29 de dezembro de 2016
Aqui descrevemos um procedimento para capturar imagens ao vivo da gastrulação de Drosophila. Isso nos permitiu entender melhor a constrição apical envolvida no desenvolvimento inicial e analisar melhor os mecanismos que governam os movimentos celulares durante a modificação da estrutura do tecido.
O objetivo geral deste procedimento é entender melhor a forma e o movimento celular durante a gastrulação de Drosophila. Aqui fornecemos um método de medição robusto da gastrulação de Drosophila, para testar o início do movimento celular morfogenético, durante este estágio de desenvolvimento embrionário. A principal vantagem desta técnica é que, o rearranjo celular no momento da gastrulação, pode ser identificado juntamente com a constrição apical, durante a gastrulação.
Para iniciar o experimento, prepare uma mistura de 375 mililitros de água. 125 mililitros de suco de maçã 100% disponível comercialmente. 12,5 gramas de ágar.
12,5 gramas de glicose. Em seguida, aqueça a mistura no micro-ondas, até que o ágar derreta. E despeje em um prato de cultura de células de três centímetros.
Armazene a mistura a 4 graus Celsius, para uso futuro. Depois de preparar o prato de maçã, adicione uma fina camada de pasta de fermento amassada por cima, para permitir que as moscas ponham ovos. Coloque 25 moscas machos e 25 fêmeas em uma garrafa em um prato de maçã coberto com fermento amassado.
Embrulhe as garrafas plásticas de estoque de Drosophilas com papel alumínio para estimular as moscas a botar mais ovos. Mantenha a garrafa de cabeça para baixo em uma incubadora durante a noite. Na manhã seguinte, substitua o prato de suco de maçã por um novo.
Em seguida, embrulhe a garrafa com papel alumínio e deixe as moscas botarem ovos por três a quatro horas. Depois que as moscas botarem ovos, solte-os do prato com um cotonete. Colete os embriões em uma peneira e lave-os com solução salina tamponada com fosfato, ou PBS.
Lave os embriões mais três vezes com PBS, em placas de cultura de 12 poços. Descorionate os embriões com 50% de alvejante, em placas de cultura de 12 poços. Após o processo de descorionação, lave os embriões mais três vezes com PBS.
Transfira os embriões para uma placa de cultura de células de três centímetros contendo PBS. E selecione embriões em estágio cinco ao microscópio, com base no nível de transparência em suas bordas. Usando uma ponta de pipeta de 200 microlitros, colete os embriões estadiados.
Em seguida, coloque dois embriões selecionados em uma lamínula de vidro e remova o excesso de PBS com papel de seda. Com um papel de seda finamente torcido, oriente o lado dorsal dos embriões até a lamínula. Em seguida, prenda os embriões à lamínula de vidro com graxa de silicone usando uma agulha fina.
Adicione uma pequena gota de óleo de carbono oco 700 nos embriões e coloque a lamínula contendo os embriões de cabeça para baixo na lâmina recuada. Deixando algum espaço na parte inferior do slide. Em seguida, cole a lamínula na corrediça.
Finalmente, examine os embriões usando um sistema de imagem confocal, um laser de argônio 488 e uma objetiva de imersão em óleo. Imagens de lapso de tempo foram capturadas de imagens ao vivo, usando DE-caderina GFP do movimento celular ao longo de 500 segundos, para analisar as áreas apicais de células individuais, de Drosophila durante a gastrulação. Aos 500 segundos, a constrição apical e a invaginação são claramente visíveis.
Usando nosso método. Podemos entender ainda os mecanismos moleculares da gastrulação de Drosophila, bem como a transição epitelial para mesenquimal, envolvida na metástase do câncer.
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Este artigo apresenta um procedimento para capturar imagens vivas da gastrulação de Drosophila, aprimorando nossa compreensão da constrição apical durante o desenvolvimento inicial. A técnica permite uma análise detalhada dos movimentos celulares envolvidos na modificação da estrutura do tecido.
A imagem em tempo real da alteração da forma celular e do movimento durante a gastrulação de Drosophila fornece uma plataforma robusta para dissecar os mecanismos moleculares subjacentes à transição epitélio-mesenquimal (EMT), um processo implicado na fibrose e na metástase do câncer. Este método permite a visualização em alta resolução da constrição apical e da rearranjo celular, apoiando a confiança preditiva na validação precoce de alvos em vias relacionadas à EMT. A abordagem fortalece a continuidade translacional da biologia do desenvolvimento para estudos mecanicistas relevantes à doença na pesquisa e desenvolvimento biofarmacêutico.
Este método de imagem se integra ao continuum de descoberta, desde a fase inicial de testes de hipóteses até o desenvolvimento de modelos pré-clínicos para alvos relacionados à EMT.