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Isolando Myofibrils de Biópsias musculares esqueléticas e determinando função contractile com um ...
Isolando Myofibrils de Biópsias musculares esqueléticas e determinando função contractile com um ...
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JoVE Journal Biology
Isolating Myofibrils from Skeletal Muscle Biopsies and Determining Contractile Function with a Nano-Newton Resolution Force Transducer

Isolando Myofibrils de Biópsias musculares esqueléticas e determinando função contractile com um transdutor de força de resolução nano-Newton

Full Text
7,484 Views
07:55 min
May 7, 2020

DOI: 10.3791/61002-v

Martijn van de Locht1, Josine M. de Winter1, Dilson E. Rassier2, Michiel H.B. Helmes1,3, Coen A.C. Ottenheijm1

1Department of Physiology,Amsterdam UMC, 2Department of Kinesiology and Physical Education, Faculty of Education,McGill University, 3IONOptix BV

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Apresentado aqui é um protocolo para avaliar as propriedades contratuais de myofibrils musculares estriados com resolução nano-Newton. O protocolo emprega uma configuração com uma sonda de força óptica baseada em interferometria. Esta configuração gera dados com uma alta relação sinal-ruído e permite a avaliação da cinética contracttil dos myofibrils.

Avaliar as propriedades contratuais de miofibrils isolados do músculo estriado pode ser usado para determinar se a disfunção do sarcomere é a principal causa de fraqueza muscular devido a mutações em proteínas sarcomeric. Esta técnica pode ser usada para adquirir dados com uma relação sinal-ruído muito alta com resolução de nanonewton. Este protocolo também é adequado para medir a contrativismo em cardiomiócitos permeabilizados.

Tenha em mente que o transdutor de força é muito frágil. Então, ao remover a cola da agulha de montagem ou ao colar um myofibril, você precisa ter uma mão firme, muita prática, e muita paciência. Antes de montar o tecido, coloque uma haste homogeneizadora no tubo contendo o tecido muscular.

Mantendo o tubo no gelo, gire o rotor por 15 segundos na velocidade cinco. Ao final da homogeneização, transfira 50 microliters da suspensão myofibril resultante e 250 microliters de solução relaxante para um slide revestido de poli-HEMA em um banho de tecido. Cubra o banho com uma tampa para proteger a mistura do pó e espere de 5 a 10 minutos para permitir que os myofibrils afundem até o fundo da gota.

Durante o naufrágio dos myofibrils, aqueça Shellac uma cola de etanol a 65 graus Celsius por 30 a 60 segundos antes de adicionar cerca de seis microliters de cola em um escorregador de vidro não revestido. Mergulhe repetidamente a ponta de cada agulha de montagem na cola até que uma camada de cola seja visível. Em seguida, use micro-manipuladores para mover a sonda e piezo verticalmente para abrir espaço para o banho de tecido no estágio do microscópio e remover a lâmina de vidro contendo a cola.

Depois de montar os myofibrils, para medir o comprimento do sarcomere, mova o piezo e/ou a sonda de força para definir o comprimento inicial de sarcomere do myofibril para 2,5 micrômetros. Usando a função do vaso do software do controlador do sistema, meça o comprimento e largura do myofibril. Use o estágio do microscópio para posicionar o myofibril no centro da imagem de vídeo e esticar um retângulo de um lado do myofibril para o outro, tomando o cuidado de incluir a borda escura das gotículas de cola.

Para começar a gravar os dados, clique em iniciar. Após cinco segundos, clique em pausa. O comprimento terá sido gravado.

Para medir a largura, gire a câmera 90 graus para ver o contraste da borda do próprio myofibril. Ajuste o retângulo e clique em iniciar a gravação dos dados. Após cinco segundos, clique em pausa.

A largura terá sido registrada. Para posicionar o vidro, use a ocular e o manipulador para mover cuidadosamente o vidro em direção ao myofibril. Alinhe o canal superior do vidro com o myofibril e realize um passo rápido para verificar a posição.

Ligue o fluxo relaxante de fundo para verificar o alinhamento do vidro theta e use uma alavanca de válvula Luer para ligar a entrada da câmara de fluxo. Em seguida, para começar a drenar a câmara de fluxo e evitar o transbordamento da câmara de fluxo, ajuste a válvula de bomba de saída para a válvula de banho dois, o modo micro passo para micro, o alvo do êmbolo para 48.000, e a velocidade do êmbolo para 38 a 40. Para medir a taxa de reurbanização da tensão, calcule o movimento piezo necessário para afrouxar o myofibril em 15% e inserir esse valor no gerador de sinal.

Clique em retomar para continuar registrando os dados e abrir válvulas um e seis para iniciar os fluxos da solução relaxante e as diferentes concentrações de cálcio através do vidro, respectivamente. Selecione o intervalo de reset no interferômetro para redefinir o intervalo do interferômetro para que a força da linha de base seja zero volts. Quando o traço de força estiver estável, realize o vidro passo rápido com um tamanho de passo de 100 micrômetros.

Quando o planalto de força for atingido, realize o encurtamento reesticuante com o piezo. Um traço de relaxamento de ativação será gravado. Clique em pausa.

Para executar um trecho em forma de passo, clique em iniciar e redefinir o alcance do interferômetro para que a força da linha de base seja zero volts. Realize um trecho em passo com o gerador de sinal. Quando o trecho estiver pronto, use o piezo para encurtar o miofibril ao comprimento da folga.

Em seguida, pressione pausar e parar e salvar os dados. Aqui, traços de força de um experimento de força ativa com um myofibril isolado de músculos do quadríceps humanos saudáveis são mostrados. O myofibril foi ativado cinco vezes com soluções com concentrações variadas de cálcio, com uma força máxima média de todos os myofibrils de aproximadamente 123 mililitros por milímetro quadrado.

A construção de uma curva de concentração de cálcio de força das forças do planalto alcançada durante cada ativação em cada uma das cinco curvas de cálcio permite o cálculo da concentração de cálcio em 50% da produção de força máxima. Como ilustrado nesta análise representativa, os myofibrils podem ser tratados com múltiplos compostos em um único experimento para responder a perguntas adicionais sobre o tipo myofibril. A força ativa e o comprimento do sarcomere também podem ser medidos para permitir o cálculo das taxas de redesenvolvimento, ativação e relaxamento.

A subida acentuada mostrada na caixa vermelha pontilhada é causada tanto pela viscosidade quanto pela elasticidade. O planalto se assemelha apenas ao componente elástico. Como a viscosidade resiste à tensão linearmente, a força caiu depois que a cepa foi removida.

Ao posicionar o vidro, certifique-se de alinhá-lo corretamente com o miofibril. Caso contrário, a solução de ativação pode vir entre a fibra óptica e o cantilever da sonda de força e isso faz com que artefatos ocorram em seus dados. Além disso, o myofibril pode não ser ativado corretamente.

Este método de perfusão também é adequado para determinar o tipo de fibra muscular do miofibril. Por exemplo, você pode primeiro perfumar o myofibril com uma solução normal de cálcio seguida de perfusão dessa mesma solução, mas depois adicionar um composto específico de aumento de força do tipo fibra muscular.

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