Name: Estudar o cancro do pâncreas Stem características celulares para desenvolver estratégias Novo tratamento (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 29 s
Description: Aprenda a expandir células-tronco cancerígenas pancreáticas in vitro usando cultura independente de ancoragem. Este método permite estudar a biologia das CSCs e desenvolver terapias direcionadas para o cancro do pâncreas.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

A presente pesquisa foi apoiada por uma ERC avançada Investigator Grant (Pa-CSC 233460), Sétimo Programa-Quadro da Comunidade Europeia (FP7 / 2007-2013) ao abrigo do contrato de concessão nº 256974 (EPC-TM-NET) e Sem 602,783 (CAM-PAC ), o Subdirección Geral de Evaluación y Fomento de la Investigación, Fondo de Investigación Sanitaria (PS09 / 02129 &amp; PI12 / 02.643), eo Programa Nacional de Internacionalización de la I + D, Subprogramma: FCCI 2009 (PLE2009-0105; Ministerio de Economía y Competitividad, Espanha). E. Lonardo foi apoiado pela Roche Fellowship. M. Cioffi foi apoiado pelo Programa de Bolsas Predoctoral La Caixa.

PDAC tumores humanos foram obtidas com consentimento informado por escrito (Comunidad de Madrid, Espanha (CP CNIO-CTC-11 -. CI 11/103-E) Implantação de tumores pancreáticos humanos em ratinhos imunodeficientes requer a aprovação do Conselho de Revisão Institucional, bem como Institucionais . Animal Care e Use Committee (IACUC) Os procedimentos de modelos de mouse tumor pancreático de xenotransplante deve ser realizado em conformidade com as normas institucionais e nacionais (Comissão aqui Ética do Instituto de Salud Carlos III; Madrid, Espanha; Protocolo PA 34_2012). 1. Meios de Cultura <ol><li> Prepare Médio Completo. <ol><li> Suplemento de meio RPMI com 10% de FBS, 100 unidades / ml de penicilina / estreptomicina. Para 500 ml de meio RPMI adicionar 55 ml de FBS inactivado pelo calor e 6 ml de penicilina / estreptomicina (10.000 U / ml, 100x). </li><li> Armazenar o meio completo a 4 ° C. </li></ol></li><li> Prepare CSCs Médio. <ol><li> Complementar o DMEM / F12 mediu sem sorom, com 100 unidades / ml de penicilina / estreptomicina e 2 mM de glutamina. </li><li> Armazenar o meio de CSC a 4 ° C. B27 (1:50) e 20 ng / ml de bFGF foram recentemente adicionados ao meio antes de cada experiência. NOTA: A adição de B27 foi mostrado para aumentar a formação de esfera do tumor e manter a várias passagens de culturas esfera 32. A composição do meio é um passo crucial e tem de ser testado para cada tipo de célula em cultura. Recomendamos testes de auto-renovação e capacidade de diferenciação de esferas e analisar a expressão de marcadores CSC por citometria de fluxo (ie, CD133 + e CD44 +). </li></ol></li><li> Prepare Extracelular Fluxo de Meio de Dosagem. <ol><li> Este meio é específico DMEM basal 5030 contendo vitaminas, aminoácidos e outros suplementos, mas sem glutamina, glucose, piruvato e bicarbonato. </li><li> Para o ensaio corrente, suplementar o meio com 2 mM de glutamina, 8 mM de glicose e piruvato de sódio 2 mM a uma actividade metabólica mitocondrial completo. NOTA: A ausência de bicarbonato de sódio é essencial, a fim de medir com precisão a acidificação extracelular de células que crescem em cultura, uma vez que regulares meio contendo tampão de bicarbonato irá variações de pH durante o ensaio. Além disso, a utilização de um meio basal permite um controlo rigoroso da concentração de L-glutamina (como L-alanil-glutamina) de glucose, piruvato ou necessário para diferentes condições e / ou aplicações de ensaio de sódio. </li></ol></li></ol> 2. Sphere Forming Assay e Análise NOTA: Todos os protocolos de cultura de tecidos e manipulações deve ser realizada utilizando técnicas estéreis com grande atenção usando limpo, livre de detergente, artigos de vidro esterilizado. Antes de usar, pré-quente durante todo o meio e solução em um 37 ° C em banho-maria (como alternativa, você pode usar soluções pré-aquecido à temperatura ambiente médio e). Obter tumores PDAC humano como previamente descrito 21. <ol><li> Isolamento de CSCs de PDAC humano (Figura1) <ol><li> Em uma cabine de segurança biológica estéril transferir o tecido PDAC humano a um prato de 60 mm x 15 cultura contendo 1 mL de estéril 1X tampão fosfato salino (PBS). Picar o tumor em pedaços pequenos (1-5 mm), utilizando um bisturi e pinça estéril. </li><li> Adicionar 1 ml de estéril 1X PBS para o prato de cultura e repita o passo trituração até que o tecido está completamente dissociada, regularmente isso requer 3-4 rodadas. Transferir a suspensão de tecido (topo até um volume final de 5 ml com PBS 1X) para um tubo estéril e homogeneizar mecanicamente com um Dissociator tais como gentleMACS. </li><li> Incubar o tecido homogeneizado com colagenase (usar 2,5 mg / ml de colagenase em 1X PBS) durante 60 min a 37 ° C e, em seguida, centrifuga-se durante 5 min a 900 x g. Decantar o sobrenadante e ressuspender as pastilhas de células em 10 ml de meio completo. Filtra-se a suspensão de células através de um filtro de 40 ^ m e centrifuga-se durante 5 min a 900 x g. </li><li> Decantar o sobrenadante e ressuspender ogranular com 5 ml de tampão de lise de glóbulos vermelhos (-amónio cloreto de potássio-, ACK), e incuba-se a </li><li> Ressuspender o sedimento em meio CSCs, placa sobre uma placa revestida com gelatina, e incuba-se a 37 ° C durante 1 h. Este passo irá remover a maioria das células de fibroblasto que rapidamente se ligam à placa. </li><li> Remova a placa do incubador e recuperar cuidadosamente suspensão de células e quantificar o número de células (azul-negativas tripano) viáveis ​​utilizando um hemocitómetro. Para este efeito, misturar suavemente a suspensão e pipetar 20 ul da suspensão para um tubo Eppendorf. Adicionar 20 ul (proporção 1: 1) de azul de tripano às células no tubo de microcentrífuga e misturar bem. Pipetar cerca de 10 uL da mistura para o hemocitómetro. </li><li> Contagem de todas as células claras dentro dos quatro quadrantes de canto da câmara de contagem para contagem de células viáveis. Nota: A viabilidade e rendimento de células podem variar consideravelmente entre as amostras tumorais. Para PDAC viabilidade amostras varia regularmente between 45-70%, e pedaços de tecido a partir de uma amostra de tumor macroscópico com um diâmetro de 3-5 mm devam produzir a cerca de 5x10 6 células viáveis. </li></ol></li><li> Formação esfera Ensaio e tratamento com metformina <ol><li> Aqui o número necessário de células e adicionar o volume apropriado de meio CSCs para preparar uma concentração celular de 2000 células / ml. Não manter a suspensão de células em gelo durante não mais de 1h e bem misturada antes de chapeamento. </li><li> Adicionar 500 mL de 1X PBS para a primeira e última fileira de uma placa de 24 cavidades para a humidificação, de modo a ajudar a minimizar a evaporação forma. Semente as células em placas de células ultra-baixas de fixação a uma densidade de 2000 células por poço em 1 ml de meio de esfera do tumor (2000 células / ml). NOTA: O número de células utilizadas para ensaios de formação de esferas do tumor pode variar entre tipos de tumores. </li><li> Tratar pelo menos quatro poços com veículo (controlo negativo) e 4 poços com cada tratamento atribuído, por exemplo., 3 ​​mM de metformina. Place as células numa incubadora a 37 ° C e fornecer as células com 5% de CO 2 durante uma semana. NOTA: O meio não deve ser alterado, a fim de permitir a formação de esferas de tumor sem perturbações, mas pode ser complementado com factores de crescimento, numa base diária, como eles não são estáveis ​​em meio de cultura. </li><li> A cada dois dias adicionar o tratamento, por exemplo., 3 ​​mM de metformina ou do veículo a cada um dos poços. Avaliar o número de esferas de tumores formados após 5 e / ou 7 dias com a utilização de um contador de células automatizado que permite a contagem de estruturas maiores (Figura 2). NOTA: Somente as esferas do tumor com, pelo menos, 40 um deveriam ser consideradas e podem ser classificados como pequenas (40 - 80 mm) ou grande (80-120 mm), respectivamente. Os resultados podem ser ilustradas como a percentagem de esferas tumorais dividido pelo número inicial de células semeadas (por exemplo, 2.000 células). </li></ol></li><li> Passaging série de Primeira Geração Esferas de Tumor <ol&gt; <li> Após 7 dias de incubação a colheita das esferas de tumor utilizando um filtro de células de 40 ^ m e centrifugar-los durante 5 min a 900 xg à temperatura ambiente. </li><li> Dissociar o pellet de esferas tumorais para células individuais utilizando tripsina, e em seguida, expanda a suspensão de células únicas células obtido novamente por mais 7 dias, como descrito acima (ver 2.2). </li></ol></li></ol> 3. Metabolismo Análise (ROS Produção e Consumo de Oxigênio) <ol><li> ROS Produção <ol><li> Neste protocolo, temos usado carboxi-DCFDA como um exemplo para medir a produção de ROS, uma vez que é uma sonda acessível, rápida e amplamente utilizado para a detecção de ROS. No entanto, existem várias outras sondas e metodologias que podem ser utilizados para este ensaio. </li><li> Trate esferas de tumor com a metformina como descrito em 2.2 para o montante atribuído de tempo. No final do tratamento, as esferas de tumor colheita utilizando um filtro de células de 40 mm, centrifugar as células a 900 xg durante 5 min e ressuspender o sedimento em 1 ml de Trypsem. Incubar durante 20 minutos a 37 ° C. </li><li> Uma vez que as células são singularizados, centrifugar a 900 x g e ressuspender as células em HBSS contendo 2,5 uM carboxi-DCFDA. Incubam-se as células durante 20 min a 37 ° C no escuro. </li><li> Antes de citometria de fluxo proteger as células manchadas de luz como carboxi-DCFDA pode ser dar resultados falsos positivos oxidado-photo. Colocar os tubos em gelo até à análise. NOTA: é carboxi-DCFDA fluorescentes após reacção com uma variedade de espécies reactivas de oxigénio e de azoto, sendo detectado em FL1 (ex-488 nm, em 520 nm..). </li></ol></li><li> Medição do consumo de oxigênio <ol><li> Para este protocolo, vamos usar o sistema Extracelular Flux Analyzer do cavalo marinho Biosciences, como um exemplo. Revestir a placa de cultura celular desejada com uma solução de 22,4 ug / ml de células e cola de tecido durante 20 min à TA. Lave os poços com água 2-3 vezes antes de semear as células. </li><li> No final do tratamento, as esferas de tumor colheita utilizando um 40 filtro de células de um, centrifugar as células a 900 xg durante 5 min e ressuspender o sedimento em 1 ml de tripsina. Incubar durante 20 min a 37 ° C. </li><li> Placa células na placa de cultura celular singularizados a uma densidade de 30.000 células / poço para uma placa de 96 cavidades (volume final: 150 uL). Ressuspender as células em meio de ensaio de consumo de oxigénio contendo 8 mM de glucose e piruvato de sódio 2 mM. </li><li> Centrifugar as células para o fundo do poço através da rotação de centrifugação até os poços 100 xg foi atingido e, em seguida, permitir que o batente de centrífuga com desligar travão. Inverta a orientação da placa e repita o processo. Transferir a placa para uma temperatura de 37 ° C, sem adição de incubadora de CO2 durante 30 min. </li><li> Ao mesmo tempo, preparar o cartucho para o ensaio. Cada poço tem 4 injetores diferentes para carregar (25 ul / portuárias): <ol><li> Port A: metformina. Para se obter uma concentração final de 3 mM no bem, preparar uma solução 8x (24 mM) como o volume final será de 175ul após a injeção de porto A. </li><li> Porto B: metformina. Para adicionar 3 mM e obter uma concentração final de 6 mM no bem, preparar uma solução de 9 x (27 mM) como o volume final será de 200 ul após a injecção de porta B. </li><li> Porta C: metformina. Para adicionar 3 mM e obter uma concentração final de 9 mM no bem, preparar uma solução 10x (30 mM) como o volume final será de 225 ul após a injecção de porta C. </li><li> Port D: rotenona 11 uM, 1 uM como para obter a concentração final no poço (11x). Nota: rotenona inibe completamente qualquer actividade mitocondrial residual. </li></ol></li><li> Calibra-se o cartucho e carregar a placa de cultura celular. Realizar o ensaio com o protocolo padrão de mistura e medição. </li><li> Calcula-se a percentagem de inibição da respiração mitocondrial total realizado por metformina como a percentagem de inibição obtida com rotenona (estabelecida como 100%). </li></ol></li></ol> 4.Xenoenxerto Modelo para o cancro do pâncreas humano em ratos imunocomprometidos NOTA: Os números suficientes de, modelos nus ou outras atímicos fêmeas mais imunocomprometidos mouse, como NOD-SCID, SCID-Bege, ou NSG para as experiências 33. Autoclave todos os instrumentos cirúrgicos antes da experiência e permitir que arrefeçam até à temperatura ambiente antes da sua utilização. Para os tumores subcutâneos foi utilizado um mínimo de 4 ratos por condição com um tumor por flanco para um total de oito tumores. <ol><li> Xenoenxerto Transplantation <ol><li> Preparar a partir de peças tumorais espécimes de tecido de cancro pancreático humano. Transferência do tumor em uma placa de Petri e dissecar o tecido em pedaços pequenos (2 mm de diâmetro, ~ 8 mm3) utilizando um bisturi e pinça para segurar o tecido. Mergulhar as peças obtidas em solução de mistura de proteína gelatinosa mantido em gelo. </li><li> Anestesiar ratos usando 1-3% de isofluorano ou outros anestésicos inalados ou injetáveis. NOTA: Antes de iniciar qualquer proc cirúrgicoedure, garantir que os ratos perderam completamente a consciência, estimulando a pele abdominal ou reboca com um par de fórceps dissidentes. Aplicar pomada para evitar o ressecamento. </li><li> Uma vez que a anestesia começou a produzir efeitos, limpe a parte de trás dos ratos com contendo etanol pele anti-séptico. Administrar buprenorfina (0,05 mg / kg de peso corporal) antes da cirurgia, para garantir a analgesia pós-operatória. </li><li> Levante a pele para trás com uma pinça, faça uma 0,7-1,0 cm de comprimento incisão com tesoura micro estéreis e sem rodeios, então, preparar uma pequena bolsa subcutânea, no qual é inserido um pedaço de tecido de câncer de pâncreas derivado do paciente (~ 8 milímetros 3). </li><li> Fechar a ferida utilizando 1-2 grampos da pele. Removê-los após 7 dias. Retornar os ratos às suas gaiolas e mantê-los em uma almofada de aquecimento ou sob uma lâmpada de aquecimento até que estejam totalmente ativo novamente. </li><li> Após a implantação do tumor, os ratos monitorizar, pelo menos, duas vezes por semana para o crescimento do tumor e os sinais gerais de morbilidade resultante tal como pele enrugadas, hunched postura e imobilidade. </li><li> Uma vez que os tumores atingem um tamanho médio de 200 mm3, os ratinhos foram distribuídos aleatoriamente para tratamentos respectivos. Administrar veículo ou metformina diariamente através de injeções ip (150 mg / kg BW) ou através da água potável (150 mg / kg de peso corporal) com os efeitos do tratamento comparáveis. </li><li> Monitorar a carga do tumor utilizando um calibrador e calcular o volume do tumor uma vez por semana (medição do volume do tumor = comprimento x 1/2 respiração x largura). </li><li> Sacrificar os ratos uma vez os tumores atingem 1 cm de diâmetro ou ratos começam a mostrar sinais de dor ou doença grave, conforme especificado acima. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Whipple, C. A., Young, A. L., Korc, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+KrasG12D-driven+genetic+mouse+model+of+pancreatic+cancer+requires+glypican-1+for+efficient+proliferation+and+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">A KrasG12D-driven genetic mouse model of pancreatic cancer requires glypican-1 for efficient proliferation and angiogenesis.</a> Oncogene. 31 (20), 2535-2544 (2012).</li>
<li>Li, D. S., Yuan, Y. H., Tu, H. J., Liang, Q. L., Dai, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+islet+isolation+from+mouse+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">A protocol for islet isolation from mouse pancreas.</a> Nat Protoc. 4 (11), 1649-1652 (2009).</li>
<li>Rahib, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Projecting+cancer+incidence+and+deaths+to+2030%3A+the+unexpected+burden+of+thyroid%2C+liver%2C+and+pancreas+cancers+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Projecting cancer incidence and deaths to 2030: the unexpected burden of thyroid, liver, and pancreas cancers in the United States.</a> Cancer Res. 74 (11), 2913-2921 (2014).</li>
<li>Siegel, R., Naishadham, D., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics.</a> CA Cancer J Clin. 62 (1), 10-29 (2012).</li>
<li>Burris, H. A. 3rd, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvements+in+survival+and+clinical+benefit+with+gemcitabine+as+first-line+therapy+for+patients+with+advanced+pancreas+cancer%3A+a+randomized+trial%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Improvements in survival and clinical benefit with gemcitabine as first-line therapy for patients with advanced pancreas cancer: a randomized trial.</a> J Clin Oncol. 15 (6), 2403-2413 (1997).</li>
<li>Moore, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erlotinib+plus+gemcitabine+compared+with+gemcitabine+alone+in+patients+with+advanced+pancreatic+cancer%3A+a+phase+III+trial+of+the+National+Cancer+Institute+of+Canada+Clinical+Trials+Group%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Erlotinib plus gemcitabine compared with gemcitabine alone in patients with advanced pancreatic cancer: a phase III trial of the National Cancer Institute of Canada Clinical Trials Group.</a> J Clin Oncol. 25 (15), 1960-1966 (2007).</li>
<li>Cunningham, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+III+randomized+comparison+of+gemcitabine+versus+gemcitabine+plus+capecitabine+in+patients+with+advanced+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Phase III randomized comparison of gemcitabine versus gemcitabine plus capecitabine in patients with advanced pancreatic cancer.</a> J Clin Oncol. 27 (33), 5513-5518 (2009).</li>
<li>Von Hoff, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+survival+in+pancreatic+cancer+with+nab-paclitaxel+plus+gemcitabine%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Increased survival in pancreatic cancer with nab-paclitaxel plus gemcitabine.</a> N Engl J Med. 369 (18), 1691-1703 (2013).</li>
<li>Conroy, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FOLFIRINOX+versus+gemcitabine+for+metastatic+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">FOLFIRINOX versus gemcitabine for metastatic pancreatic cancer.</a> N Engl J Med. 364 (19), 1817-1825 (2011).</li>
<li>Gourgou-Bourgade, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+FOLFIRINOX+compared+with+gemcitabine+on+quality+of+life+in+patients+with+metastatic+pancreatic+cancer%3A+results+from+the+PRODIGE+4%2FACCORD+11+randomized+trial%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Impact of FOLFIRINOX compared with gemcitabine on quality of life in patients with metastatic pancreatic cancer: results from the PRODIGE 4/ACCORD 11 randomized trial.</a> J Clin Oncol. 31 (1), 23-29 (2013).</li>
<li>Yachida, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distant+metastasis+occurs+late+during+the+genetic+evolution+of+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Distant metastasis occurs late during the genetic evolution of pancreatic cancer.</a> Nature. 467 (7319), 1114-1117 (2010).</li>
<li>Garcia-Silva, S., Frias-Aldeguer, J., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cells+%26+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Pancreatology%22%5BJournal%5D)">Stem cells & pancreatic cancer.</a> Pancreatology. 13 (2), 110-113 (2013).</li>
<li>Hermann, P. C., Mueller, M. T., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+cancer+stem+cells--insights+and+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opin+Biol+Ther%22%5BJournal%5D)">Pancreatic cancer stem cells--insights and perspectives.</a> Expert Opin Biol Ther. 9 (10), 1271-1278 (2009).</li>
<li>Hermann, P. C., Huber, S. L., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metastatic+cancer+stem+cells%3A+a+new+target+for+anti-cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Metastatic cancer stem cells: a new target for anti-cancer therapy.</a> Cell Cycle. 7 (2), 188-193 (2008).</li>
<li>Hermann, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+populations+of+cancer+stem+cells+determine+tumor+growth+and+metastatic+activity+in+human+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Distinct populations of cancer stem cells determine tumor growth and metastatic activity in human pancreatic cancer.</a> Cell Stem Cell. 1 (3), 313-323 (2007).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+pancreatic+cancer+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Identification of pancreatic cancer stem cells.</a> Cancer Res. 67 (3), 1030-1037 (2007).</li>
<li>Kreso, A., Dick, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+the+cancer+stem+cell+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Evolution of the cancer stem cell model.</a> Cell Stem Cell. 14 (3), 275-291 (2014).</li>
<li>Gallmeier, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+ataxia+telangiectasia-+and+Rad3-related+function+abrogates+the+in+vitro+and+in+vivo+tumorigenicity+of+human+colon+cancer+cells+through+depletion+of+the+CD133%28%2B%29+tumor-initiating+cell+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Inhibition of ataxia telangiectasia- and Rad3-related function abrogates the in vitro and in vivo tumorigenicity of human colon cancer cells through depletion of the CD133(+) tumor-initiating cell fraction.</a> Stem Cells. 29 (3), 418-429 (2011).</li>
<li>Hermann, P. C., Bhaskar, S., Cioffi, M., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+stem+cells+in+solid+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cancer+Biol%22%5BJournal%5D)">Cancer stem cells in solid tumors.</a> Semin Cancer Biol. 20 (2), 77-84 (2010).</li>
<li>Mueller, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+targeted+treatment+to+eliminate+tumorigenic+cancer+stem+cells+in+human+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Combined targeted treatment to eliminate tumorigenic cancer stem cells in human pancreatic cancer.</a> Gastroenterology. 137 (3), 1102-1113 (2009).</li>
<li>Lonardo, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nodal%2FActivin+signaling+drives+self-renewal+and+tumorigenicity+of+pancreatic+cancer+stem+cells+and+provides+a+target+for+combined+drug+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Nodal/Activin signaling drives self-renewal and tumorigenicity of pancreatic cancer stem cells and provides a target for combined drug therapy.</a> Cell Stem Cell. 9 (5), 433-446 (2011).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-Met+is+a+marker+of+pancreatic+cancer+stem+cells+and+therapeutic+target%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">c-Met is a marker of pancreatic cancer stem cells and therapeutic target.</a> Gastroenterology. 141 (6), 2218-2227 (2011).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+restricted+cell+population+propagates+glioblastoma+growth+after+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A restricted cell population propagates glioblastoma growth after chemotherapy.</a> Nature. 488 (7412), 522-526 (2012).</li>
<li>Schepers, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lineage+tracing+reveals+Lgr5%2B+stem+cell+activity+in+mouse+intestinal+adenomas%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Lineage tracing reveals Lgr5+ stem cell activity in mouse intestinal adenomas.</a> Science. 337 (6095), 730-735 (2012).</li>
<li>Driessens, G., Beck, B., Caauwe, A., Simons, B. D., Blanpain, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+mode+of+tumour+growth+by+clonal+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Defining the mode of tumour growth by clonal analysis.</a> Nature. 488 (7412), 527-530 (2012).</li>
<li>Shaw, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+kinase+LKB1+mediates+glucose+homeostasis+in+liver+and+therapeutic+effects+of+metformin%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The kinase LKB1 mediates glucose homeostasis in liver and therapeutic effects of metformin.</a> Science. 310 (5754), 1642-1646 (2005).</li>
<li>Martin-Castillo, B., Vazquez-Martin, A., Oliveras-Ferraros, C., Menendez, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metformin+and+cancer%3A+doses%2C+mechanisms+and+the+dandelion+and+hormetic+phenomena%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Metformin and cancer: doses, mechanisms and the dandelion and hormetic phenomena.</a> Cell Cycle. 9 (6), 1057-1064 (2010).</li>
<li>Honjo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metformin+sensitizes+chemotherapy+by+targeting+cancer+stem+cells+and+the+mTOR+pathway+in+esophageal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Oncol%22%5BJournal%5D)">Metformin sensitizes chemotherapy by targeting cancer stem cells and the mTOR pathway in esophageal cancer.</a> Int J Oncol. 45 (2), 567-574 (2014).</li>
<li>Wurth, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metformin+selectively+affects+human+glioblastoma+tumor-initiating+cell+viability%3A+A+role+for+metformin-induced+inhibition+of+Akt%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Metformin selectively affects human glioblastoma tumor-initiating cell viability: A role for metformin-induced inhibition of Akt.</a> Cell Cycle. 12 (1), 145-156 (2013).</li>
<li>Cufi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metformin-induced+preferential+killing+of+breast+cancer+initiating+CD44%2BCD24-%2Flow+cells+is+sufficient+to+overcome+primary+resistance+to+trastuzumab+in+HER2%2B+human+breast+cancer+xenografts%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Metformin-induced preferential killing of breast cancer initiating CD44+CD24-/low cells is sufficient to overcome primary resistance to trastuzumab in HER2+ human breast cancer xenografts.</a> Oncotarget. 3 (4), 395-398 (2012).</li>
<li>Lonardo, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metformin+targets+the+metabolic+achilles+heel+of+human+pancreatic+cancer+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Metformin targets the metabolic achilles heel of human pancreatic cancer stem cells.</a> PLoS One. 8 (10), e76518(2013).</li>
<li>Gu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+B27+supplement+on+promoting+in+vitro+propagation+of+Her2%2Fneu-transformed+mammary+tumorspheres%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biotech+Res%22%5BJournal%5D)">The effect of B27 supplement on promoting in vitro propagation of Her2/neu-transformed mammary tumorspheres.</a> J Biotech Res. 3, 7-11 (2011).</li>
<li>Ishizawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-initiating+cells+are+rare+in+many+human+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Tumor-initiating cells are rare in many human tumors.</a> Cell Stem Cell. 7 (3), 279-282 (2010).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255 (5052), 1707-1710 (1992).</li>
<li>Singec, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+actual+sensitivity+and+specificity+of+the+neurosphere+assay+in+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Defining the actual sensitivity and specificity of the neurosphere assay in stem cell biology.</a> Nat Methods. 3 (10), 801-806 (2006).</li>
<li>Lawson, D. A., Xin, L., Lukacs, R. U., Cheng, D., Witte, O. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+functional+characterization+of+murine+prostate+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Isolation and functional characterization of murine prostate stem cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (1), 181-186 (2007).</li>
<li>Seaberg, R. M., van der Kooy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+rodent+neurogenic+regions%3A+the+ventricular+subependyma+contains+neural+stem+cells%2C+but+the+dentate+gyrus+contains+restricted+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Adult rodent neurogenic regions: the ventricular subependyma contains neural stem cells, but the dentate gyrus contains restricted progenitors.</a> J Neurosci. 22 (5), 1784-1793 (2002).</li>
<li>Jimeno, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+direct+pancreatic+cancer+xenograft+model+as+a+platform+for+cancer+stem+cell+therapeutic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">A direct pancreatic cancer xenograft model as a platform for cancer stem cell therapeutic development.</a> Mol Cancer Ther. 8 (2), 310-314 (2009).</li>
<li>Hirschmann-Jax, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+distinct+%27side+population%27+of+cells+with+high+drug+efflux+capacity+in+human+tumor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">A distinct 'side population' of cells with high drug efflux capacity in human tumor cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (39), 14228-14233 (2004).</li>
<li>Miranda-Lorenzo, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+autofluorescence%3A+a+biomarker+for+epithelial+cancer+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Intracellular autofluorescence: a biomarker for epithelial cancer stem cells.</a> Nat Methods. 11 (11), 1161-1169 (2014).</li>
</ol>

Os autores não têm interesse competindo para divulgar.

Com o surgimento e posterior validação do conceito de CSC para muitos tumores, o campo de desenvolvimento de medicamentos ganhou novo impulso, com o potencial para o desenvolvimento de tratamentos de câncer mais eficientes e, posteriormente, redução do risco de recidiva da doença. No entanto, o campo CSC ainda está em um estado precoce e mais precisa ser alcançado em termos de compreensão origem CSC e propagação, e seu papel na formação da arquitetura tumor e promovendo metástase. Neste contexto, a utilização de ensaios de CSC e reprodutíveis significativos, bem como a interpretação de dados informado obtido representa um componente fundamental para o avanço da nossa compreensão da biologia CSC. A partir de muitas perspectivas biológica, formação esfera emergiu como um ensaio extremamente valioso; no entanto, os usuários devem estar cientes de suas limitações, a fim de interpretar corretamente os resultados experimentais. Um aspecto importante a considerar antes mesmo da avaliação da esfera formação de dados, é a origem da amostra investigada, uma vez que os resultados obtidos a partir de amostras frescas derivado de paciente pode ser significativamente diferentes dos obtidos a partir de linhas celulares de cancro estabelecidas. Clássicos ensaios de formação envolvem a esfera sementeira de células a uma densidade clonal em placas de ultrabaixo-fixação e avaliar a formação esfera na presença de factor de crescimento epidérmico (EGF) e / ou factor de crescimento de fibroblasto básico (b-FGF) enriquecido, mas meio isento de soro de 21, 34. A composição do meio de cultura é também uma questão importante a considerar. Na nossa experiência verificou-se que o DMEM / F12 suplementado com B27, bFGF e glutamina na ausência de soro era um meio ideal para crescer, expandir-se e manter a CSC em condições indiferenciadas. Verificou-se que nestas condições de cultura (meio de suspensão e) as células expressam quantidades elevadas de marcadores de células estaminais do cancro (incluindo CD133 +, CD44 + e CD24 +) e não expressam proteínas associadas à diferenciação (CK-20 E CK-19). Um dos pressupostos fundamentais para estes ensaios é que cada esfera é clonal, ou seja, uma esfera resulta da expansão de uma única célula-tronco. No entanto, as esferas são intrinsecamente estruturas dinâmicas que são propensas a se fundir, mesmo a baixa densidade de semeadura 35. Chapeamento de células é um passo crítico no protocolo ea densidade de uma célula / poço certamente pode contornar o problema de agregação. Mas mesmo para progenitores prospectivamente ordenadas, este regularmente resulta na formação de muito baixa esfera, devido à baixa actividade de formação de esfera intrínseca e também pode ser atribuída a estimulação autócrina limitado devido aos efeitos de diluição. Na nossa experiência, observou-se que apenas 30% das células plaqueadas são capazes de formar esferas. Recomenda-se também utilizar, pelo menos, 100 células / a obtenção de resultados consistentes e reproduzíveis. Outros métodos de cultura para a CSC crescimento baseiam-se em culturas em 3D sólido ou semi-sólidos (por exemplo, com base em matrigel, colagénio ou metilcelulose). Estes métodos têm sido utilizados para limitar a mobilidade de células e agregação de células posterior 36. No entanto, cada uma dessas matrizes carrega as suas próprias limitações. Por exemplo, Matrigel é uma membrana basal solúvel isolado do Engelbreth-Holm-Swan (EHS) do tumor e, embora o extracto do tumor se assemelha ao ambiente extracelular complexo encontrada em muitos tecidos, que contém múltiplos factores de crescimento mais ou menos bem definidos, que muitas vezes presta mecanicista estudos para elementos reguladores específicos muito difícil. Outro ponto de consideração é que as funções das células-tronco de capacidades e de formação de esfera não são termos intercambiáveis ​​34. Enquanto certas células estaminais e progenitoras têm mostrado exibir falha de formação de esfera capacidade de 37, para gerar in vitro esferas não exclui função in vivo tronco / progenitoras. Por exemplo, as células estaminais quiescentes simplesmente não podem responder aos estímulos extracelulares previstos pelaseleccionado em condições de cultura in vitro. Assim, a longo prazo in vitro e na capacidade de auto-renovação vivo de populações de células purificadas, preferencialmente durante passagens em série, deve ser avaliada a fim de provar ou refutar a função das células-tronco. Neste contexto, a capacidade de propagar prospectivamente e, simultaneamente, várias populações de células estaminais e progenitoras é um aspecto crucial do ensaio de formação de esfera e torna este ensaio altamente valiosa para o campo CSC; contanto que as suas limitações são mantidos em mente para a interpretação dos dados obtidos. Os ensaios de formação de esfera têm sido amplamente utilizados para identificar células estaminais retrospectivamente com base na sua capacidade de auto-renovação e diferenciação ao nível da célula individual in vitro. A descoberta de marcadores que permitem o isolamento de células estaminais em perspectiva e a sua progénie de seu nicho in vivo permite que as propriedades funcionais de populações purificadas a ser definida. O combination de ensaio de formação de esfera e o FACS é uma estratégia eficaz para isolar as células de tecido sólido ou enriquecer subpopulações específicas de PDAC em cultura. Por exemplo, a expressão simultânea de EpCAM, CD24 e CD44 define uma subpopulação de CSCs capaz de: auto-renovação, diferenciar e iniciar um tumor, o que reflecte a heterogeneidade do tumor original. Hermann et ai. mostrou que as células CD133 + possuía capacidade proliferativa aumentada e CSC dispõe de 15. Outros marcadores também têm sido utilizados para a caracterização das CSCs: expressão (1-desidrogenase aldeído) ALDH- 1 está associada com células altamente tumorigénicas em 38 cancro do pâncreas; células capazes de excluir o corante de ADN Hoechst 33342, população lado nomeado (SP) células, têm a capacidade comprovada para iniciar tumores 39. Recentemente, nós mostramos que um compartimento subcelular autofluorescência caracteriza uma população distinta de células humanas com traços exclusivos CSC em diferentes tipos de tumores40. Apesar de nenhum destes marcadores parece caracterizar selectivamente uma população pura das CSCs, combinações de marcadores mais complexos e mais precisa de ser utilizado para purificar FACS populações de células mais refinados. Muitas questões ainda permanecem sobre o papel preciso de CSCs na origem, progressão, e resistência a drogas de tumores. Por exemplo, uma maneira de abordar a questão de evolução clonal para definir se e como um único CSC inicia um tumor, poderia ser a de analisar amostras de pacientes em diferentes estágios da doença, e especificamente seguir os números de CSCs durante e após o tratamento. Ao responder a estas perguntas, podemos fazer progressos significativos do nosso conhecimento de CSCs em tumores sólidos e desenvolver terapias medicamentosas para prevenir a progressão do tumor e, em última análise recaída.

Adenocarcinoma ductal do pâncreas (PDAC) é um dos tumores sólidos mais agressivos. É atualmente o 4º morte mais comum relacionada com o cancro na sociedade ocidental e está previsto para subir para a 2ª causa mais freqüente dentro da próxima década (~ 400 mil mortes por ano no mundo) 3 .No momento do diagnóstico de 90% dos pacientes apresentam com doença avançada, que tem uma sobrevivência de menos de 5% de 5 anos. Esta taxa de sobrevivência foi decepcionante manteve-se inalterada nos últimos 50 anos, apesar de as actividades de investigação cada vez mais intensivos 4. Dos restantes 10% dos pacientes que têm, potencialmente, a doença &quot;curável&quot; através de ressecção cirúrgica, 80% morrerão de reincidência no prazo de 5 anos. Por muitos anos o padrão de cuidados para a doença avançada tem sido monoterapia gemcitabina, mas isso só confere uma vantagem de sobrevivência marginal 5. Pequenas melhorias na sobrevivência a curto prazo foram alcançados pela adiçãode erlotinib 6 ou 7 capecitabina, no entanto, o benefício de sobrevivência é na ordem de semanas com a sobrevivência global mediana ainda ~ 6 meses. Recentemente, resultados mais encorajadores surgiram para gemcitabina / paclitaxel nab 8 ea combinação FOLFIRINOX regime 9,10. Estas terapias melhorar a sobrevida média por uns modestos 2 e 4 meses, respectivamente, mas são altamente tóxicos e sobreviventes a longo prazo ainda são uma rara exceção. Embora o tratamento oferece o potencial de melhoria, estes são regimes tóxicas a que muitos pacientes não respondem ou mostram apenas melhorias incrementais na sobrevida global. Como consequência, há uma necessidade urgente para complementar as terapias actuais e desenvolver novos, abordagens terapêuticas multimodais mais prováveis. Tumor Heterogeneidade É cada vez mais evidente que a heterogeneidade câncer não está confinada somente à distinta evolutiva subclones within cada tumor 11, mas também accionado por fenotípica e heterogeneidade funcional e plasticidade dentro de cada sub-clone 12. As chamadas células-tronco cancerosas (CSCs) ou células promotoras de tumor são responsáveis ​​pela heterogeneidade intraclonal 13-16. Especificamente, CSCs representam um subconjunto de células de câncer, para que nós e outros forneceram evidências conclusivas, até a única célula, que representam a raiz da doença, dando origem a todas as progênies diferenciadas dentro de cada subclone câncer 17. Mais importante ainda, estas células são essenciais para o comportamento metastático e também representam uma fonte importante para a recidiva da doença após o tratamento, mesmo com drogas relativamente eficazes, capazes de induzir a regressão do tumor inicial (por exemplo, paclitaxel nab) 15,18-20. É importante notar que CSCs não representam necessariamente bona fide células-tronco, nem eles surgem a partir de células-tronco do tecido em muitos casos, mas eles têm acquired certas características das células-tronco. A maior parte destes são funcionalmente definidos, por exemplo CSCs estão equipados com a capacidade de auto-renovação indefinido o que os torna resistentes à quimioterapia convencional, e mostram aumento da capacidade de invasão, que promove a actividade metastática. Os fenótipos funcionais células-tronco cancerígenas O fenótipo funcional de CSCs é baseada na sua capacidade de se auto-renovar, que podem ser testados in vitro, utilizando a formação de esfera de série e ensaios de formação de colónia, respectivamente. Ainda mais importante, os CSCs capazes de auto-renovação urso em tumorigenicidade in vivo que podem ser testadas por diluição limitante em ensaios in vivo como a leitura funcional final, de preferência, durante o transplante de série exclusiva indicativo de tumorigenicidade de longo prazo. Além disso, existe uma grande heterogeneidade no interior do compartimento do CSC, com uma subpopulação distinta de CSCs ostentam a capacidade exclusiva para dar origem a metástases que não é apenas umconseqüência direta de sua exclusiva em tumorigenicity vivo. Na verdade, CSCs metastastitic adquirir a capacidade de iludir o tumor primário, anoikis sobreviver e, eventualmente, translocam e sementes locais secundários. Estas capacidades funcionais avançados podem ser ensaiados in vitro usando ensaios de invasão modificados e in vivo, utilizando ensaios de metástases. Segmentação células-tronco cancerosas Nós e outros forneceram evidências convincentes de que os tratamentos com foco na massa tumoral de células diferenciadas PDAC, mesmo em combinação com agentes de direccionamento do estroma, não têm um grande impacto sobre a progressão do tumor e resultado subsequente a menos que combinado com uma estratégia de segmentação CSC-21, 22. Assim, com base nas funções essenciais de CSCs na progressão da doença e resistência à terapia, estas células deve significar um componente essencial para qualquer nova abordagem de tratamento 18,20, mas irá exigir um conhecimento muito mais completa of a maquinaria reguladora de CSCs. Embora CSCs e suas progênies mais diferenciados suportar estados idênticos terra genéticas em relação a alterações genéticas, CSCs apresentam expressão genética distinta e, portanto, epigenetically determinado perfis que módulos share com células-tronco pluripotentes. A maioria dos genes envolvidos na geração de células-tronco pluripotentes induzidas (Nanog, OCT3 / 4, Klf4, Sox2) não só foram ligados ao câncer, mas a sua expressão é praticamente restrito ao compartimento de CSCs. Além disso, a relevância funcional dos CSCs por experiências de perda de função usando ferramentas genéticas para o direcionamento de CSCs já estabeleceu firmemente o conceito de CSC para vários tipos de câncer 23-25. Embora a maioria destas abordagens são baseadas em modelos de ratos e, portanto, não são facilmente transferíveis para a clínica, eles não fornecem prova-de-conceito para o potencial relevância clínica da segmentação CSCs em combinação com células tumorais em massa. Estudando células-tronco cancerosas Em Vitro identificar seu calcanhar de Aquiles A fim de identificar novos modos e clinicamente aplicável para o direccionamento CSCs, as suas características são regularmente estudada in vitro e a formação de esfera é amplamente utilizado neste contexto. Originalmente desenvolvido para o estudo de biologia das células estaminais normais, incluindo a auto-renovação e diferenciação da capacidade, este ensaio foi depois adaptado para estudar CSCs in vitro e tem sido utilizado para investigar os CSCs isoladas de PDAC 20. Descobrimos que as esferas tumorais formados a partir de células humanas primárias PDAC suportar todas as características distintas de CSCs, portanto, indicando que eles contêm bona fide 21 CSCs pancreáticas. Assim, o ensaio esfera tumor representa uma ferramenta poderosa para a tela para terapias mais eficazes in vitro, mas os resultados precisam ser melhor avaliadas em mais rigorosos ensaios in vivo. Com efeito, os dados gerados com este ensaio in vitro deverá ser tratado com grande cuidado, pois the ensaio pode ser sujeito a erros significativos. Protocolos altamente padronizados, incluindo contagem automatizada de esferas formadas, devem ser estabelecidos para garantir que os dados reprodutíveis e preditiva. Neste contexto, recentemente utilizado este ensaio para a tela CSCs pancreáticas derivados de um conjunto diversificado de PDACs humanos primários e mostrou que estas células são altamente vulneráveis ​​a reprogramação metabólica pela metformina composto anti-diabético. Anteriormente, tinha sido demonstrado metformina para inibir a expansão de células de cancro através da activação indirecta de quinase ativada por AMP proteína (AMPK) e a subsequente inibição de sinalização da mTOR 26, resultando na síntese de proteínas reduzida e a proliferação de células 27. Em adição a estes efeitos sobre a população de tumores grandes quantidades, nós e outros descobriram que a metformina é capaz de atacar e eliminar efectivamente a subpopulação CSCs numa série de tumores sólidos, tais como cancro da mama, cancro do esófago, o glioblastoma e o cancro do pâncreas 28-31 &lt;/ Sup&gt;. Assim, a metformina representa uma nova estratégia terapêutica promissora e segura para vários tipos de câncer com necessidade médica não atendida atualmente. Além disso, utilizando a formação de esfera, como um meio de enriquecer para os CSCs, que mostrou que os efeitos primários da metformina sobre CSCs pancreáticas foi independente da activação de AMPK e confiou na sua toxicidade mitocondrial modesta (através da inibição do complexo I), o que aparentemente foi letal para o subconjunto de CSCs somente. Para este último, fomos capazes de avaliar o seu consumo de oxigênio e produção de ROS mitocondrial celular como indicadores de toxicidade da droga a nível celular. Posteriormente, esses dados in vitro poderia ser validados em modelos pré-clínicos de mouse e de fato resultou em 31 sobrevivência significativamente prolongada. A metodologia aqui apresentada permite a rápida geração de perfis de sensibilidade aos fármacos para os CSCs, incluindo estudos sobre os seus efeitos sobre o metabolismo do CSC. Nós agora fornecer prorrogado detalhes experimentais sobre o utilizado complementar in vitro e em procedimentos in vivo.

<table><tbody><tr><td>Câmara de Contagem/Hemocitômetro&nbsp;</td>Contador e Analisador <td>de Células Hausser Scientific Co</td><td>3200</td><td></td></tr><tr><td>CASY para medição de proliferação e viabilidade</td><td>Roche Innovatis</td><td>AG CASY Modelo TTC 45,60,150 &mu; m</td><td></td></tr><tr><td>Dissociador GentleMACS&nbsp;</td><td>Miltenyi Co</td><td>130-093-235</td><td></td></tr><tr><td>Tubos C GentleMACS&nbsp;</td>Placas de Fixação Ultra-baixa de 24 poços <td>Miltenyi Co</td><td>130-093-237</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td>Placas de cultura de tecidos <td>Corning</td><td>3474</td><td></td></tr><tr><td>de 100 mm&nbsp;</td>Filtro <td>de célula 353803</td><td></td> <td>BD Falcon</td></tr><tr><td>&nbsp;</td>Tubo cônico de polipropileno <td>BD Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>15-ml&nbsp;</td>Tubo cônico de polipropileno <td>BD Falcon</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>50-ml&nbsp;</td>Tubos estéreis <td>BD Falcon</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>de 1,5 ml&nbsp;</td><td>Eppendorf</td><td>0030 120.086</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga de 50 ml&nbsp;</td><td>Corning</td><td>430828</td><td></td></tr><tr><td>Placas de Petri estéreis, placas de 10 cm&nbsp;</td><td>Agulhas</td><td>Corning 353003</td><td></td></tr><tr><td>26 G&nbsp;</td><td>Seringa Hamilton BD Falcon</td><td>300600</td><td></td></tr><tr><td>100 ul&nbsp;</td><td>Hamilton Syringe Co</td><td>81075</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase tipo IV&nbsp;</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>7909</td><td></td></tr><tr><td>RPMI Médio 1640&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>11875-085</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Penicilina/Estreptomicina, 100X&nbsp;</td><td>Tecnologias de vida</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>metformina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>D150959-5G</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamina, 200 mM, 100X&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose&nbsp;</td><td>Solução de</td> piruvato de sódio Sigma <td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>100mM&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Meio de ensaio de cavalo-marinho</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>100965-000</td><td></td></tr><tr><td>BD Cell-TAK Adesivo para Células e Tecidos&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>354240</td><td></td></tr><tr><td>Solução de tripsina, 0,05%&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>25300054</td><td></td></tr><tr><td>Suplemento B27 50x&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Fator Básico de Crescimento de Fibroblastos&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>F0291</td><td></td></tr><tr><td>Soro Bovino Albumina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A9576</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s Modified Eagle Medium/F12&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>D8437</td><td></td></tr><tr><td>Estéril 1x Dulbecco' s Solução salina tamponada com fosfato</td><td>Sigma</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>Azul Trypan&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Carboxi-DCFDA(5-(e-6)-Carboxi-2',7'-Diclorofluoresceína Diacetato)&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>C-369</td><td></td></tr><tr><td>Rotenona</td><td>Sigma</td><td>R8875</td><td></td></tr><tr><td>Etanol 70% (vol/vol)&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>459844</td><td></td></tr><tr><td>Isofluorano</td><td>IsoVet, Braun</td><td>571105.8</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD Biosciences</td><td>35620</td><td></td></tr><tr><td>Aplicador com ponta de algodão estéril</td><td>&nbsp; Puritan medical</td><td></td><td></td></tr><tr><td>XF96e FluxPak com placas celulares, calibrante e cartuchos</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>102416-100</td><td></td></tr><tr><td>XF96e Analisador de fluxo extracelular</td><td>Seahorse Bioscience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Incubadora com entrada CO2&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro tesoura</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinça</td><td></td><td></td><td></td>curva</tr><tr><td>Pinça</td><td></td><td></td><td></td>de lasca</tr><tr><td>Pinça</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

estudar o cancro do pâncreas stem características celulares para desenvolver estratégias novo tratamento

Studying Pancreatic Cancer Stem Cell Characteristics for Developing New Treatment Strategies

Adenocarcinoma ductal do pâncreas (PDAC) contém um subconjunto de células estaminais cancro exclusivamente tumorigénicas (CSCs) que foram mostrados para dirigir a iniciação do tumor, metástase e resistência à radio- e quimioterapia. Aqui nós descrevemos uma metodologia específica para a cultura de CSCs pancreáticas humanas primárias como esferas tumorais em condições independente de ancoragem. As células são cultivadas em condições não-aderentes isentas de soro, a fim de enriquecer para os CSCs enquanto suas progênies mais diferenciadas não sobrevivem e proliferam durante a fase inicial após a sementeira de células individuais. Este ensaio pode ser utilizado para estimar a percentagem de CSCs presentes numa população de células tumorais. Tanto o tamanho (que pode variar 35-250 micrómetros) e número de esferas tumorais formados representa a actividade de CSC abrigava tanto em populações em massa de células cancerosas em cultura ou recentemente colhidas e digeridos tumores 1,2. Utilizando este ensaio, verificou-se recentemente que a metformina ablates seletivamente pancreatic CSCs; uma descoberta que foi posteriormente confirmada pelos demonstrando expressão diminuída de genes / marcadores de superfície associada à pluripotência e reduziu em tumorigenicity vivo de células tratadas com metformina. Como etapa final para desenvolvimento pré-clínico que tratou ratinhos com tumores estabelecidos com metformina e encontrou sobrevivência significativamente prolongada. Os estudos clínicos que testam o uso de metformina em pacientes com PDAC estão actualmente em curso (por exemplo, NCT01210911, NCT01167738 e NCT01488552). Mecanicamente, descobrimos que a metformina induz a uma crise energética fatal em CSCs, aumentando a produção de espécies reativas de oxigênio (ROS) e reduzir a potencial transmembrana mitocondrial. Em contraste, não-CSCs não foram eliminadas pelo tratamento com metformina, mas reversível foram submetidos a paragem do ciclo celular. Portanto, nosso estudo serve como um exemplo de sucesso para o potencial de formação in vitro esfera como ferramenta de triagem para identificar compostos que potencialmente alvo CSCs, mas esta técnica exige ainda mais in vitro e in vivo de validação para eliminar falsos descobertas.

Metformina seletivamente alvos CSCs do pâncreas O primeiro analisou os efeitos funcionais do tratamento com metformina sobre a capacidade in vitro de auto-renovação de CSCs. Para esta finalidade, foi realizada utilizando ensaios de formação de esfera células pancreáticas humanas primárias cancerosas isoladas a partir de tecidos durante a cirurgia de ressecção PDAC. Observou-se que a metformina diminuiu fortemente o tamanho das esferas formadas (Figura 1A). Este foi provavelmente através da inibição da expansão de progênies de CSC, que ainda representam a maior parte das células encontradas em esferas como eles só são enriquecidos para CSCs. Com efeito, as esferas mais longos são cultivadas sem passagem das mais extensa a expansão de progênies mais diferenciadas será. Assim, descobrimos metformina para diminuir significativamente o número de esferas, na verdade, formadas independentemente do seu tamanho, ocorrendo de uma maneira dependente da dose o que sugere uma forte inibição da capacidade de auto-renovação de CSCs (dados não mostrados). Descobrimos que a metformina a 3 mm diminuiu significativamente o número de esferas formadas (Figura 1B). A fim de estudar mais rigorosamente os efeitos a longo prazo da metformina sobre a capacidade de auto-renovação das CSCs, que subsequentemente passadas as primeiras esferas formadas em esferas secundárias e terciárias. Apesar de apenas esferas primárias foram tratados com metformina, a formação de esferas na segunda e terceira passagens foi drasticamente e cada vez mais reduzida, o que implica o tratamento com metformina tinha efectivamente eliminado irreversivelmente a maioria das CSCs (Figura 1C). Assim, os nossos dados mostraram efeitos de tratamento significativos da metformina sobre a capacidade de auto-renovação das CSCs pancreáticos primários e, portanto, encorajou-nos a realizar mais mecanicista, bem como estudos in vivo. Metformina Inibe mitocondrial consumo de oxigênio e induz a produção de ROS Desde metformin foi mostrado que actua como um veneno mitocondrial por inibição da actividade do complexo I parcialmente, ao lado que examinou os efeitos agudos da metformina sobre o consumo de oxigénio celular em células derivadas de esfera. Para este propósito, seleccionámos duas células derivadas de tumores primários PDAC representativos e medido o consumo de oxigénio ao longo do tempo a seguir à injecção sequencial de 3 mM de metformina (três injecções) e 1 pM com rotenona (uma injecção). Como mostrado na Figura 2A, a injecção metformina induziu uma diminuição rápida e dependente da dose no consumo de oxigénio, a qual variou consideravelmente entre os diferentes tumores. Calculou-se a actividade mitocondrial residual mediante tratamento com metformina por injecção de rotenona, um complexo inibidor potente I, o qual é capaz de inibir completamente o consumo de oxigénio mitocondrial. Sensibilidade à metformina em termos de consumo de oxigénio mitocondrial correlacionada com a sua capacidade para induzir a produção de ROS definido como um deslocamento da média da popumento após o tratamento com metformina (Figura 2B, painel da esquerda), que pode ser facilmente quantificada (Figura 2B, painel da direita). Como esperado, as células primárias que foram mais sensíveis à inibição do consumo de oxigénio também mostrou o maior aumento na produção de ROS mediante o tratamento com metformina. Assim, estes metabólicas experimentos in vitro demonstram que as metas de metformina CSCs inibindo sua dependência na função mitocondrial, resultando em um aumento subsequente na produção de ROS mitocondrial e, eventualmente, indução de apoptose. Metformina Plateia PDAC Progressão In Vivo Finalmente estudaram os efeitos da metformina in vivo utilizando xenoenxertos de tecidos derivados de doentes com diferentes PDAC. Observou-se uma redução significativa na progressão do tumor para os ratinhos tratados com metformina, em comparação com o grupo de controlo, mas os tumores não completamente DISAppeared (Figura 3). Posteriormente, durante o seguimento a longo prazo todos os tumores eventualmente recaída sugerindo resistência metformina de células sobreviventes a fase inicial do tratamento. No entanto, o tratamento com metformina, mesmo quando aplicada como único agente, prolongou significativamente a sobrevivência em todos os ratos. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52801/52801fig1.jpg" /> Figura 1. A metformina seletivamente Alvos da CSCs. (A) A metformina diminuiu o tamanho das esferas. Imagens representativas de esferas obtidas após o tratamento com as doses indicadas de metformina para 7 dias (painel da direita). Quantificação de tamanho esfera (n≥6) (painel esquerdo), os números indicados no eixo das abscissas representar tumor individual. (B) A capacidade de formação de esfera na presença ou ausência de metformina durante 7 dias (n≥6), os números indicados em abcissaseixo representar tumor individual. (C) gráfico Representante da CSC capacidade de auto-renovação em esferas secundárias e terciárias de células de câncer pancreático primários. As esferas foram apenas tratados durante a formação esfera primeira geração para um total de 7 dias (n = 6). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52801/52801fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52801/52801fig2.jpg" /> Figura 2. O tratamento com metformina inibe consumo de oxigênio e induz a produção de ROS. (A) além de metformina inibe o consumo de oxigênio (OCR) de células derivadas de esfera. Duas esferas secundárias PDAC diferentes foram tratados com metformina e mudanças de OCR foram medidos por análise de fluxo extracelular. Rotenona injecção foi utilizado como um controlo para o consumo total de OCR mitocondrial.Eixo dos X representa a taxa de consumo de oxigénio em pmol de oxigénio / hora normalizados pelo teor de proteína em cada poço. esferas (B) PDAC utilizados em A, foram tratados durante 8 h com a metformina e a produção de ROS foi determinada por citometria de fluxo utilizando-carboxi DCFDA. À esquerda, o fluxo representante citometria parcelas. Certo, resumo dos dados de três experiências independentes. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52801/52801fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52801/52801fig3.jpg" /> Figura 3. A metformina Plateia PDAC Progressão In Vivo. Dois diferentes tecidos de xenotransplante PDAC foram implantadas em ratinhos imunocomprometidos e tratamento foi alocado depois foi verificado take tumor inicial. Os ratinhos foram tratados com metformina (MET) é adicionada à água potável (150 mg / kg de corpo weilutar; com base em 5 ml de consumo de água por dia). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52801/52801fig3large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

As células-tronco do câncer de pâncreas (CSCs) podem ser expandidas in vitro usando a técnica de cultura de esfera independente de ancoragem, que representa uma ferramenta poderosa para estudar a biologia do CSC e pode servir como o primeiro passo para desenvolver novas terapias direcionadas ao CSC. Aqui é fornecida a metodologia para expansão, análise e direcionamento de CSCs pancreáticas.

Estudar o cancro do pâncreas Stem características celulares para desenvolver estratégias Novo tratamento

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor ...

O objetivo geral do procedimento a seguir é expandir células-tronco cancerígenas in vitro utilizando uma técnica de cultura independente de aderência, e então testar os efeitos metabólicos de novas terapias direcionadas às células-tronco do câncer. Isso é realizado primeiramente dissociando uma amostra de tecido de adenocarcinoma pancreático humano em uma suspensão unicelular. Na segunda etapa, o tecido tumoral é submetido a digestão enzimática adicional e então semeado em uma placa de gelatina. Para remover a população de células fibroblásticas, as células cancerígenas isoladas são então semeadas em uma placa multiwell de aderência ultrabaixa e tratadas com o fármaco de interesse para avaliar a atividade metabólica e a formação de esferoides tumorais.No final, a droga de interesse pode ser utilizada em camundongos imunocomprometidos portadores de xenografias derivadas de pacientes para validar os efeitos da droga in vivo. Este método é uma ferramenta poderosa para o estudo da biologia das células-tronco cancerígenas e serve como um primeiro passo para o desenvolvimento de novas terapias direcionadas às células-tronco do câncer. Demonstrar o procedimento serei eu, um pesquisador júnior no Centro de Células-Tronco em Câncer e Envelhecimento no Instituto de Câncer de Mama, e Tini Cruz, uma estudante de doutorado do meu laboratório, para isolar células-tronco cancerígenas de um adenocarcinoma ductal pancreático em uma cabine de segurança biológica estéril.Use um escalpelo estéril e pinça para picar o tumor humano em uma placa de cultura de 60 por 15 milímetros contendo um mililitro de PBS estéril, adicionando outros três a quatro mililitros de PBS conforme necessário até que o tecido esteja completamente dissociado. Transfira a suspensão tecidual para um tubo cônico estéril e adicione PBS até um volume final de cinco mililitros. Em seguida, homogeneíze mecanicamente a amostra com uma centrífuga de dissociação e digira o tecido homogeneizado com colagenase a 37 graus Celsius.Após uma centrifugação de uma hora, ressuspenda as células, suspendendo o pellet em 10 mililitros de meio completo. Filtre a suspensão celular através de uma peneira de 40 micrômetros e centrifugue novamente as células. Desta vez, ressuspenda o pellet em cinco mililitros de um CK. Após cinco minutos em temperatura ambiente, remova o tampão de lise de glóbulos vermelhos por centrifugação e ressuspenda o pellet em meio para células-tronco cancerígenas.Em seguida, incubar as células em uma placa revestida com gelatina a 37 graus Celsius para remover a maioria das células fibroblásticas que aderem rapidamente. Após uma hora, recuperar o sobrenadante e quantificar o número de células de câncer pancreático viáveis para facilitar a formação de esferoides tumorais no câncer. Para o enriquecimento de células-tronco, diluir as células no volume apropriado de meio para células-tronco tumorais até uma concentração final de duas vezes 10 à potência de três células por mililitro e resfriar as células no gelo por alguns minutos.Em seguida, após adicionar 500 microlitros de PBS às primeiras e últimas fileiras de uma placa de 24 poços com aderência ultrabaixa, ressuspenda as células por pipetagem e semeie um mililitro de células por poço nos poços vazios da placa. Trate quatro poços de células com o fármaco de interesse e pelo menos quatro poços controle negativo com o veículo. Em seguida, incube as células a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono durante uma semana.A cada dois dias, adicione tratamento fresco ao veículo em cada um dos poços. No quinto ou sétimo dia, avalie o número de esferas tumorais formadas com um contador automático de células que permite a identificação de estruturas maiores para o empacotamento em série das esferas tumorais. No sétimo dia, utilize um filtro celular de 40 micrômetros para colher as esferas.Em seguida, centrifugue as esferas e incube-as em um mililitro de tripsina durante 20 minutos a 37 graus Celsius para dissociar o pellet em uma suspensão simples de células. Então, expanda as células por mais sete dias conforme acabou de ser demonstrado para preparar as esferas para a medição da produção de espécies reativas de oxigênio ou ROS. Após a dissociação conforme acabou de ser demonstrado, centrifugue as esferas e re-suspenda o pellet em HBSS contendo a sonda apropriada. Após um período de incubação de 20 minutos no escuro a 37 graus Celsius, coloque as células no gelo até a análise por citometria de fluxo para preparar as esferas para a medição do consumo de oxigênio.Primeiro, recubra uma placa de cultura celular de 96 poços com adesivo para células e tecidos por pelo menos 20 minutos à temperatura ambiente. Em seguida, dissocie as esferas com tripsina conforme demonstrado. Depois, lave a placa duas a três vezes com água para remover o adesivo em excesso e semeie as células singulares na concentração de três vezes 10 à quinta células por poço.Em 150 microlitros de meio de ensaio de consumo de oxigênio contendo glicose e piruvato de sódio, adira as células ao fundo dos poços por centrifugação até atingir 100 × g. Deixe o centrifugador parar sem freio. Em seguida, inverta a orientação da placa e repita a centrifugação.Agora, incube as células por 30 minutos a 37 graus Celsius, sem dióxido de carbono. Enquanto isso, carregue as entradas do cartucho do ensaio. A, B e C. Injete 25 microlitros de concentrações três, seis e nove milimolares do fármaco de interesse, respectivamente, e a entrada D com 25 microlitros de uma concentração de um micromolar do inibidor mitocondrial rone.Quando as células estiverem prontas, calibre a cartela e carregue a placa de cultura celular. Por fim, execute o ensaio com o protocolo padrão de mistura e medição. Nestes experimentos representativos, o tratamento de células-tronco de câncer pancreático com metformina reduziu fortemente o tamanho e o número das esferas tumorais. Além disso, essas reduções foram observadas em culturas de esferas secundárias e terciárias.Embora apenas a cultura da esfera primária tenha sido tratada com metformina, relata-se que a metformina atua como um inibidor mitocondrial. De fato, neste experimento, observou-se que a droga induz uma diminuição rápida e dependente da dose no consumo de oxigênio nas células tumorais, o que se correlaciona com sua capacidade de induzir a produção de espécies reativas de oxigênio (ROS). Importante, camundongos tratados com metformina exibem uma redução significativa, embora de curto prazo, na progressão do adenocarcinoma pancreático em comparação com os animais controle.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como dissociar tumores humanos frescos, isolar células cancerígenas primárias, estabelecer um cultivo de formação de esferoides e avaliar a atividade metabólica de células-tronco de câncer pancreático.

studying-pancreatic-cancer-stem-cell-characteristics-for-developing

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Células-tronco cancerosas (CSCs) foram identificados em uma série de tumores malignos. Neste protocolo, descrevemos um método de citometria de fluxo utilizando atividade aldeído desidrogenase e CD44 e CD24 expressão para isolar CSCs de xenoenxertos adenocarcinoma pancreático humano. Estas células viáveis ​​podem então ser utilizados em estudos funcionais e analíticos.

Isolamento de células-tronco de xenoenxertos Humano do Câncer de pâncreas

Este artigo descreve a técnica para isolar células-tronco de câncer de pâncreas (CSCs) do tecido de adenocarcinoma ductal pancreático humano (PDAC). Essas CSCs são usadas para estudar os efeitos funcionais do tratamento medicamentoso na capacidade de auto-renovação in vitro das CSCs para o desenvolvimento de tratamentos de câncer mais eficientes.

Isolamento de células-tronco PDAC: um método para isolar células-tronco cancerígenas de tumores pancreáticos

Este vídeo demonstra o protocolo para o desenvolvimento de esferoides de células-tronco de câncer de pâncreas in vitro. O ensaio pode servir como uma ferramenta de triagem para identificar compostos que potencialmente têm como alvo as células-tronco cancerígenas.

Ensaio de formação de esferas: um método in vitro para identificar células-tronco de câncer de pâncreas e terapias de triagem

Compreender o papel das células-tronco cancerígenas na recorrência tumoral e na resistência às terapias tornou-se um tópico de grande interesse na última década. Este artigo descreve o isolamento e a caracterização da subpopulação de células-tronco cancerígenas de linhagens celulares de carcinoma escamoso de cabeça e pescoço (CECP).

Isolamento e Caracterização de uma cabeça e pescoço carcinoma espinocelular subpopulação Tendo-tronco características celulares

Culturas organóides derivadas do paciente de adenocarcinoma ductal pancreático são um modelo tridimensional rapidamente estabelecido que representa compartimentos de células tumorais epiteliais com alta fidelidade, permitindo a pesquisa translacional sobre essa malignidade letal. Aqui, fornecemos métodos detalhados para estabelecer e propagar organóides, bem como para realizar ensaios biológicos relevantes usando esses modelos.

Isolamento e caracterização de modelos organóides de adenocarcinoma ductatopansa pâncreas derivados do paciente

No contexto clínico, pacientes com câncer pancreático localizado serão submetidos à pancreatectomia seguida de tratamento adjuvante. Este protocolo aqui relatado visa estabelecer um método seguro e eficaz de modelagem deste cenário clínico em camundongos nus, através da implantação ortotópica de câncer pancreático seguido de pancreatectomia distal e esplenectomia.

Um modelo de rato resemcional ortotópico de câncer pancreático

Este protocolo experimental descreve o isolamento de CBSCs de amostras de células e tecidos de câncer de mama, bem como os ensaios in vitro e in vivo que podem ser usados para avaliar o fenótipo e a função do CBSC.

Isolamento e Avaliação Funcional de Células-Tronco de Câncer de Mama Humano de Amostras de Células e Tecidos

Os modelos pré-clínicos visam avançar no conhecimento da biologia do câncer e predizer a eficácia do tratamento. Este trabalho descreve a geração de xenoenxertos derivados de pacientes (zPDXs) à base de peixe-zebra com fragmentos de tecido tumoral. Os zPDXs foram tratados com quimioterapia, cujo efeito terapêutico foi avaliado em termos de apoptose celular do tecido transplantado.

Estabelecimento de Xenoenxertos Derivados de Pacientes com Zebrafish de Câncer de Pâncreas para Teste de Quimiosensibilidade

Aloenxertos ortotópicos singênicos de adenocarcinoma ductal pancreático (ADP) de camundongos recapitulam a biologia, os fenótipos e as respostas terapêuticas dos subtipos da doença. Devido à sua rápida e reprodutível progressão tumoral, são amplamente utilizados em estudos pré-clínicos. Aqui, mostramos práticas comuns para gerar esses modelos, injetando culturas de PDAC murino singênico no pâncreas.

Aloenxertos Ortotópicos Singênicos de Camundongos para Modelo de Câncer de Pâncreas

As células metaplásicas pancreáticas são precursoras de células malignas que dão origem a tumores pancreáticos. No entanto, isolar células pancreáticas viáveis intactas é um desafio. Apresentamos aqui um método eficiente para dissociação do tecido pancreático. As células podem então ser usadas para sequenciamento de RNA de célula única (scRNA-seq) ou para co-cultivo bidimensional ou tridimensional.

Dissecção do tecido pancreático para isolar células únicas viáveis

O presente protocolo descreve a reprogramação do Adenocarcinoma Ductal Pancreático (ADP) e de células epiteliais ductais pancreáticas normais em células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs). Fornecemos um procedimento otimizado e detalhado, passo a passo, desde a preparação do lentivírus até o estabelecimento de linhas iPSC estáveis.

Reprogramação do Adenocarcinoma Ductal Pancreático para Pluripotência

Aprenda a expandir células-tronco cancerígenas pancreáticas in vitro usando cultura independente de ancoragem. Este método permite estudar a biologia das CSCs e desenvolver terapias direcionadas para o cancro do pâncreas.

Estudar o cancro do pâncreas Stem características celulares para desenvolver estratégias Novo tratamento

Explorar mais vídeos