Name: Dois fótons de imagem da Cellular Dynamics na Medula Espinhal Rato (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-22T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 44 s
Description: Aprenda a realizar imagem de dois fótons da medula espinhal de rato para visualizar interações celulares em tempo real entre células precursoras neurais e axônios. Este método permite observar dinâmicas celulares em modelos de lesão medular.

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Este trabalho foi apoiado em parte pelos Subsídios R01 GM-41514 (para M.D.C.), R39 GM-048071 (para I.P.) e R01 NS-074987 (para T.E.L.) e pelo Prêmio de Pesquisa do Centro Colaborativo da Sociedade Nacional de Esclerose Múltipla (NMSS) CA1058-A-8 (para C.M.W., T.E.L. e M.D.C.), NMSS Grant RG4925, NIH Training Grant T32-AI-060573 (para M.L.G.), Bolsa de Pós-Doutorado NMSS FG 1960-A-1 (para J.G.W.), e financiamento da Fundação George E. Hewitt para Pesquisa Médica (MPM).

Declaração de Ética: NOTA: O protocolo para manejo dos animais foi aprovado pelo Comitê de Cuidados e Uso do animal Institucional (IACUC) da Universidade da Califórnia, em Irvine, protocolo nº 2010-2943. 1. A remoção da Medula Espinhal <ol><li> Coloque folhas de papel umedecido com ~ 100% de isoflurano líquido, USP em câmara de eutanásia e coloque toalhas de papel seco em cima. Coloque o mouse na câmara em cima de toalhas de papel secas tão mouse não está tocando o isoflurano e certifique-se da câmara é coberto. Espere pelo menos um minuto após a cessação da respiração para garantir que o rato é sacrificado. </li><li> Realize uma transection espinhal do pescoço para garantir o rato é sacrificado. Não realize uma luxação cervical, pois pode danificar a medula espinhal. </li><li> Pulverizar o rato com etanol a 70% para molhar o cabelo. </li><li> Use tesouras finas afiadas para remover o cabelo e pele do dorso do rato para expor a coluna vertebral cervical lâmina de aproximadamente 1 (C1) Para lamina sacral 4 (S4). </li><li> Usando um bisturi com lâmina # 10, fazer incisões para a esquerda e direita da coluna vertebral, para separá-lo de músculo e gordura. Isso fará com que a remoção da medula espinhal muito mais fácil. </li><li> opcional: a curvas rongeurs Luer pode ser usado para colher longe carne adicional. </li><li> Enquanto mantém o topo da coluna vertebral com uma pinça Graefe serrilhadas, insira titânio curvadas tesoura Vannas com o lado curvo-se na coluna vertebral exposta na C1, tomando cuidado para não tocar na medula espinhal. </li><li> Deslize o titânio curvadas tesoura Vannas todo o caminho para a direita e fazer um pequeno corte. Um pequeno som crise deve ser ouvida e sentida como a tesoura cortar o vértebras. Repita este corte no lado esquerdo do cordão. Tenha cuidado para não ir demasiado depressa ou tornar muito grande de um corte como este corre o risco de danificar o cabo com a tesoura. </li><li> A única lâmina deve ser capaz de ser levantado com a pinça uma vez que os lados das vértebras são cortadas. REPEAT esta etapa para cada lâmina até S4, continuando a segurar e puxar para trás as vértebras da medula espinhal. NOTA: as vértebras acima do local de transplante provavelmente vai sair uma vez que é cortada para o site de transplante. Continuar o processo de arranque logo abaixo do local de transplante. </li><li> opcional: lançar as vértebras para baixo para ver onde o site e transplante é medida e cortar ~ 20 milímetros rostral e caudal para o site de transplante. NOTA: Quando o transplante NPCs mais não serão necessários, como os NPCs transplantados geralmente não migram mais longe do que 15 mm. A quantidade de medula espinhal necessária será dependente das características da experiência de migração e de tipo de célula transplantada. Fazendo cortes rostral e caudal, os quais são equidistantes ao local de transplante permitirá que o local de transplante a ser localizado mais facilmente durante o exame. </li><li> Usando um bisturi com uma lâmina de # 11 de corte cuidadosamente o gânglio à direita e à esquerda da face ventral da medula espinal começando na extremidade rostral. Este wdoente permitir a medula espinal a ser removido a partir das vértebras ventral mais facilmente. NOTA: Feito rapidamente (passos 1,7-1,11), a medula espinhal não vai secar. No entanto, 1x PBS pode ser administrado para o cabo para mantê-lo húmido. </li><li> Inverta o mouse e segure o mouse para que a medula espinhal é voltado para baixo. Retire cuidadosamente para fora da medula espinhal usando uma pinça Graefe serrilhadas fechadas. Sem entalhamento da medula espinal, gânglios corte cuidadosamente quaisquer restantes para permitir a medula espinal a ser levantado para fora de uma peça única intacta. </li><li> Certifique-se a medula espinhal está em RPMI-1640 e colocá-lo em gelo durante o transporte para o microscópio 2P. </li></ol> 2. Preparação de Medula Espinhal for Imaging <ol><li> Incorporação da medula espinhal em agarose <ol><li> Manter o isolado da medula espinal em arrefecida RPMI-1640 em gelo antes da imagiologia. </li><li> Pesar de agarose (baixa temperatura de gelificação) e preparar uma solução de 5% em 5 ml de PBS 1x. Microondas A solução de agarose a 5% durante 15 segundos para dissolver o aglevantou-se e deixar a solução legal para 37 ° C. </li><li> Preparar a medula espinal, colocando-o sobre uma folha de Parafilm com o lado ventral para cima. </li><li> Pipetar cerca de 5 ml de solução de agarose a 5% sobre o lado ventral da medula espinal. Deixe a agarose solidificar por arrefecimento até à temperatura ambiente. Solidificação completa demora cerca de 5 min. </li><li> Aplique uma leve camada de cola de tecido para um quadrado deslizamento de cobertura 22 mm. </li><li> Inverta a medula espinhal incorporado, colocando o lado ventral em Parafilm. O lado dorsal será agora voltado para cima. Aderem a lamínula no lado dorsal, e mergulhe a preparação deslizamento agarose incorporado medula espinhal / tampa em RMPI para solidificar o adesivo. Retire o excesso de solidificou agarose usando uma lâmina de barbear. </li></ol></li><li> Montagem da medula espinal na platina do microscópio <ol><li> Aplique vaselina para a parte inferior da tampa de deslizamento. Isto irá estabilizar a preparação durante a perfusão. </li><li> Coloque a preparação da medula espinhal em umimagiologia bem na platina do microscópio, com o lado ventral para cima para alcançar o objectivo de imersão 25X. O poço de imagem custom-built é de aproximadamente 20 mm de profundidade, a 50 mm de comprimento, e 50 mm de diâmetro. </li><li> Imagem enquanto superfusing a preparação com aquecido (37 ° C), oxigénio (95: 5 de oxigénio: carbono em dióxido de carbogénio) meio RPMI-1640 sem soro. <ol><li> Mídia Pré-aquecer a 37 ° C em banho-maria e conectá-lo à bomba tubulação por inserir o tubo dentro da garrafa de mídia. </li><li> Manter a temperatura do meio a 37 ° C, um dispositivo de aquecimento no ponto de ligação da tubagem para a câmara. Meios Superfuse através bem a 3 ml / min, utilizando tubagem ligada ao tubo da bomba (Figura 1B). </li></ol></li></ol></li></ol> 3. 2P por imagem da Medula Espinhal Ventral <ol><li> Setup Microscópio <ol><li> Adquirir imagens de Thy1-EYFP medulas espinhais usando um Chameleon Ultra laser de Ti: Safira sintonizado 900 nm. Atenuar potência do laser noespécime para &lt;5% para assegurar o mínimo de 16 de fototoxicidade. Manter a temperatura irrigando perfundido com oxigénio meio RPMI-1640 a uma temperatura constante de 37 ° C utilizando um aquecedor de solução única linha de imagem para garantir estável, e para impedir a dispersão do tecido e danos celulares. </li><li> Para separar o sinal fluorescente eGFP e EYFP, coloque um 520 nm dicróica de ponta única e um nm-edge único feixe dicróica divisor 560 em série para separar 2P de emissão em três canais, propositadamente dividir a emissão verde para melhorar a visibilidade. NOTA: Estes canais são referidos como azul-verde (emissão &lt;520 nm), verde-amarelo (520-560 nm) e vermelho (emissão&gt; 560 nm). Tubos fotomultiplicadores detectar a luz emitida em cada canal. </li></ol></li><li> Localizando áreas de imagem de interesse <ol><li> Usando a ocular e uma fonte de luz de campo claro, concentrar o objectivo de imersão no bordo ventral da medula espinal para definir um ponto de referência. </li><li> Faça fonte de luz ambiente certeza está fora e swcoceira para 2P excitação abrindo o obturador laser. </li><li> Se estiver disponível, na busca de tecido para áreas de interesse, use uma configuração de resolução mais baixa, maior volume sem zoom digital, e maior velocidade de varredura do que na aquisição de imagens finais. As configurações típicas com este sistema na busca de tecido para uma região de interesse são: Resolução: 256 pixels; volume de: x = 600 um, y = 600 um, z = 0-300 um. </li><li> Observar os axónios EYFP perto da borda ventral da medula espinal. Segundo sinal harmónico de colágeno (azul) será mais brilhante na borda do tecido da medula espinhal. Localize os axônios EYFP apenas dorsal para o segundo sinal harmônico do colágeno e sinal EYFP é visualizado no canal verde-amarelo. </li><li> Localizar o local de transplante no centro longitudinal da preparação da medula espinal 14. Para camundongos um dia após o transplante eGFP-NPC, localize o site de transplante, concentrando-se a caminho do feixe no plano z profundamente no tecido. O wi site de transplantell variam ligeiramente entre os animais, mas geralmente está localizado ~ 200 mm a partir da borda ventral. Observe os aglomerados de eGFP-NPCs nos tratos de substância branca, mais perto das bordas lateral e ventral em ratos após dia 1 pós-transplante. </li></ol></li><li> Obtenção de imagens finais <ol><li> Adquirir resolução de imagem de 512 pixels; volume de: x = 270 mm, y = 212 mm, e z = 100 um usando software Slidebook 6. Compilar z-stacks através da aquisição de planos focais sequenciais em incrementos de 2,5 mM. </li><li> Executar uma verificação bidirecional com deslocamento para garantir quantificação rápida de quaisquer objetos que migram da medula espinhal interlace adequada. Certifique-se de que a taxa ideal quadro aquisição para determinar a velocidade do celular dentro da medula espinhal é de aproximadamente 1 frame / sec. NOTA: As configurações de imagem pode ser alterado para as preferências do usuário individuais, tais como taxa de quadros de aquisição, resolução de imagem e volumes de imagem. Volumes de imagem maiores geralmente levam mais tempo para adquirir a um GIVresolução en. </li><li> Analisar, de culturas, liso, e pseudocoloridas arquivos de imagem Slidebook com software de análise de imagem, tais como Bitplane Imaris 7.7. Produza vídeos finais de lapso de tempo penteando volumes de imagens consecutivas usando um processo automatizado em Slidebook e Imaris. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Os autores não têm interesses conflitantes.

Real-time 2P imagiologia de tecido intacto é necessária para investigar a cinética da APN e interacções após o transplante para o rato demyelinated medula espinhal. Intravital 2P imagem é utilizada para determinar a dinâmica celular na face dorsal da medula espinal em ratos vivos, e tem sido utilizada para estudar a desmielinização dorsal em doenças desmielinizantes 17-19. No entanto, porque NPCs transplantadas migrar para a substância branca ventral, o qual se encontra muito profundo para imagem in situ util...

Modelos de ratos de desmielinização, incluindo a encefalomielite autoimune experimental (EAE) e infecção intracraniana com neuroadapted vírus da hepatite do camundongo (MHV), são excelentes ferramentas para estudar vias moleculares e interações celulares associados à doença. Eles têm conduzido a e suportado a eficácia de terapias farmacêuticas aprovado pela FDA, principalmente contra a cessação de autoimunidade e inflamação 1. No entanto, uma vez que a remielinização endógeno falhou, as terapias actualmente aprovadas não eficaz para reparar lesões de desmielinização do sistema nervoso central. Portanto, terapias focadas no reparo nesta fase da doença são fundamentais para o alívio de sintomas crônicos e melhoria da qualidade de vida. Recentemente, as células precursoras neurais (NPCs) vieram à tona como um potencial modalidade terapêutica regenerativa para atingir áreas de inflamação e desmielinização. Vários estudos têm destacado a capacidade de NPCs para induzir endógenonos remielinização e participar diretamente remielinização 2-8. Porque NPCs estão envolvidos em remielinização direta, é imperativo compreender a sua cinética e interações com células endógenas após o transplante. Após o transplante, NPCs migrar ventralmente para áreas de lesões da substância branca, em seguida, rostral caudal e relativas ao local de transplante 5,9. A cinética da migração diferem em resposta aos estímulos ambientais; NPCs transplantadas em uma medula espinhal não danificado têm velocidades maiores que as NPCs transplantadas em uma medula espinhal danificada 6. Depois de um período migratório, transferido NPCs proliferam extensivamente, a uma taxa mais elevada num medular danificado em relação a uma medula espinhal intacta 6. Finalmente, a maioria dos NPCs diferenciar em oligodendrócitos e iniciar 4,6,9 remielinização directa. A lesão desmielinização é complexo e pode incluir uma população diversa de células em vários estágios de umctivation. Por exemplo, uma lesão activa esclerose múltipla (EM) podem incluir uma população significativa de células T activadas, a microglia e macrófagos M1 M1, mas uma lesão crónica MS silenciosa pode ser constituída essencialmente por astrócitos reactivos com poucas células inflamatórias 10-13. Devido à diversidade de células efectoras, de dois fotões (2P) de imagem em modelos de rato de desmielinização é uma ferramenta extremamente útil para ajudar a compreender as interacções celulares locais no interior da lesão. Em muitos modelos de MS e MS de investigação amplamente utilizadas, a maioria das lesões está localizada no lado ventral da medula espinhal, uma região inacessível para imagens intravital 2P devido à profundidade da lesão e o elevado teor de lípidos da medula espinhal. Para contornar esses problemas e as interações célula-célula estudo dentro de lesões ao longo da medula espinhal ventral, temos desenvolvido um simples ex vivo 2P preparação imaging 6. Este estudo segue-se uma publicação métodos anterior, que mostrouo procedimento para o transplante reforçada proteína verde fluorescente (eGFP) NPCs -expressing para a medula espinhal de ratos após JHMV estirpe de desmielinização induzida por MHV 14. Cinco semanas ratos velhos são infectadas com JHMV e transplantados com eGFP-NPCs ao nível torácico 9 no dia 14 pós-infecção. O protocolo apresentado aqui fornece etapas detalhadas sobre como extrair a medula espinhal, fazer uma preparação ex vivo agarose, e imagem transplantado interações eGFP-NPC com melhor proteína fluorescente amarela (EYFP) axônios -expressing. Ratos que expressam EYFP sob a Thy1 promotor específico neuronal foram usados ​​neste procedimento de 15. Apenas alguns dos axônios expressar EYFP, tornando-o útil para a imagem latente axônios individuais. Aqui nós mostramos medulas espinhais removidas em 7 dias pós-transplante; no entanto, a espinal medula pode ser extraída em qualquer momento após o transplante. Enquanto que mostram as interacções de NPCs com axónios danificados, o nosso protocolo pode ser utilizado em combinação com marcadores fluorescentes genéticosde outros tipos de células para investigar uma variedade de interacções celulares que ocorrem durante todo o rato medula espinhal.

<table><tbody><tr><td>Isoflurano, USP</td><td>Piramal Critical Care, Inc</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura fina</td><td>Fine Science Tools</td><td>14060-09</td> lâmina <td>de</td></tr><tr><td>bisturi afiada # 10</td><td>Fine Science Tools</td><td>10010-00</td><td></td></tr><tr><td>cabo de bisturi</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>Luer rongeurs</td><td>Fine Science Tools</td><td>16001-15</td><td></td></tr><tr><td>Graefe fórceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11052-10</td><td></td></tr><tr><td>Vannas tesoura</td><td>Fine Science Tools</td><td>15615-08</td><td></td></tr><tr><td>lâmina de bisturi #11</td><td>Fine Science Tools</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco</td><td>12-115F</td><td></td></tr><tr><td>agarose, baixa temperatura de gelificação</td><td>Sigma</td><td>A9414-25G</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374-12</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond (adesivo de tecido)</td><td>3M</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>22 mm lamínula quadrada</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-547</td><td></td></tr><tr><td>25X objetiva de imersão, 1.1 NA</td><td>Nikon</td><td>CFI Apo LWD 25XW</td><td></td></tr><tr><td>Aquecedor de solução única em linha</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0102</td><td></td></tr><tr><td>520 nm divisor de feixe dicróico de borda única</td><td>Semrock</td><td>FF520-Di02-25x36</td><td>Divisor</td></tr><tr><td>de feixe dicróico de borda única Brightline 560 nm</td><td>Semrock</td><td>FF560-FDi01-25x36</td><td>Tubos</td></tr><tr><td>fotomultiplicadores</td> Brightline Bomba de tubulação de velocidade variável <td>Hamamatsu</td><td>R928</td><td></td></tr><tr><td>C/L</td> Termômetro digital <td>Masterflex</td><td>77122-22</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Comar Instruments</td><td>3501</td><td></td></tr><tr><td>Chameleon Ultra Ti:Laser de safira&nbsp;</td><td>Coerente</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Slidebook 6 software</td><td>3i</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Imaris 7.7 software</td><td>Bitplane</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

dois fótons de imagem da cellular dynamics na medula espinhal rato

Two-photon Imaging of Cellular Dynamics in the Mouse Spinal Cord

A microscopia de dois fótons (2P) é utilizada para revelar a dinâmica celular e as interações profundas dentro de tecidos vivos e intactos. Aqui, apresentamos um método para imagens de células vivas na medula espinhal murina. Esta técnica é exclusivamente adequada para analisar a dinâmica das células precursoras neurais (NPC) após o transplante em medulas espinhais submetidas a distúrbios desmielinizantes neuroinflamatórios. Os NPCs migram para locais de dano axonal, proliferam, se diferenciam em oligodendrócitos e participam da remielinização direta. Os NPCs são, portanto, um tratamento terapêutico promissor para melhorar as doenças desmielinizantes crônicas. Como os NPCs transplantados migram para as áreas danificadas no lado ventral da medula espinhal, a imagem intravital tradicional de 2P é impossível e apenas informações sobre interações estáticas estavam disponíveis anteriormente usando abordagens de coloração histoquímica. Embora esse método tenha sido gerado para obter imagens de NPCs transplantados na medula espinhal ventral, ele pode ser aplicado a vários estudos de células transplantadas e endógenas em toda a medula espinhal. Neste artigo, demonstramos a preparação e a imagem de uma medula espinhal com axônios que expressam proteínas fluorescentes amarelas aprimoradas e NPCs transplantados com expressão de proteínas fluorescentes verdes aprimoradas.

<html> Embora o protocolo explantado imagiologia medula espinal pode ser utilizado para visualizar qualquer fluorescência na medula espinhal, os nossos resultados demonstram representativos interacções eGFP-NPC com EYFP-axónios. Em primeiro lugar, vamos mostrar a preparação cabo embutido ventral espinhal na Figura 1A. A seguir, mostram a configuração de 2P microscópio e componentes principais na Figura 1B. A Figura 2 demonstra eGFP e EYFP fluorescência em um único z-pilha no interior da ...

Uma nova ex vivo preparação para a imagem latente o mouse medula espinhal. Este protocolo permite a dois fotões imagiologia de interacções celulares vivos ao longo da medula espinal.

Dois fótons de imagem da Cellular Dynamics na Medula Espinhal Rato

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for ...

O objetivo geral do seguinte experimento é obter imagens em tempo real das interações entre células precursoras neurais, ou NPCs, transplantadas e marcadas com fluorescência, e axônios fluorescentes na medula espinhal de camundongos. Isso é conseguido removendo e embutindo cuidadosamente a medula espinhal de camundongos transplantados com NPCs em 5%aros e fixando-a em uma lamínula. A orientação da medula espinhal pode ser alterada para visualizar a fluorescência em qualquer região da medula espinhal.No segundo passo, o preparado da medula espinhal é colocado sobre a platina de imagem de dois fótons para a aquisição de imagens de NPCs viáveis, enquanto é superperfundido com meio RPMI aquecido e oxigenado por até 10 horas. Um divisor de feixe adequado de borda simples diic é utilizado para separar as emissões de YFP e GFP. Em última análise, a microscopia de dois fótons permite a visualização em tempo real das interações entre NPCs que expressam GFP e axônios que expressam YFP na medula espinhal lesada.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área da neurogeração, como quais são os sinais moleculares e celulares necessários para a remielinização de axônios danificados por NPCs transplantados, e qual é a cinética desses eventos de remielinização? A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como a imagem por dois fótons em zona entremarés, que só pode ser usada para obter imagens da medula espinhal dorsal, é que este método permite a obtenção de imagens de NPCs transplantados que migraram profundamente para a região ventral da medula espinhal. Após confirmar a eutanásia por transecção espinhal, umedecer o camundongo com etanol 70%, e então usar tesoura fina e afiada para remover os pêlos e a pele das costas do animal, expondo a coluna vertebral desde aproximadamente a lâmina cervical um ou C um até a lâmina sacral quatro ou S quatro.Em seguida, utilizando um bisturi com lâmina número 10, faça incisões à esquerda e à direita da coluna vertebral para separá-la do músculo e tecido adiposo circundantes; remova também o tecido em excesso ao redor e sobre a coluna vertebral. Isso facilitará a remoção das vértebras. Depois, segurando a extremidade superior da vértebra com pinça serrilhada cinza, insira a tesoura curva de titânio com o lado curvo voltado para cima na coluna vertebral exposta em C1, tomando cuidado para não tocar a medula espinhal.Deslize a tesoura até a extremidade direita e faça um pequeno corte. Um leve estalo deve ser ouvido e sentido ao cortar as vértebras. Repita esse corte no lado esquerdo da medula, tomando cuidado para não trabalhar muito rapidamente nem fazer um corte muito grande, pois isso pode danificar a medula.Uma vez que os lados das vértebras sejam cortados, a lâmina única deverá poder ser levantada com a pinça. Repita os cortes esquerdo e direito para cada lâmina até alcançar S4. Continue segurando e puxando para trás as vértebras da medula espinhal.As vértebras acima do local do transplante podem soltar-se assim que a espinha dorsal for cortada até o local do transplante. Uma vez que as vértebras forem cortadas até S4, coloque-as sobre uma superfície para ajudar a visualizar a localização do local do transplante e faça um corte de aproximadamente 20 milímetros na direção rostral e caudal ao local do transplante. Agora, use um bisturi com lâmina número 11 para cortar cuidadosamente os gânglios nos lados direito e esquerdo da face ventral da medula espinhal, começando pela extremidade rostral.Em seguida, inverta e segure o animal de modo que a medula espinhal fique voltada para baixo e use pinça serrilhada fechada para remover cuidadosamente a medula espinhal a partir da extremidade caudal. Então, sem cortar a medula espinhal, corte cuidadosamente qualquer gânglio remanescente para permitir que a medula seja retirada em uma única peça intacta e coloque a medula em meio sobre gelo para prepará-la para a imagem. Transfira o tecido nervoso para uma lâmina de param com o lado ventral voltado para cima.Em seguida, pipete aproximadamente cinco mililitros de solução de ágar fresca a 37 graus Celsius, 5%, sobre o cordão e deixe solidificar à temperatura ambiente. Após cerca de cinco minutos, aplique uma fina camada de adesivo para tecidos em uma lamínula quadrada de 22 milímetros e inverta o cordão espinhal embutido com o lado ventral para baixo sobre um novo pedaço de perfil. Fixe a lamínula ao lado dorsal exposto e submerja toda a preparação em meio fresco para solidificar o adesivo.Em seguida, use uma lâmina de barbear para remover o excesso de ágar-ágar solidificado. Depois, insira o tubo conectado à bomba peristáltica em um frasco de meio, mantido em banho-maria a 37 graus Celsius. Passe o meio previamente aquecido por uma câmara de imagem personalizada sobre a platina do microscópio a três mililitros por minuto.Em seguida, coloque a preparação da medula espinhal na câmara com o lado ventral voltado para cima, em direção à objetiva de imersão 25 x. Para imagens da medula espinhal ventral por microscopia de dois fótons, utilize um laser de titânio-safira sintonizado em 900 nanômetros, com a potência do laser atenuada no espécime para menos de 5%, garantindo assim fototoxicidade mínima. Em seguida, usando a ocular e uma fonte de luz de campo claro, foque a objetiva de imersão na borda ventral da medula espinhal.Para definir um ponto de referência, certifique-se de que a fonte de luz ambiente esteja desligada. Em seguida, abra o obturador do laser para alternar as duas citações fotônicas, se disponível. Ao procurar no tecido áreas de interesse, utilize uma configuração de resolução mais baixa, um volume maior sem zoom digital e uma taxa de varredura mais alta do que aquela usada na aquisição das imagens finais.Para localizar as células, é melhor focar na amostra sob iluminação de campo claro na borda do tecido, primeiro no local do transplante, e depois alternar para fluorescência. Uma grande área X e Y com baixa resolução pode então ser utilizada para permitir a visualização rápida de uma ampla região enquanto o foco avança mais profundamente no tecido. Observe os axônios EYFP próximo à borda ventral da medula espinhal.O sinal de segunda harmônica do colágeno observado aqui em azul será o mais intenso na borda do tecido da medula espinhal. Agora, utilize o software apropriado de captura de imagens para adquirir as imagens finais de maior resolução em planos focais sequenciais com incrementos de 2,5 mícrons para compilar pilhas Z. Nesta representação, as NPCs GFP são observadas em azul e os axônios YFP danificados são observados em amarelo; a coloração pseudo pode ser realizada posteriormente utilizando software de edição, e então realize uma varredura bidirecional com o deslocamento intercalado adequado para garantir a quantificação rápida de quaisquer objetos migratórios na medula espinhal, assegurando que a taxa de quadros ideal de aquisição para determinar a velocidade celular dentro da medula espinhal seja definida em aproximadamente 1,7 quadros por segundo.Por fim, analise o corte suave e aplique cores falsas aos arquivos de imagem com o software apropriado, e use os processos automatizados para percorrer os volumes de imagens consecutivos e produzir os vídeos finais em lapso de tempo. Embora este protocolo de imagem de medula espinhal exposta possa ser usado para visualizar qualquer fluorescência dentro da medula espinhal, estas imagens demonstram interações representativas de células precursoras neurais EGFP com axônios EYFP em uma única pilha Z na medula espinhal ventral. A aquisição de pilhas Z consecutivas pode então ser compilada para produzir vídeos em lapso de tempo para análise da dinâmica celular em tempo real dentro do tecido intacto.De fato, o uso de um divisor de feixe dicromático de borda simples de 520 nanômetros e um divisor de feixe dicromático de borda simples de 560 nanômetros pode separar os sinais de EGFP e EYFP, permitindo a pseudocoloração dos canais individuais em verde e amarelo com o software de imagem, conforme demonstrado aqui. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de remover adequadamente a medula espinhal do camundongo sem alongamento excessivo, compressão ou corte acidental do tecido nervoso. Com este procedimento, qualquer combinação de células ou axônios marcados com fluorescência pode ser visualizada em tempo real para responder a questões adicionais, incluindo quais são a cinética da migração ou da remielinização sob diferentes tratamentos farmacológ游戏副本

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Um protocolo minimamente invasiva para estabilizar a coluna vertebral do mouse e executar...

Em Imaging vivo do Cordão do rato Spinal Usando Two-photon Microscopia

Fonte: Maruoka, H., et. al. Imagem simultânea da dinâmica microglial e atividade neuronal em camundongos acordados. J. Vis. Exp.Exp..  (2022) Este vídeo mostra um procedimento de microscopia de dois fótons para imagem da atividade neuronal e da dinâmica microglial em um camundongo acordado durante a estimulação visual, destacando transientes de cálcio e interações celulares.

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Two-Photon<em&gt; In vivo</em&gt; Imagem de espinhas dendríticas no Rato Cortex Usando um desbaste-crânio Preparação

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A imagem intravital de dois fótons pode ser usada para investigar interações entre diferentes tipos de células na medula espinhal em seu ambiente de tecido nativo em um animal quimérico da medula óssea com uma lesão traumática por esmagamento da medula espinhal da coluna dorsal.

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Nós introduzimos um na vivo de imagem método usando dois diferentes corantes fluorescentes para controlar as alterações vasculares na coluna dinâmicas que após uma lesão da medula espinhal contusive em ratos Sprague Dawley adulto.

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A microscopia estimulada de dispersão de Raman (SRS) permite imagens livres de rótulos de biomoléculas com base em sua vibração intrínseca de ligações químicas específicas. Neste protocolo, a configuração instrumental de um microscópio de srs e fluorescência de dois fótons integrado é descrita para visualizar estruturas celulares na medula espinhal de camundongos vivos.

In vivo Imagem de tecidos biológicos com fluorescência combinada de dois fótons e microscopia de dispersão de Raman estimulada

Aqui, descrevemos um protocolo combinando injeção de vírus adenoassociado com implante de janela craniana para obtenção simultânea de imagens da dinâmica microglial e atividade neuronal em camundongos acordados.

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Aprenda a realizar imagem de dois fótons da medula espinhal de rato para visualizar interações celulares em tempo real entre células precursoras neurais e axônios. Este método permite observar dinâmicas celulares em modelos de lesão medular.

Dois fótons de imagem da Cellular Dynamics na Medula Espinhal Rato

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