Name: IV infusão contínua é a Rota escolha no tratamento da arginina-vasopressina Receptor Blocker conivaptan em camundongos para Estudar evocadas por acidente vascular cerebral Edema (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 44 s
Description: Aprenda a administrar conivaptan por infusão intravenosa contínua em camundongos após acidente vascular cerebral. Este método demonstra redução significativa do edema cerebral evocado pelo AVC comparado à via intraperitoneal.

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Agradecemos a Swedish Medical Center for fornecer o financiamento e instalações. Agradecemos também Craig Hospital para o uso generoso de espaço de laboratório.

Os experimentos foram realizados de acordo com as orientações dos Institutos Nacionais de Saúde para o cuidado e uso de animais em pesquisa e foram aprovados pelo Comitê Animal Care e Use o Swedish Medical Center. Todos os procedimentos foram realizados com técnicas assépticas apropriadas. Os animais experimentais utilizados para o estudo eram do sexo masculino, 3 meses de idade, tipo selvagem C57 com o peso corporal de 25 a 27 g. 1. Indução In Vivo do traçado <ol><li> Pré-revestir o filamento com resina dentária antes da cirurgia. <ol><li> Corte um pedaço longo 12 mm de filamento de uma sutura 7-0 nylon. Misturar 2 partes da resina com 1 parte de endurecedor, e em seguida, mergulhar imediatamente a ponta do filamento na mistura para cobrir cerca de 1/3 do comprimento total. Removê-lo de forma rápida e verificar se ele está coberto com um revestimento de superfície lisa de resina dental. </li><li> Ar secar o filamento durante 2 horas antes da utilização. </li></ol></li><li> Posicione o mouse em umN câmara de indução de anestesia (2 L de volume), e estabelece o caudal de 1,5% de isoflurano em ar ambiente enriquecido em oxigénio a 25% em 2 L / min indo para dentro da câmara. </li><li> Permitir que o rato permanecer na câmara de indução até ser completamente anestesiado, 8 como determinado por falta de resposta a beliscão cauda. </li><li> Posicione o mouse sobre a mesa de operação com uma almofada aquecida, e definir a concentração de isoflurano em 1% para a manutenção da anestesia entregues espontaneamente através do cone do nariz. </li><li> Grampo de cabelo na parte da frente ea parte de trás do pescoço, e pulverizar o pescoço com álcool. Aplicar pomada oftálmica veterinária em ambos os olhos. </li><li> Para monitorar continuamente a temperatura do corpo, use uma sonda de temperatura rectal ligado ao display digital durante a cirurgia. </li><li> Posicione o mouse na posição supina, aplicar a solução matagal iodopovidona 10% para desinfecção, cobrir com uma cortina estéril, e depois fazer uma incisão na linha média ao longo do pescoço com uma lâmina de bisturi tamanho 10 cirúrgica. </li> &lt;li&gt; Temporariamente ligar a artéria carótida comum esquerda (CCA) com sutura 6,0 seda. </li><li> Coloque outro empate na artéria carótida externa esquerda (ECA). </li><li> Coloque um clipe microvascular na artéria carótida interna (ACI). </li><li> Corte um pequeno buraco na artéria carótida externa com uma tesoura microvasculares. Insira um filamento feita a partir de 7-0 sutura nylon revestido com resina odontológica na abertura da ECA, e fazê-la avançar cefalicamente, ao remover o clipe, até sentir resistência (cerca de 5-7 mm de distância do ponto de bifurcação da CCA). </li><li> Coloque um laço temporária para a artéria carótida interna para proteger o filamento em posição. Consulte o diagrama, a figura 1A. Fechar a pele com uma sutura de seda, e infiltrar-se na ferida na parte da frente do pescoço com 0,2 ml de 0,5% de bupivacaina, como no passo 2.6. </li><li> Permitir que o mouse para despertar da anestesia e recuperar a consciência em uma câmara de recuperação para 60 min. Não deixe o animal sem supervisão até que tenha recuperadoconsciência suficiente para manter decúbito esternal. </li><li> Teste o mouse para déficit neurológico pontuação (NDS) como segue: 0 = Função normal de motor, 1 = flexão do tronco e dos membros anteriores contralateral no elevador cauda, ​​2 = circulando para o lado contralateral, mas a postura normal em repouso, 3 = inclinar-se para contralateral lado em repouso, 4 = nenhuma atividade motora espontânea. 4,9 <ol><li> Para o teste NDS, levante rato pela cauda e coloque sobre uma superfície plana para observação (2-3 min). Alternativamente, os ratinhos observar na câmara de recuperação. Excluir ratos que exibem NDS menor do que 2 a partir da experiência, devido à oclusão da MCA insuficiente. Nota: técnica de fluxometria de Doppler a laser pode ser utilizado para confirmar a oclusão MCA 9-11. </li></ol></li><li> Re-anestesiar o animal depois de 60 minutos de recuperação na câmara de indução como descrito acima, a re-esterilizar a incisão na pele com a anterior solução de iodo-povidona esfoliação de 10%, e reabrir a ferida cirúrgica nafrente do pescoço, cortando e removendo o fio de seda. </li><li> Para remover o filamento a partir do TCE executar os seguintes passos: <ol><li> Coloque um clipe microvascular no ICA. Desatar a sutura na ICA e puxe o fio para fora, mantendo clipe aberto. </li><li> Feche o clipe e coloque um laço para a ECA proximal ao corte. </li><li> Remover o grampo e remover a ligadura do CCA para restaurar o fluxo sanguíneo para o cérebro. Consulte o diagrama, figura 1B. </li></ol></li></ol> 2. Instalação de IV cateter na veia jugular para Contínuo Tratamento 48 hr Nota: Proceder à instalação do cateter imediatamente após o passo 1.16.3 sem despertar do mouse. <ol><li> Usar dois tamanhos diferentes de tubo flexível: inserir o tubo interior (0,94 mm de diâmetro externo, para conter a droga a ser infundido) para dentro do tubo exterior (3,18 mm de diâmetro externo; para a protecção do tubo interior). </li><li> Pate o rato na posição de pronação, aplicar a solução de iodo-povidona esfoliação de 10% para a desinfecção, e fazer uma incisão de 1 cm na parte de trás do pescoço com uma lâmina de bisturi cirúrgico tamanho 10. Ligue o rato na posição supina, re-esterilizar a frente do pescoço com uma solução de iodo-povidona esfoliação de 10%, e reabrir a ferida cirúrgica na parte da frente do pescoço. Túnel o tubo sob a pele da incisão feita na parte de trás para a frente do pescoço, e exterioriza-lo a partir da ferida aberta 1 cm. </li><li> Remover o tecido adiposo subcutâneo a partir do lado esquerdo da parte frontal do pescoço cerca de 1 cm lateralmente a partir da linha média. Localizar a veia jugular esquerda, colocar dois laços ao longo da veia 5 mm entre si, e ligeiramente alongar a veia. Faça um pequeno furo na veia jugular entre os dois laços com tesouras microvasculares; insira a ponta do interior mm caudal profunda tubo 5 (para o coração). </li><li> Fixe o tubo com ambas as ligações com a veia jugular. Fechar a pele na parte da frente do pescoço comuma sutura de seda 3-0. Consulte o diagrama, Figura 1C. </li><li> Fixar o tubo à pele na parte posterior do pescoço com uma sutura, e ligar a tubagem a uma bomba microinfusion IV através de um suporte giratório. O giro permite a livre circulação de ratos dentro da gaiola com total acesso ao alimento e água. </li><li> Infiltrar nas incisões na pele na parte da frente ea parte de trás do pescoço com 0,2 ml de bupivacaína a 0,5% para evitar a dor pós-operatória. Nota: Dependendo de protocolos específicos de origem animal institucionais, os animais podem ser tratados com opióides, antiinflamatórios ou antibióticos pré e pós-operatório. No entanto, os tratamentos mencionados podem alterar os resultados do acidente vascular cerebral isquêmico resultado (ver secção Discussão). 11-14 </li><li> Permitir que o animal para despertar na câmara de recuperação, e em seguida, abrigar o animal numa gaiola separada até que o ponto final da experiência. Não deixe o animal sem supervisão até que tenha recuperado a consciência suficiente para manter esternaldecúbito. </li><li> Ajuste a velocidade de infusão para o tratamento contínuo de 48 horas de conivaptan IV (0,14 mg / ml em 5% de dextrose) ou veículo a 1,5 ml / kg / h, 4 e iniciar a infusão. Nota: A quantidade total de IV conivaptan infundido deve ser aproximadamente 0,2 mg / rato / dia, num volume total de 1,44 ml. Nota: Executar injecção intraperitoneal (IP) de conivaptan duas vezes por dia com uma quantidade total de 0,2 mg em 1,44 ml de dextrose a 5%. Implementar injecção IP foi como anteriormente descrito. 15 Restrain ratinhos agarrando a pele da superfície posterior do corpo e a cauda. Injectar conivaptan ou veículo para o quadrante inferior esquerdo do abdômen utilizando a / 1 agulha polegadas 26 G / 2. 15 </li><li> Observar os animais duas vezes por dia para toda a duração da experiência (48 horas). Que os animais possam ter pleno acesso a comida e água. Se o animal apresenta sinais de sofrimento ou dispneia consultar um veterinário. Se a eutanásia é necessária para o animal em dist graveRess referem-se ao passo 3.1 abaixo, e excluir o animal do estudo. </li></ol> 3. Avaliação da evocadas por acidente vascular cerebral Edema no ponto final <ol><li> Sacrificar o mouse por excesso de anestesiar com 5% de isoflurano. </li><li> Use um bisturi para fazer uma incisão na pele sobre o osso do crânio ao longo da linha média, e retrair a pele para expor todo o crânio sobre o cérebro. Começando no forame magno, cortar o osso do crânio lateralmente ao longo do perímetro do cérebro de cada lado, e levante-o com cuidado, sem tocar o cérebro por baixo. Cortar o cérebro a partir da espinha e os nervos ligados à base do crânio. </li><li> Remover o cérebro, separá-lo do bolbo olfactivo e no cerebelo, e dissecar o cérebro ao longo da fissura inter nos hemisférios cerebrais isquémicos e não isquémicos, como anteriormente descrito. 9 </li><li> Avaliar edema cerebral, comparando wet-a-seco proporções (WDR), como descrito anteriormente 4,9. pesar tecidosantes e depois de secar durante 3 dias a 100 ° C num forno. Calcular o teor em água no cérebro (BWC) como% de H 2 O = (peso 1-seca. / Peso molhado.) X 100%. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada para revelar.

Este estudo tem um valor importante para a investigação pré-clínica acidente vascular cerebral. Este estudo revela que a infusão IV contínua de conivaptan (0,2 mg / dia) depois de acidente vascular cerebral experimental em ratinhos reduz eficazmente o edema cerebral após 48 horas de tratamento. O efeito da injecção IP do mesmo na dose de conivaptan edema cerebral também foi investigada. tratamento conivaptan por ambas as vias IP e IV produz aquarese em ratos, tal como indicado por: 1) aumento da osmolalidade do plasma u...

O AVC continua a ser um fardo enorme para pacientes e médicos. Modelos de AVC animal têm sido usados em laboratório há quase duas décadas. 1 No entanto, os tratamentos experimentais que funcionam em animais geralmente falham em humanos. 2 Essa discrepância nos resultados do tratamento pode ser devido a vários fatores, como vias de administração de medicamentos usados em pesquisas com animais, metabolismo e taxa de eliminação de medicamentos e muitos outros aspectos. Uma das principais complicações do acidente vascular cerebral, o edema cerebral, é um foco de pesquisa atual em neurociência. Os mecanismos de formação de edema cerebral envolvem distúrbios no equilíbrio hídrico e eletrolítico desencadeados pela resposta arginina-vasopressina (AVP) à lesão cerebral isquêmica. 3 Portanto, o AVP e seus receptores (V1a e V2) são o foco principal dos estudos de pesquisa sobre a formação de edema cerebral pós-isquêmico. 3
Desenvolvemos uma metodologia para estudar os efeitos do bloqueador do receptor misto arginina-vasopressina (V1a e V2) conivaptan no edema cerebral pós-isquêmico em camundongos. 4 Alvos moleculares do conivaptan5 tornam a droga um candidato adequado para a exploração de suas propriedades no alívio do edema cerebral. Além disso, o conivaptan precisa ser estudado no contexto de eventos fisiopatológicos do AVC. 6 Ao projetar este estudo, consideramos comparar os resultados do tratamento usando duas vias diferentes de administração de conivaptano: intravenosa (IV)4 e intraperitoneal (IP). 7 Foram avaliados os efeitos dos tratamentos no edema cerebral induzido por AVC. Aqui são descritos protocolos detalhados para indução cirúrgica de AVC experimental por oclusão da artéria cerebral média (MCAO) e seguidos de tratamento contínuo com conivaptan usando a instalação de um cateter intravenoso jugular. Após a indução do acidente vascular cerebral, os animais foram alocados aleatoriamente nos seguintes grupos: veículo ou conivaptan (0,2 mg/dia) tratados IV ou IP.

<table><tbody><tr><td>Almofada aquecida</td><td>K& H Manufacturing Inc</td><td>1060</td><td></td></tr><tr><td>Monitor de Temperatura com Sonda Retal</td><td>Physitemp</td><td>7029</td><td></td></tr><tr><td>Carretel de Sutura de Seda, 6-0</td><td>Surgical Specialties Corporation</td><td>SP114</td><td></td></tr><tr><td>Sutura de Seda em uma Agulha, 3-0</td><td>Sutura de Nylon Ethicon</td><td>1684G</td><td></td></tr><tr><td>, 7-0</td><td>Resina Dental Ethicon</td><td>1696G</td><td></td></tr><tr><td>Polissiloxano com Endurecedor</td><td>Heraeus Bomba IV de</td> Microinfusão <td>Kulzer 65817930</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Kent Scietific</td><td>GT0897</td><td></td></tr><tr><td>Giratória 22GA</td><td>Instech</td><td>375/22PS</td><td></td></tr><tr><td>Tubulação de Laboratório, 0,94 mm x 0,51 mm</td> Tubulação de Laboratório <td>Dow Corning</td><td>508-002</td><td></td></tr><tr><td>, 3,18 mm x 1,98 mm</td><td>Dow Corning</td><td>508-009</td><td></td></tr></tbody></table>

iv infusão contínua é a rota escolha no tratamento da arginina-vasopressina receptor blocker conivaptan em camundongos para estudar evocadas por acidente vascular cerebral edema

Continuous IV Infusion is the Choice Treatment Route for Arginine-vasopressin Receptor Blocker Conivaptan in Mice to Study Stroke-evoked Brain Edema

AVC é uma das principais causas de morbidade e mortalidade no mundo. AVC é complicada por edema cerebral e outros eventos fisiopatológicos. Entre os jogadores mais importantes no desenvolvimento e evolução do edema cerebral evocada-acidente vascular cerebral é a hormona arginina-vasopressina e seus receptores, V1a e V2. Recentemente, o V1a e V2 bloqueador do receptor conivaptan tem atraído a atenção como um potencial medicamento para reduzir o edema cerebral após acidente vascular cerebral. No entanto, os modelos animais que envolvem aplicações conivaptan em pesquisa AVC precisa ser modificada com base em rotas viáveis ​​de administração. Aqui os resultados de 48 h intravenosa contínua (IV) são comparados com os tratamentos por via intraperitoneal (IP) conivaptan após acidente vascular cerebral experimental em ratinhos. Foi desenvolvido um protocolo em que a oclusão da artéria cerebral média foi combinado com a passagem do cateter na veia jugular para o tratamento de IV conivaptan (0,2 mg) ou veículo. Diferentes grupos de animais foram tratados com 0,2mg bolus de conivaptan ou veículo IP diariamente. edema cerebral evocada tempos experimental foi avaliada em ratinhos após IV contínua e tratamentos IP. A comparação dos resultados revelou que a administração IV contínua de conivaptan alivia edema cerebral pós-isquêmica em ratos, ao contrário da administração IP de conivaptan. Conclui-se que o nosso modelo pode ser utilizado para estudos futuros de aplicações conivaptan no contexto de acidente vascular cerebral e edema cerebral.

A temperatura corporal dos animais foi dentro do intervalo fisiológico e estável ao longo do procedimento cirúrgico de indução de acidente vascular cerebral. Dois ratos que exibiram NDS menor do que 2, imediatamente após a MCAO foram excluídos do estudo. MCAO em ratos produz o volume de enfarte no hemisfério ipsilateral às 48 h. Avaliação das fatias manchadas de TTC mostra que cerca de 50% do hemisfério é afectada por enfarte ...

Nossos estudos revelaram que os efeitos benéficos do conivaptan dependem do método de entrega após o AVC experimental em camundongos. Desenvolvemos um protocolo de pesquisa para a entrega do bloqueador do receptor via cateter IV na formação de edema cerebral evocado por AVC em camundongos.

IV infusão contínua é a Rota escolha no tratamento da arginina-vasopressina Receptor Blocker conivaptan em camundongos para Estudar evocadas por acidente vascular cerebral Edema

Stroke is one of the major causes of morbidity and mortality in the world. Stroke is complicated by brain edema and other pathophysiological events. Among ...

O objetivo geral deste estudo pré-clínico é criar um modelo bem-sucedido em camundongos de administração de Conivaptana após acidente vascular cerebral, para ajudar a aprimorar o desenho de futuros estudos de pesquisa na área de AVC. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na pesquisa sobre AVC, como, por exemplo, qual é a importância da via de administração para os efeitos benéficos da Conivaptana na recuperação de AVC em camundongos. A principal vantagem desta técnica é que ela auxiliará os pesquisadores nos estudos de modelagem da Conivaptana e seus efeitos no edema cerebral provocado por AVC.Pelo menos duas horas antes da cirurgia, corte um pedaço de filamento de 12 milímetros de uma sutura de náilon 7-0, depois misture duas partes de resina dental com uma parte de endurecedor e mergulhe rapidamente o filamento na mistura, até que aproximadamente quatro milímetros do filamento tenham sido revestidos. Verifique imediatamente se a ponta do filamento está coberta com uma camada lisa de resina dental. Em seguida, seque o filamento ao ar por duas horas.Quando a resina estiver pronta, posicione um camundongo anestesiado sobre uma placa aquecida na mesa cirúrgica e confirme a ausência de resposta ao aperto nos dedos dos pés. Remova os pelos da parte frontal e traseira do pescoço com uma tesoura elétrica, pulverize o pescoço com álcool isopropílico e aplique pomada em ambos os olhos. Para monitorar continuamente a temperatura corporal durante a cirurgia, utilize uma sonda de temperatura retal conectada a um display digital.Posicione o camundongo em posição supina sob um microscópio estereoscópico e, se necessário, coloque um pedaço de gaze enrolada sob o pescoço para arqueá-lo. Em seguida, desinfete o pescoço com uma solução de Povidona-Iodo a 10%. Cubra então o animal com um campo estéril e use uma lâmina cirúrgica nº 10 para fazer uma incisão mediana ao longo do pescoço.Usando um fio de seda 6-0, realizar uma ligadura temporária da artéria carótida comum esquerda e, em seguida, fazer um nó na artéria carótida externa esquerda. Colocar um clipe microvascular na artéria carótida interna e usar tesoura microvascular para fazer um pequeno orifício na artéria carótida externa. Após inserir o filamento revestido com resina dental na abertura, avançar o filamento em direção cefálica enquanto remove-se o clipe, até sentir resistência.Coloque um laço temporário na artéria carótida interna para fixar o filamento na posição e feche a pele com sutura de seda. Em seguida, infiltre a ferida na região anterior do pescoço com 0,2 milímetros de Bupivacaína 0,5% e transfira o camundongo para uma câmara de recuperação com monitoramento até que a posição esternal seja mantida. Para a Pontuação de Déficit Neurológico, levante o camundongo pela cauda e coloque o animal sobre uma superfície plana por dois a três minutos.Pontue o comportamento do animal de acordo com o descrito no texto, excluindo camundongos que apresentem uma Pontuação de Déficit Neurológico inferior a dois, devido à oclusão insuficiente da artéria cerebral média. Para remover o filamento, reesterilize a incisão com uma solução de Povidona-Iodo a 10%, corte e remova o ponto para reabrir a ferida cirúrgica. Em seguida, sob um microscópio estereoscópico, posicione um clipe microvascular na artéria carótida interna e desamarre o ponto da artéria carótida interna.Mantenha o clipe aberto para deslizar o filamento para fora. Em seguida, feche imediatamente o clipe novamente e sutura a artéria carótida externa próxima ao corte. Quando a ligadura da artéria carótida externa estiver segura, remova o clipe e desamarre a sutura ao redor da artéria carótida comum para restabelecer o fluxo sanguíneo para o cérebro.Imediatamente após remover o ponto da artéria carótida comum, desinfete a parte de trás do pescoço com uma solução de limpeza de iodo de povidona a 10% e use uma lâmina cirúrgica número 10 para fazer uma incisão de um centímetro. Em seguida, reesterilize a parte frontal do pescoço e reabra a ferida cirúrgica. Agora, passe um pedaço de tubo com diâmetro externo de 0,94 milímetro, inserido dentro de um tubo com diâmetro externo de 3,18 milímetros, sob a pele do animal, desde a parte de trás até a frente do pescoço, e exteriorize o tubo quando ele atingir a incisão frontal.Remova o tecido adiposo subcutâneo do lado esquerdo da parte frontal do pescoço, cerca de um centímetro lateralmente da linha média. Em seguida, localize a veia jugular esquerda sob o microscópio de dissecação e coloque dois laços ao longo da veia com 5 milímetros de distância entre si, esticando levemente o vaso. A seguir, use uma tesoura microvascular para fazer um pequeno orifício na veia jugular entre os dois laços e insira a ponta do tubo interno 5 milímetros em direção caudal ao coração.Fixe o tubo com os dois laços à veia jugular e use uma sutura de seda 3-0 para fechar a pele na parte frontal do pescoço. Em seguida, fixe o tubo à pele na parte posterior do pescoço com uma sutura e conecte o tubo a uma bomba de infusão microinfusão intravenosa por meio de um conector giratório. Infiltra as incisões cutâneas na parte frontal e posterior do pescoço com 0,2 milímetros de Bupivacaína 0,5% para prevenir dor pós-operatória e permita que o animal desperte na câmara de recuperação com monitoramento.Quando o animal estiver em decúbito, ajuste a taxa de infusão para um tratamento intravenoso contínuo de 48 horas de conivaptana ou veículo, a 1,5 milimoles por quilograma por hora, e inicie a infusão. Alternativamente, administre 0,2 miligramas de conivaptana e 1,44 mililitros de dextrose a 5% duas vezes por via intraperitoneal, diariamente por dois dias, seguido por uma breve observação dos animais após cada injeção. A oclusão da artéria cerebral média em camundongos produz um volume de infarto no hemisfério ipsilateral após 48 horas, afetando aproximadamente 50% do hemisfério, conforme visualizado pela coloração com cloreto de tetrazólio.A avaliação do conteúdo de água no cérebro 48 horas após a indução de oclusão da artéria cerebral média por 60 minutos revela que a administração intravenosa de Conivaptana reduz significativamente o edema cerebral, tanto nos hemisférios ipsilateral quanto contralateral. Em contraste, o tratamento diário com Conivaptana por via intraperitoneal com um bolo de 0,2 milímetros não consegue produzir efeitos positivos semelhantes no edema cerebral provocado pelo acidente vascular. Uma vez dominada, esta técnica pode ser concluída em duas horas, se realizada corretamente.Ao realizar este procedimento, é importante lembrar de evitar perda excessiva de sangue no animal experimental, pois isso pode afetar o resultado do seu estudo e levar a uma mortalidade aumentada. Após este procedimento, outros estudos, como a avaliação da ruptura da barreira hematoencefálica, podem ser realizados para responder a questões adicionais sobre o envolvimento da inflamação no edema cerebral pós-isquêmico. Após o desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área de neurociência explorarem a importância da via de administração de fármacos para estudos clínicos.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como criar cirurgicamente condições isquêmicas em camundongos e inserir um cateter intravenoso na veia jugular, administrando Conivaptana por infusão intravenosa contínua em camundongos. Não se esqueça de que trabalhar com animais vivos pode ser extremamente perigoso e que precauções, como o uso de luvas cirúrgicas e máscaras, devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este artigo demonstra dois métodos muito diferentes de injecção: 1) para o cérebro (intracerebroventricular) e 2) sistêmica (intravenosa) para introduzir a agentes terapêuticos para o sistema nervoso central de camundongos recém-nascidos.

Entrega de agentes terapêuticos Através intracerebroventricular (ICV) e injecção intravenosa (IV) em ratos

Neste vídeo, demonstramos a montagem de um sistema de infusão cerebral com bomba micro-osmótica seguida de sua implantação cirúrgica no crânio do camundongo. Este sistema permite a entrega contínua de medicamentos potenciais e facilita o estudo de seus efeitos no cérebro e no tecido cerebral.

Sistema de Infusão Contínua de Medicamentos em Modelo de Camundongo: Um Procedimento Cirúrgico para Implantar Sistema de Infusão de Bomba Micro-osmótica no Cérebro de Camundongo para Administração Contínua de Medicamentos

Fonte: Zeynalov, E. et. al., A infusão IV contínua é a via de tratamento de escolha para o bloqueador do receptor de arginina-vasopressina Conivaptan em camundongos para estudar o edema cerebral evocado por AVC. J. Vis. Exp. (2016)Este vídeo demonstra a administração intravenosa de um antagonista do receptor de arginina-vasopressina (AVP) em um modelo de camundongo. A oclusão transitória da artéria cerebral média induz edema cerebral. Um antagonista do receptor AVP é administrado através de um...

Entrega intravenosa de bloqueadores de receptores para reduzir o edema cerebral em um modelo de camundongo

Descreve-se um método para alvejar fármacos para o sistema nervoso central por qualquer implante de um cateter ou realizar uma injecção de bolus no ventrículo lateral direito de ratos. Nós nos concentramos especificamente na entrega de oligonucleotídeos antisense. Esta técnica é facilmente adaptável a outros fármacos e a ratos.

Entrega intraventricular direta de medicamentos para o Sistema Nervoso Central Rodent

Acessos vasculares para medir a hemodinâmica, fornecer fluidos e realizar amostras de sangue são importantes para qualquer estudo de modelo de pequenos animais. Apresentamos uma técnica de implante de cateteres na artéria carótida e na veia jugular comum em um rato anestesiado para conexão a um sistema para realização de monitoramento, infusões e amostragem.

Cateterismo da artéria carótida e jugular para executar as medidas hemodinâmicas, infusões e Sangue de amostragem em um Rat Consciente Modelo

A entrega reforçada por convecção (CED) é um método que permite a efetiva entrega da terapêutica no cérebro por perfusão direta de grandes volumes de tecido. O procedimento requer o uso de cateteres e um procedimento de injeção otimizado. Este protocolo descreve uma metodologia para CED de um anticorpo em um cérebro do rato.

Entrega de anticorpos para o cérebro murino via convecção-fornecimento aprimorado

Um método para fornecer células-tronco neurais, adaptáveis para soluções ou suspensões injetáveis, através da artéria carótida comum (mouse) ou artéria carótida externa (rato) após o derrame isquêmico ser relatado. As células injetadas são distribuídas amplamente por todo o parenchyma cerebral e podem ser detectadas até 30 d após o parto.

Entrega intra-arterial de células-tronco neurais ao cérebro de ratos e ratos: aplicação à isquemia cerebral

O monitoramento da pressão intracraniana em modelos de roedores de hemorragia intraventricular não traumática não é comum na literatura atual. Neste trabalho, demonstramos uma técnica para medir a pressão intracraniana, a pressão arterial média e a pressão de perfusão cerebral durante hemorragia intraventricular em um modelo animal de rato.

Monitorização da Pressão Intracraniana em Modelo de Roedor de Hemorragia Intraventricular Não Traumática

Este protocolo fornece um procedimento passo-a-passo para a execução da administração de múltiplas doses intravenosas em bolus e monitorização hemodinâmica invasiva em camundongos. Os investigadores podem usar esse protocolo para futura triagem terapêutica de compostos para hipertensão arterial pulmonar.

Dosagem Múltipla em Bolus Intravenoso e Avaliação Hemodinâmica Invasiva em Modelo de Hipertensão Arterial Pulmonar em Camundongos Induzida por Hipóxia

Este protocolo descreve a implantação consecutiva de uma bomba osmótica para induzir aneurisma aórtico abdominal por angiotensina II liberação em camundongos deficientes apolipoprotein E (ApoE) e de uma porta de acesso vascular com cateter venoso jugular para tratamento medicamentoso repetido. O monitoramento do desenvolvimento de aneurisma por ultrassom 3D é efetivamente realizado apesar dos implantes dorsais.

Tratamento medicamentoso por Cateter Venoso Central em um Modelo de Camundongo de Angiotensin II Aneurisma Abdominal Induzido anótico e monitoramento por ultrassom 3D

Aprenda a administrar conivaptan por infusão intravenosa contínua em camundongos após acidente vascular cerebral. Este método demonstra redução significativa do edema cerebral evocado pelo AVC comparado à via intraperitoneal.

IV infusão contínua é a Rota escolha no tratamento da arginina-vasopressina Receptor Blocker conivaptan em camundongos para Estudar evocadas por acidente vascular cerebral Edema (Vídeo) | JoVE Journal

IV infusão contínua é a Rota escolha no tratamento da arginina-vasopressina Receptor Blocker conivaptan em camundongos para Estudar evocadas por acidente vascular cerebral Edema

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