A metilação do DNA é uma modificação química do DNA que afeta a expressão genética em diferentes contextos celulares. Muitos pesquisadores estão interessados no mecanismo e funções desse processo, já que a metilação do DNA aberrante tem sido associada a doenças como o câncer.
Neste vídeo, abordaremos os princípios por trás da metilação do DNA e métodos para detectá-lo. Em seguida, vamos explorar um protocolo geral para um desses métodos, análise de bisulfeto, e algumas aplicações desta técnica.
Primeiro, vamos dar uma olhada no que é a metilação de DNA e como ela pode ser detectada.
Durante este processo bioquímico, uma célula adiciona uma etiqueta química conhecida como grupo de metila às bases de citosina em seu DNA. A maioria das citosinas metiladas ocorrem ao lado de bases de guanina na mesma cadeia de DNA, e esses nucleotídeos adjacentes — e a ligação de fosfodiester que as liga — são chamados de "CpGs". Embora a maioria dos CpGs vertebrados sejam metilados, aqueles que não são metilados tendem a ocorrer juntos em "ilhas" cpG perto dos promotores de genes ativamente expressos, e vários outros elementos de sequência regulatória.
Como as mudanças na metilação do DNA contribuem para a regulação genética ainda é objeto de intensa investigação. A metilação das ilhas CpG parece ser importante para o silenciamento genético estável e de longo prazo visto em processos epigenéticos como a impressão genômica, que é a expressão específica pai de origem de certos genes, bem como a inativação do cromossomo X, o silenciamento de um dos dois cromossomos X em cada célula de mamíferos fêmeas. A repressão de genes críticos devido à metilação aberrante das ilhas CpG também tem sido demonstrada para contribuir para o crescimento celular descontrolado, que pode levar ao câncer. Mecanicamente, a metilação do DNA pode contribuir para o silenciamento genético, impedindo que fatores de transcrição se assemelham aos promotores, ou recrutando proteínas que modificam histones e remodelam a cromatina em um estado transcricionralmente não permissivo.
Existem vários métodos para detectar o estado de metilação do DNA.
Uma técnica, o ensaio HELP, envolve duas endonucleases de restrição chamadas HpaII e MspI, que respectivamente apenas se formam, ou ambas metiladas e não metiladas, sequências CCGG. Comparando os padrões de digestão produzidos por essas duas enzimas, o estado de metilação do DNA pode ser deduzido.
Outro método, chamado imunoprecipitação de DNA metilado ou "MeDIP", usa anticorpos que se ligam a citosinas metiladas para enriquecer para sequências de DNA metilado.
Finalmente, a análise de bisulfita é usada para distinguir a citosina não metilada no DNA, realizando uma reação química que converte citosina não metilada em uracil. Após esta conversão, o DNA tratado por bisulfato pode ser submetido a PCR, sequenciado e comparado a um genoma de referência. Citosinas não metiladas são aquelas que estão presentes na referência, mas substituídas por timinas após análise de bisulfito e PCR. Submetendo o DNA tratado de bissulfeto à espectrometria de massa, os pesquisadores também podem criar "epigramas de metilação", que representam linearmente diferentes CpGs no genoma e retratam o grau de metilação em cada um deles. Tais epigramas são particularmente úteis se os pesquisadores desejam comparar padrões de metilação entre diferentes tipos de células.
Vamos agora dar uma olhada aprofundada no protocolo de análise de bisulfato.
Para começar, hidróxido de sódio é adicionado às preparações de DNA genômico, que são então incubados a 95°C. Isso desnatura o DNA e torna suas bases acessíveis a reações químicas subsequentes. Metabissulfeto de sódio é então introduzido na mistura de DNA desnaturado, e duas etapas de reação química ocorrerão. Durante a primeira etapa, sulfonação, um grupo de sulfite é adicionado a uma citosina não metilada para formar sulfonato de citosina. Em seguida, durante a deaminação hidrolicada, um grupo de amino é removido do sulfonato de citosina para gerar sulfonato uracil.
Para facilitar esses primeiros estágios da reação química, a preparação do DNA é sobreposta com óleo mineral, o que previne a evaporação e ajuda a manter a concentração de metabisullfita de sódio. A reação é então incubada a 55°C no escuro. Durante esta etapa, um agente para evitar a oxidação, como quinol, também é adicionado à mistura.
Para coletar DNA modificado contendo sulfonato uracil, e sem óleo mineral, a mistura é centrifuada e a camada líquida mais baixa recuperada. O DNA desta solução é então purificado.
Em seguida, hidróxido de sódio é adicionado à mistura de DNA, que é então incubada a 37°C. Isso é feito para induzir a desulfonação, que , como você deve ter adivinhado, remove o grupo sulfite do sulfonato uracil, formando uracil e completando a reação química.
Finalmente, a mistura é neutralizada com a adição de acetato de amônio, e o DNA é coletado pela precipitação do etanol. Uma vez que o DNA convertido por bisulfita tenha sido purificado, ele é submetido a PCR e sequenciamento.
Agora que discutimos a técnica básica para análise de bisulfato, vamos olhar para algumas aplicações experimentais.
Alguns pesquisadores usam a análise de bisulfato para investigar a impressão genômica. Aqui, os pesquisadores cruzaram duas cepas de Arabidopsis com diferenças genéticas, para que o DNA materno e paterno pudesse ser distinguido. Os padrões de metilação nos embriões resultantes e no endosperm associado, ou no tecido que sustenta o embrião, foram então comparados. Usando este método, os cientistas descobriram que os CpGs no alelo materno de um gene codificador de proteínas, MEA,tendiam a ser metilados em embriões, mas não metilados em endosperma, indicando impressão específica do tecido.
Outros pesquisadores estão usando essa técnica para entender como fatores ambientais ou sociais podem alterar padrões de metilação. Aqui, filhotes de rato foram separados de suas mães para induzir o estresse, e seus tecidos cerebrais foram posteriormente isolados. Após o sequenciamento do DNA tratado com bisulfita, os cientistas determinaram que os padrões de metilação em um gene codificador de hormônios, AVP,mudaram em uma região cerebral específica em filhotes "separados", sugerindo um possível mecanismo molecular para efeitos biológicos de longo prazo da experiência de vida precoce.
Finalmente, muitos pesquisadores estão tentando otimizar a análise de bisulfato para facilitar a comparação de padrões de metilação entre células individuais e únicas. Aqui, os pesquisadores modificaram o método de análise de bisullfita para que todas as etapas fossem realizadas em oócitos individuais de camundongos embutidos em agarose, o que ajudou a se proteger contra a perda de DNA. Usando esse método, os pesquisadores foram capazes de identificar facilmente amostras de oócito único que haviam sido contaminadas com outras células, procurando por aquelas que deram múltiplos padrões de metilação.
Você acabou de assistir ao vídeo do JoVE sobre análises sensíveis à metilação. Aqui, discutimos o papel que a metilação de DNA desempenha na regulação genética, métodos que os pesquisadores usam para identificar regiões metiladas no genoma, um protocolo generalizado para análise de bisulfato, e, finalmente, algumas aplicações dessa técnica. Como sempre, obrigado por assistir!
A metilação em dinucleotídeos cpG é uma modificação química do DNA hipótese para desempenhar papéis importantes na regulação da expressão genética. Em…
A metilação do DNA é uma modificação química do DNA que afeta a expressão genética em diferentes contextos celulares. Muitos pesquisadores estão interessados no mecanismo e funções desse processo, já que a metilação do DNA aberrante tem sido associada a doenças como o câncer.
Neste vídeo, abordaremos os princípios por trás da metilação do DNA e métodos para detectá-lo. Em seguida, vamos explorar um protocolo geral para um desses métodos, análise de bisulfeto, e algumas aplicações desta técnica.
Primeiro, vamos dar uma olhada no que é a metilação de DNA e como ela pode ser detectada.
Durante este processo bioquímico, uma célula adiciona uma etiqueta química conhecida como grupo de metila às bases de citosina em seu DNA. A maioria das citosinas metiladas ocorrem ao lado de bases de guanina na mesma cadeia de DNA, e esses nucleotídeos adjacentes — e a ligação de fosfodiester que as liga — são chamados de "CpGs". Embora a maioria dos CpGs vertebrados sejam metilados, aqueles que não são metilados tendem a ocorrer juntos em "ilhas" cpG perto dos promotores de genes ativamente expressos, e vários outros elementos de sequência regulatória.
Como as mudanças na metilação do DNA contribuem para a regulação genética ainda é objeto de intensa investigação. A metilação das ilhas CpG parece ser importante para o silenciamento genético estável e de longo prazo visto em processos epigenéticos como a impressão genômica, que é a expressão específica pai de origem de certos genes, bem como a inativação do cromossomo X, o silenciamento de um dos dois cromossomos X em cada célula de mamíferos fêmeas. A repressão de genes críticos devido à metilação aberrante das ilhas CpG também tem sido demonstrada para contribuir para o crescimento celular descontrolado, que pode levar ao câncer. Mecanicamente, a metilação do DNA pode contribuir para o silenciamento genético, impedindo que fatores de transcrição se assemelham aos promotores, ou recrutando proteínas que modificam histones e remodelam a cromatina em um estado transcricionralmente não permissivo.
Existem vários métodos para detectar o estado de metilação do DNA.
Uma técnica, o ensaio HELP, envolve duas endonucleases de restrição chamadas HpaII e MspI, que respectivamente apenas se formam, ou ambas metiladas e não metiladas, sequências CCGG. Comparando os padrões de digestão produzidos por essas duas enzimas, o estado de metilação do DNA pode ser deduzido.
Outro método, chamado imunoprecipitação de DNA metilado ou "MeDIP", usa anticorpos que se ligam a citosinas metiladas para enriquecer para sequências de DNA metilado.
Finalmente, a análise de bisulfita é usada para distinguir a citosina não metilada no DNA, realizando uma reação química que converte citosina não metilada em uracil. Após esta conversão, o DNA tratado por bisulfato pode ser submetido a PCR, sequenciado e comparado a um genoma de referência. Citosinas não metiladas são aquelas que estão presentes na referência, mas substituídas por timinas após análise de bisulfito e PCR. Submetendo o DNA tratado de bissulfeto à espectrometria de massa, os pesquisadores também podem criar "epigramas de metilação", que representam linearmente diferentes CpGs no genoma e retratam o grau de metilação em cada um deles. Tais epigramas são particularmente úteis se os pesquisadores desejam comparar padrões de metilação entre diferentes tipos de células.
Vamos agora dar uma olhada aprofundada no protocolo de análise de bisulfato.
Para começar, hidróxido de sódio é adicionado às preparações de DNA genômico, que são então incubados a 95°C. Isso desnatura o DNA e torna suas bases acessíveis a reações químicas subsequentes. Metabissulfeto de sódio é então introduzido na mistura de DNA desnaturado, e duas etapas de reação química ocorrerão. Durante a primeira etapa, sulfonação, um grupo de sulfite é adicionado a uma citosina não metilada para formar sulfonato de citosina. Em seguida, durante a deaminação hidrolicada, um grupo de amino é removido do sulfonato de citosina para gerar sulfonato uracil.
Para facilitar esses primeiros estágios da reação química, a preparação do DNA é sobreposta com óleo mineral, o que previne a evaporação e ajuda a manter a concentração de metabisullfita de sódio. A reação é então incubada a 55°C no escuro. Durante esta etapa, um agente para evitar a oxidação, como quinol, também é adicionado à mistura.
Para coletar DNA modificado contendo sulfonato uracil, e sem óleo mineral, a mistura é centrifuada e a camada líquida mais baixa recuperada. O DNA desta solução é então purificado.
Em seguida, hidróxido de sódio é adicionado à mistura de DNA, que é então incubada a 37°C. Isso é feito para induzir a desulfonação, que , como você deve ter adivinhado, remove o grupo sulfite do sulfonato uracil, formando uracil e completando a reação química.
Finalmente, a mistura é neutralizada com a adição de acetato de amônio, e o DNA é coletado pela precipitação do etanol. Uma vez que o DNA convertido por bisulfita tenha sido purificado, ele é submetido a PCR e sequenciamento.
Agora que discutimos a técnica básica para análise de bisulfato, vamos olhar para algumas aplicações experimentais.
Alguns pesquisadores usam a análise de bisulfato para investigar a impressão genômica. Aqui, os pesquisadores cruzaram duas cepas de Arabidopsis com diferenças genéticas, para que o DNA materno e paterno pudesse ser distinguido. Os padrões de metilação nos embriões resultantes e no endosperm associado, ou no tecido que sustenta o embrião, foram então comparados. Usando este método, os cientistas descobriram que os CpGs no alelo materno de um gene codificador de proteínas, MEA,tendiam a ser metilados em embriões, mas não metilados em endosperma, indicando impressão específica do tecido.
Outros pesquisadores estão usando essa técnica para entender como fatores ambientais ou sociais podem alterar padrões de metilação. Aqui, filhotes de rato foram separados de suas mães para induzir o estresse, e seus tecidos cerebrais foram posteriormente isolados. Após o sequenciamento do DNA tratado com bisulfita, os cientistas determinaram que os padrões de metilação em um gene codificador de hormônios, AVP,mudaram em uma região cerebral específica em filhotes "separados", sugerindo um possível mecanismo molecular para efeitos biológicos de longo prazo da experiência de vida precoce.
Finalmente, muitos pesquisadores estão tentando otimizar a análise de bisulfato para facilitar a comparação de padrões de metilação entre células individuais e únicas. Aqui, os pesquisadores modificaram o método de análise de bisullfita para que todas as etapas fossem realizadas em oócitos individuais de camundongos embutidos em agarose, o que ajudou a se proteger contra a perda de DNA. Usando esse método, os pesquisadores foram capazes de identificar facilmente amostras de oócito único que haviam sido contaminadas com outras células, procurando por aquelas que deram múltiplos padrões de metilação.
Você acabou de assistir ao vídeo do JoVE sobre análises sensíveis à metilação. Aqui, discutimos o papel que a metilação de DNA desempenha na regulação genética, métodos que os pesquisadores usam para identificar regiões metiladas no genoma, um protocolo generalizado para análise de bisulfato, e, finalmente, algumas aplicações dessa técnica. Como sempre, obrigado por assistir!
A metilação do DNA é uma modificação química do DNA que afeta a expressão genética em diferentes contextos celulares. Muitos pesquisadores estão interessados no mecanismo e funções desse processo, já que a metilação do DNA aberrante tem sido associada a doenças como o câncer.
Neste vídeo, abordaremos os princípios por trás da metilação do DNA e métodos para detectá-lo. Em seguida, vamos explorar um protocolo geral para um desses métodos, análise de bisulfeto, e algumas aplicações desta técnica.
Primeiro, vamos dar uma olhada no que é a metilação de DNA e como ela pode ser detectada.
Durante este processo bioquímico, uma célula adiciona uma etiqueta química conhecida como grupo de metila às bases de citosina em seu DNA. A maioria das citosinas metiladas ocorrem ao lado de bases de guanina na mesma cadeia de DNA, e esses nucleotídeos adjacentes — e a ligação de fosfodiester que as liga — são chamados de "CpGs". Embora a maioria dos CpGs vertebrados sejam metilados, aqueles que não são metilados tendem a ocorrer juntos em "ilhas" cpG perto dos promotores de genes ativamente expressos, e vários outros elementos de sequência regulatória.
Como as mudanças na metilação do DNA contribuem para a regulação genética ainda é objeto de intensa investigação. A metilação das ilhas CpG parece ser importante para o silenciamento genético estável e de longo prazo visto em processos epigenéticos como a impressão genômica, que é a expressão específica pai de origem de certos genes, bem como a inativação do cromossomo X, o silenciamento de um dos dois cromossomos X em cada célula de mamíferos fêmeas. A repressão de genes críticos devido à metilação aberrante das ilhas CpG também tem sido demonstrada para contribuir para o crescimento celular descontrolado, que pode levar ao câncer. Mecanicamente, a metilação do DNA pode contribuir para o silenciamento genético, impedindo que fatores de transcrição se assemelham aos promotores, ou recrutando proteínas que modificam histones e remodelam a cromatina em um estado transcricionralmente não permissivo.
Existem vários métodos para detectar o estado de metilação do DNA.
Uma técnica, o ensaio HELP, envolve duas endonucleases de restrição chamadas HpaII e MspI, que respectivamente apenas se formam, ou ambas metiladas e não metiladas, sequências CCGG. Comparando os padrões de digestão produzidos por essas duas enzimas, o estado de metilação do DNA pode ser deduzido.
Outro método, chamado imunoprecipitação de DNA metilado ou "MeDIP", usa anticorpos que se ligam a citosinas metiladas para enriquecer para sequências de DNA metilado.
Finalmente, a análise de bisulfita é usada para distinguir a citosina não metilada no DNA, realizando uma reação química que converte citosina não metilada em uracil. Após esta conversão, o DNA tratado por bisulfato pode ser submetido a PCR, sequenciado e comparado a um genoma de referência. Citosinas não metiladas são aquelas que estão presentes na referência, mas substituídas por timinas após análise de bisulfito e PCR. Submetendo o DNA tratado de bissulfeto à espectrometria de massa, os pesquisadores também podem criar "epigramas de metilação", que representam linearmente diferentes CpGs no genoma e retratam o grau de metilação em cada um deles. Tais epigramas são particularmente úteis se os pesquisadores desejam comparar padrões de metilação entre diferentes tipos de células.
Vamos agora dar uma olhada aprofundada no protocolo de análise de bisulfato.
Para começar, hidróxido de sódio é adicionado às preparações de DNA genômico, que são então incubados a 95°C. Isso desnatura o DNA e torna suas bases acessíveis a reações químicas subsequentes. Metabissulfeto de sódio é então introduzido na mistura de DNA desnaturado, e duas etapas de reação química ocorrerão. Durante a primeira etapa, sulfonação, um grupo de sulfite é adicionado a uma citosina não metilada para formar sulfonato de citosina. Em seguida, durante a deaminação hidrolicada, um grupo de amino é removido do sulfonato de citosina para gerar sulfonato uracil.
Para facilitar esses primeiros estágios da reação química, a preparação do DNA é sobreposta com óleo mineral, o que previne a evaporação e ajuda a manter a concentração de metabisullfita de sódio. A reação é então incubada a 55°C no escuro. Durante esta etapa, um agente para evitar a oxidação, como quinol, também é adicionado à mistura.
Para coletar DNA modificado contendo sulfonato uracil, e sem óleo mineral, a mistura é centrifuada e a camada líquida mais baixa recuperada. O DNA desta solução é então purificado.
Em seguida, hidróxido de sódio é adicionado à mistura de DNA, que é então incubada a 37°C. Isso é feito para induzir a desulfonação, que , como você deve ter adivinhado, remove o grupo sulfite do sulfonato uracil, formando uracil e completando a reação química.
Finalmente, a mistura é neutralizada com a adição de acetato de amônio, e o DNA é coletado pela precipitação do etanol. Uma vez que o DNA convertido por bisulfita tenha sido purificado, ele é submetido a PCR e sequenciamento.
Agora que discutimos a técnica básica para análise de bisulfato, vamos olhar para algumas aplicações experimentais.
Alguns pesquisadores usam a análise de bisulfato para investigar a impressão genômica. Aqui, os pesquisadores cruzaram duas cepas de Arabidopsis com diferenças genéticas, para que o DNA materno e paterno pudesse ser distinguido. Os padrões de metilação nos embriões resultantes e no endosperm associado, ou no tecido que sustenta o embrião, foram então comparados. Usando este método, os cientistas descobriram que os CpGs no alelo materno de um gene codificador de proteínas, MEA,tendiam a ser metilados em embriões, mas não metilados em endosperma, indicando impressão específica do tecido.
Outros pesquisadores estão usando essa técnica para entender como fatores ambientais ou sociais podem alterar padrões de metilação. Aqui, filhotes de rato foram separados de suas mães para induzir o estresse, e seus tecidos cerebrais foram posteriormente isolados. Após o sequenciamento do DNA tratado com bisulfita, os cientistas determinaram que os padrões de metilação em um gene codificador de hormônios, AVP,mudaram em uma região cerebral específica em filhotes "separados", sugerindo um possível mecanismo molecular para efeitos biológicos de longo prazo da experiência de vida precoce.
Finalmente, muitos pesquisadores estão tentando otimizar a análise de bisulfato para facilitar a comparação de padrões de metilação entre células individuais e únicas. Aqui, os pesquisadores modificaram o método de análise de bisullfita para que todas as etapas fossem realizadas em oócitos individuais de camundongos embutidos em agarose, o que ajudou a se proteger contra a perda de DNA. Usando esse método, os pesquisadores foram capazes de identificar facilmente amostras de oócito único que haviam sido contaminadas com outras células, procurando por aquelas que deram múltiplos padrões de metilação.
Você acabou de assistir ao vídeo do JoVE sobre análises sensíveis à metilação. Aqui, discutimos o papel que a metilação de DNA desempenha na regulação genética, métodos que os pesquisadores usam para identificar regiões metiladas no genoma, um protocolo generalizado para análise de bisulfato, e, finalmente, algumas aplicações dessa técnica. Como sempre, obrigado por assistir!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What is DNA methylation and where does it occur in the genome?
DNA methylation is a chemical modification where cells add a methyl group to cytosine bases in DNA. Most methylated cytosines occur next to guanine bases, forming CpG dinucleotides. Although most vertebrate CpGs are methylated, unmethylated CpGs tend to cluster together in CpG islands near gene promoters and regulatory elements, where they remain accessible for gene expression.
Q2: How does DNA methylation contribute to gene silencing?
DNA methylation silences genes through two mechanisms: it can prevent transcription factors from binding to promoters, or it can recruit proteins that modify histones and remodel chromatin into a transcriptionally non-permissive state. This stable silencing is particularly important in epigenetic processes such as genomic imprinting and X-chromosome inactivation, where genes are silenced based on their parent of origin or chromosome copy.
Q3: What are the main methods for detecting DNA methylation?
Three primary detection methods exist: the HELP assay uses restriction enzymes HpaII and MspI to compare digestion patterns of methylated versus unmethylated DNA; MeDIP uses antibodies to enrich methylated DNA sequences; and bisulfite analysis chemically converts unmethylated cytosines to uracil, allowing methylation status to be determined through PCR and sequencing.
Q4: What happens to DNA during the bisulfite analysis chemical reaction?
Bisulfite analysis involves two key chemical steps: sulfonation adds a sulfite group to unmethylated cytosines, forming cytosine sulfonate; then hydrolytic deamination removes an amino group to generate uracil sulfonate. Desulfonation subsequently removes the sulfite group, converting uracil sulfonate to uracil. This process leaves methylated cytosines unchanged, enabling distinction between methylated and unmethylated bases.
Q5: How is bisulfite-converted DNA analyzed after chemical treatment?
After bisulfite conversion and purification, the modified DNA is subjected to PCR and sequencing. Unmethylated cytosines appear as thymines in the sequenced product, while methylated cytosines remain as cytosines. Researchers can also use mass spectrometry to create methylation epigrams, which linearly represent different CpGs and depict the degree of methylation at each site, facilitating comparison between cell types.
Q6: How have researchers used bisulfite analysis to study genomic imprinting?
Researchers crossed Arabidopsis strains with genetic differences to distinguish maternal and paternal DNA, then compared methylation patterns in embryos and endosperm tissue. They found that CpGs in the maternal allele of the MEA gene were methylated in embryos but unmethylated in endosperm, demonstrating tissue-specific imprinting patterns that bisulfite analysis can reveal.
Q7: What role does aberrant DNA methylation play in cancer development?
Aberrant methylation of CpG islands can silence critical genes, leading to uncontrolled cell growth and cancer. Unlike normal epigenetic silencing, this abnormal methylation disrupts the balance of gene expression necessary for proper cell function. Understanding these methylation patterns through techniques like bisulfite analysis helps researchers identify molecular mechanisms underlying cancer and develop potential therapeutic strategies.
Chapters in this video
0:00
Overview
0:42
Principles of DNA Methylation
4:07
Generalized Procedure for Bisulfite Analysis
6:14
Applications
8:17
Summary
Videos from this collection: