteogénese no isolamento de uma população altamente enriquecidas de ASC humanos (Figura 1A, 1B). ASC foram coradas com azul-Pacífico CD45 conjugado anti-humano, conjugado com FITC anti-CD105 humano, e CD90 anti-humano conjugado com APC. Após a separação, o nível de pureza foi superior a 98%, tal como quantificado por análise post-tipo. Definição de grupos de células com base em perfis de transcrição permit...

A heterogeneidade transcricional dentro das células estromais derivadas do tecido adiposo humano pode ser definida no nível de célula única usando marcadores de superfície celular e genes osteogênicos. Descrevemos um protocolo que utiliza citometria de fluxo para o isolamento de subpopulações celulares com potencial osteogênico aumentado, que pode ser usado para melhorar a reconstrução esquelética craniofacial.

Isolamento e Enriquecimento da Human adiposo-derivadas células estromais para Osteogenesis Aprimorado

Bone marrow-derived mesenchymal stromal cells (BM-MSCs) are considered the gold standard for stem cell-based tissue engineering applications. However, the ...

O objetivo geral deste procedimento é isolar subpopulações de células-tronco derivadas do tecido adiposo humano com potencial osteogênico aprimorado usando citometria assistida por fluxo para conseguir isso. As células-tronco derivadas do tecido adiposo humano ou ASCs são colhidas do lipoaspirado humano e cultivadas por 36 horas. As células são então coradas com anticorpos selecionados para rotular populações osteogênicas e as populações desejadas são isoladas usando citometria assistida por fluxo.Em última análise, a coloração de fosfatase alcalina e azarina revela potencial osteogênico aumentado das células isoladas. As implicações dessa técnica se estendem à medicina regenerativa e ao desenvolvimento de novas terapias translacionais, pois descreve como isolar uma subpopulação de ASCs com osteogênese aprimorada. O procedimento a seguir é realizado com tecido adiposo subcutâneo humano de pacientes saudáveis do sexo feminino que foram submetidas a lipoaspiração eletiva do abdômen, flanco e/ou região da coxa sob anestesia local ou geral.Comece com 500 mililitros a um litro de tecido em um recipiente de sucção retirado diretamente da sala de cirurgia. Imediatamente após a coleta, inicie o procedimento de colheita. Isso maximizará a viabilidade celular para obter a fração vascular estromal ou SVF do tecido adiposo lipoaspirado Comece adicionando PBS estéril na proporção de um para um.Em seguida, agite suavemente a vasilha para misturar. Após a mistura. Deixe a solução repousar até que se separe em três camadas.A camada superior de óleo é clara e amarela. A camada média de gordura é viscosa, opaca e amarela, e a camada inferior de sangue é vermelha. Com cuidado, usando um sorológico, pipete, aspire e descarte a camada inferior de sangue, aspire a camada superior de óleo.Em seguida, repita isso. Lave mais duas vezes. Depois de preparar o tampão de digestão da colagenase e o tampão de fax conforme atribuído no documento anexo, coloque-os no exaustor junto com o tampão de lise dos glóbulos vermelhos para que possam aquecer à temperatura ambiente.Em seguida, transfira o tecido adiposo lavado para um frasco grande e digeri-lo em um volume igual de tampão de digestão da colagenase. Colocar o balão em banho-maria agitado durante 60 minutos. A 37 graus Celsius.É melhor usar um recipiente de digestão de volume maior do que o necessário, pois isso permite a digestão máxima durante a agitação. Por exemplo, 250 de tampão de digestão de colagenase e 250 ml de tecido adiposo lavado devem ser colocados em um frasco estéril de um litro. Após a incubação, neutralize a atividade enzimática adicionando um volume igual de tampão de fax e permitindo que o tecido permaneça em temperatura ambiente por cinco minutos.Em seguida, transfira o tecido digestivo para um tubo de centrífuga cônico descartável de 250 mililitros e centrifugue a 233 Gs, ou 20 minutos a quatro graus Celsius. Após a centrifugação, aspire o supinato e ressuspenda o pellet pel adicionando cinco a 10 mililitros de crescimento tradicional. Médio, dependendo do tamanho do pellet.Em seguida, pipete a suspensão através de um filtro de células de náilon de 100 micrômetros em um tubo cônico de 50 mililitros para remover quaisquer detritos celulares. Depois de descartar o sobrenadante, a paleta deve aparecer como mostrado. Aqui, Reese, suspenda o paladar em 10 mililitros de temperatura ambiente.Tampão de lise vermelha. Deixar a solução repousar à temperatura ambiente durante cinco minutos e centrifugar a 233 Gs durante cinco minutos à temperatura ambiente. Em seguida, centrifugue a 233 Gs por cinco minutos a quatro graus Celsius e descarte o snat sem perturbar o pellet.Em seguida, Resus, suspenda o pellet em cinco a 10 mililitros de crescimento tradicional. Médio, dependendo do tamanho do pellet. Depois de contar as células, coloque 2 milhões de células em uma placa de cultura padrão de 10 centímetros e estabeleça culturas primárias durante a noite.Mantenha as células SVF em níveis subconfluentes para evitar a diferenciação espontânea. 36 horas após a semeadura, levante as células usando Accutane de acordo com o protocolo do fabricante. Lave as células uma vez com tampão de fax e, em seguida, centrifugue a 233 Gs por cinco minutos a quatro graus Celsius.Após a centrifugação, descarte o snat sem interromper o pellet. Ressuspenda as células em 0,5 a um mililitro de efeitos. Buffer. Conte as células usando um hemocitômetro.Aloque 1,2 milhão de células para um grupo não classificado que será classificado separadamente como controle. Para este experimento, transfira quats de 100 microlitros em um tubo einor de 1,5 mililitro. Para cada amostra a ser analisada, prepare uma amostra não corada mais controles de cor única para cada um dos anticorpos a serem usados e coloque-os no gelo.Em seguida, rotular a subpopulação osteogênica diluir anti CD 90 ou anti CD 1 0 5 em tampão de fax para rotular as outras populações de células, como células hematopoéticas e endoteliais diluídas anti CD 45, anti CD 34 e ou anti CD 31 em tampão de fax. Após a incubação, lavar as células duas vezes, enchendo os tubos com tampão de fax e centrifugar a 233 Gs durante cinco minutos a quatro graus Celsius. Após o aspirado de spin, o snat após a segunda lavagem ressuspende as células em 400 a 500 microlitros de efeitos.Filtre as amostras através de um filtro de células de náilon de 70 micrômetros em um tubo de centrífuga para remover aglomerados de células. Execute a classificação de células ativadas por fluorescência conforme detalhado no protocolo anexo. Usando gráficos de análise de design de software de fato para examinar o fico de dispersão do lado da dispersão direta, eryn, isotiocianato fluorescente azul do Pacífico Vermelho do Texas, cianeto de todo o Fluor e qualquer outro Fluor quatro usado para rotular células.É importante garantir que os gráficos de análise de fatos sejam desenhados adequadamente para não excluir inadvertidamente as populações de células desejadas. Classifique as populações de células marcadas em tubos de centrífuga de 1,5 mililitro ou tubos cônicos de 15 mililitros contendo cultura. O meio interrompe manualmente a classificação.Uma vez obtida a quantidade necessária de células para este experimento, são necessários aproximadamente 2 milhões de células. Em seguida, usando fatos, execute uma verificação de pureza analisando uma pequena fração de cerca de 500 células da população de células adquiridas. Observe que esta etapa confirma a pureza das populações de células classificadas.Idealmente, a pureza deve ser maior que 90 a 95% imediatamente após a classificação das células centrífugas a 233 Gs por cinco minutos a quatro graus Celsius. Em seguida, ressuspenda as células em um mililitro, meio fresco contendo 10% de placa de FBS, as células em placas revestidas de gelatina para melhorar a viabilidade celular. Dependendo da placa final de rendimento celular, 300.000 células por poço em uma placa de seis poços, ou 100.000 células por poço.Em uma placa de 12 poços para isolar o tecido adiposo humano chegam células estromais com potencial osteogênico aumentado. Os ASCs foram corados com Pacific Blue conjugado anti-humano CD 45, Fitz Conjugated anti-human CD 1 0 5 e A PC conjugado anti-human CD 90 e isolados conforme descrito neste vídeo, conforme mostrado aqui, a classificação com base na expressão de alto CD 90 ou baixo CD 1 0 5 produziu populações altamente enriquecidas de ASCs humanas para caracterizar o potencial osteogênico das duas subpopulações. CD 90 CD positivo 1 0 5, ASCs baixas e não classificadas foram cultivadas em meio de diferenciação osteogênica por 14 dias, como pode ser visto nesta imagem.A coloração com fosfatase alcalina, que serve como um indicador precoce da formação óssea, foi aumentada na população positiva para CD 90 em cultura em relação aos outros grupos. Da mesma forma, no dia 14, a coloração aller e vermelha, que é usada para detectar a mineralização da matriz extracelular e serve como métrica para a diferenciação osteogênica terminal terminal, aumentou na população positiva para CD 90 em relação a outros grupos. A quantificação usando software de análise de imagem também confirmou que a diferença observada foi significativa.Esses dados indicam que as ASCs positivas para CD 90 são capazes de mineralizar uma quantidade significativamente maior de matriz extracelular do que as células não classificadas, sugerindo que as ASCs isoladas mantêm a capacidade de sofrer diferenciação osteogênica após a classificação. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como isolar uma subpopulação de ASCs com potencial osteogênico aprimorado. Ao trabalhar com amostras humanas conforme descrito neste protocolo, é importante sempre usar roupas de proteção adequadas.

isolation-enrichment-human-adipose-derived-stromal-cells-for-enhanced

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Este protocolo descreve o isolamento de derivadas de tecido adiposo a partir de células do estroma lipoaspirado e a criação de um defeito de 4 milímetros de tamanho crítico calvária em avaliar a regeneração óssea.

Reparação de um modelo de defeito crítico porte calvária Usando derivadas de tecido adiposo células do estroma colhidas lipoaspirado

Em 2001, pesquisadores da UCLA descreveu o isolamento de uma população de células-tronco adultas, chamadas células-tronco derivadas de tecido adiposo ou ASC, a partir de tecido adiposo. Este artigo descreve o isolamento de ASC de lipoaspirates usando, um protocolo de digestão enzimática manual utilizando colagenase.

Isolamento manual de células-tronco adiposo-derivadas de Lipoaspirates Humanos

Este protocolo descreve o isolamento de células-tronco derivadas do tecido adiposo de porco (pADSC) de tecidos adiposos subcutâneos com exame de multipotência. O pADSC multipotente é usado para delinear processos de diferenciação de adipócitos e estudar a transdiferenciação em múltiplas linhagens celulares de mesênquima mesodérmico ou outras linhagens de ectoderma e endoderme para estudos regenerativos.

Isolamento e diferenciação de células tronco derivadas de tecido adiposo de Suínos Subcutânea tecidos adiposos

As células estromais derivadas do tecido adiposo podem ser úteis para a engenharia de novos tecidos a partir das próprias células do paciente. Apresentamos um protocolo para o isolamento de uma subpopulação de células estromais derivadas do tecido adiposo humano (ASCs) com potencial osteogênico aumentado, seguido da aplicação das células em um ensaio de cicatrização calvarial in vivo.

Isolamento rápido de BMPR-IB + adiposo-derivados de células estromais para uso em um Defeito Modelo Cura calota craniana

Apresentamos um protocolo para investigar os biomarcadores de expressão do mRNA de células periósteo-derivado (PDCs) induzidas pela vitamina C (vitamina C) e 1,25-dihidroxi vitamina D [1,25-(OH)2D3]. Além disso, avaliamos a capacidade dos PDCs para diferenciar em adipócitos, condrócitos e osteócitos.

Isolamento de células-tronco mesenquimais do periósteo Alveolar humano e efeitos da vitamina D na atividade osteogênica do periósteo-derivado de células

A diferenciação dos adipócitos brancos e bege de tecido adiposo vascular progenitores tem potencial para melhoria metabólica em obesidade. Descrevemos os protocolos para um CD34 + CD31 + isolamento de células endoteliais de gordura humana e uma subsequente em vitro expansão e diferenciação em adipócitos brancos e bege. Diversas aplicações a jusante são discutidas.

Isolamento, expansão e indução de Adipogenic de CD34 + CD31 + células endoteliais de tecido adiposo humano de Omental e subcutâneo

Este protocolo fornece um método livre de enzimas para isolar as células-tronco mesenquímicas de abdominoplastia e amostras lipoaspirate usando um método explant. A ausência de enzimas duras ou etapas de centrífuga fornece células-tronco clinicamente relevantes que podem ser usadas para estudos in vitro ou transferidas de volta para a clínica.

Um método sem enzimas para isolamento e expansão de células-tronco mesenchymal derivadas do adiposo humano

Os produtos xenogênicos (químicos ou derivados de animais) introduzidos nas etapas de preparação/manipulação da terapia celular estão associados a um risco aumentado de reatividade imunológica e transmissão patogênica em pacientes hospedeiros. Aqui, um método completo livre de xenogênicos para o isolamento e expansão in vitro de células-tronco derivadas de tecido adiposo humano é descrito.

Isolamento e cultura de células-tronco derivadas de tecido adiposo humano com um método inovador livre de xenogênicos para terapia humana

Este protocolo descreve uma metodologia para isolar e identificar células-tronco mesenquimais (CTMs) derivadas do tecido adiposo de ratos Sprague Dawley.

Isolamento e Identificação de Células-Tronco Mesenquimais Derivadas do Tecido Adiposo de Ratos Sprague Dawley

O tecido adiposo é uma excelente fonte de células-tronco mesenquimais. Aqui, trazemos a extração, cultivo e caracterização passo a passo de células-tronco derivadas do tecido adiposo (ADSCs) do tecido adiposo epididimal de camundongos suíços.

Isolamento, expansão in vitro e caracterização de células-tronco mesenquimais do tecido adiposo epididimal de camundongos

Aqui, apresentamos um método padrão para isolar eficientemente células-tronco e adipócitos derivados do adiposo, caracterizado por redução de &gt;90% no tempo de processamento, alta viabilidade celular e ampla compatibilidade.

Isolamento Eficiente de Células-Tronco e Adipócitos Derivados do Adiposo a partir do Tecido Adiposo Suíno

Aprenda a isolar subpopulações de células-tronco adiposas humanas com potencial osteogênico aprimorado usando citometria de fluxo. Este método avança a medicina regenerativa e terapias translacionais para reconstrução craniofacial.

Isolamento e Enriquecimento da Human adiposo-derivadas células estromais para Osteogenesis Aprimorado

Explorar mais vídeos