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Dissecção do tecido pancreático para isolar células únicas viáveis
Dissecção do tecido pancreático para isolar células únicas viáveis
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Cancer Research
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JoVE Journal Cancer Research
Pancreatic Tissue Dissection to Isolate Viable Single Cells

Dissecção do tecido pancreático para isolar células únicas viáveis

Full Text
3,838 Views
08:04 min
May 26, 2023

DOI: 10.3791/64871-v

Oshri Yosefov-Levi1, Sharona Tornovsky1, Oren Parnas1

1The Lautenberg Center for Immunology and Cancer Research, The Institute for Medical Research Israel-Canada, Faculty of Medicine,The Hebrew University of Jerusalem

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

As células metaplásicas pancreáticas são precursoras de células malignas que dão origem a tumores pancreáticos. No entanto, isolar células pancreáticas viáveis intactas é um desafio. Apresentamos aqui um método eficiente para dissociação do tecido pancreático. As células podem então ser usadas para sequenciamento de RNA de célula única (scRNA-seq) ou para co-cultivo bidimensional ou tridimensional.

O protocolo de dissociação do tecido pancreático demonstrado é simples e fornece uma ferramenta para isolar células únicas viáveis do tecido pancreático em diferentes estágios durante o processo de malignidade, incluindo tumores sólidos. A recuperação de células acinares intactas e viáveis é um grande desafio. O protocolo pode recuperar células únicas viáveis de pancreata normal, pancreata com lesões pré-malignas ou tumores pancreáticos contendo numerosas células estromais e imunes.

O uso deste protocolo para dissecar tumores pancreáticos humanos ou pâncreas inflamado poderia auxiliar na investigação dessas doenças para encontrar novos biomarcadores e tratamentos. O método é fácil de usar e pode fornecer os resultados desejados com o mínimo de prática. Este vídeo ajudará a visualizar os pequenos detalhes do protocolo.

Antes de iniciar a dissecção, mantenha todos os instrumentos e equipamentos prontos no gelo. Após a fixação do camundongo eutanasiado, borrife seu abdômen com etanol 70%. Usando tesoura e pinça, faça uma incisão em forma de V de 2,5 centímetros na área genital do animal e prossiga para cima para abrir totalmente a cavidade abdominal.

Localize o estômago no lado esquerdo do rato e o pâncreas, que fica perto do baço. Usando duas pinças, separe o pâncreas do estômago e duodeno sem rasgar. Continue e separe o pâncreas do intestino delgado, jejuno e íleo.

Mova o pâncreas para o lado direito e separe as conexões restantes entre o pâncreas e a cavidade torácica com pinças para desprender completamente o pâncreas e o baço fixado. Com cuidado, remova o pâncreas sem gordura mesentérica ou outro tecido adjacente e espalhe-o para exame em uma placa de Petri sobre gelo. Seguindo a composição mencionada no texto, prepare os tampões de dissociação 1 e 2, lave o tampão e a solução de parada de atividade enzimática com antecedência.

Coloque o pâncreas em um tubo de 50 mililitros sobre gelo e enxágue-o em soro bovino fetal a 10%, ou FBS, e Hank's Balanced Salt Solution, ou HBSS. A gordura vai flutuar e o pâncreas vai afundar. Esta é uma maneira fácil de visualizar e remover rapidamente o tecido adiposo branco contaminante ainda aderido ao pâncreas.

Em seguida, transfira e mantenha o tecido pancreático do camundongo em uma placa de Petri estéril contendo cinco mililitros de HBSS no gelo até o corte. Usando uma tesoura Noyes e um bisturi, corte o pâncreas em pequenos pedaços de um a três milímetros cúbicos. Depois de transferir os tecidos para um tubo de centrífuga, centrifuga-o a 350G e quatro graus Celsius por cinco minutos.

Aspirar e descartar o sobrenadante para remover fragmentos celulares e células sanguíneas. Ressuspender: suspender as peças em tampão de dissociação 1 contendo 0,02% de tripsina-C e 0,05%EDTA por 10 minutos a 37 graus Celsius com agitação. Lave imediatamente com 10%FBS e DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium) e centrifugue por cinco minutos a 350G e quatro graus Celsius.

Lave novamente ressuspendendo o pellet em 10 mililitros de tampão de lavagem e centrifugando como anteriormente por cinco minutos antes da próxima etapa de dissociação. Incubar o pâncreas em tampão de dissociação 2 durante 15 minutos a 37 graus Celsius com agitação a 180 rotações por minuto. Após 15 minutos, realizar dissociação mecânica pipetando vigorosamente os fragmentos pancreáticos para cima e para baixo 10 vezes usando pipetas sorológicas estéreis.

Repita usando pipetas de tamanho decrescente, começando de 25, 10 a 5 mililitros. Incube a amostra para levá-la a 37 graus Celsius. Utilizar microscopia óptica para monitorar a dissociação de acordo com a quantidade de célula única na suspensão.

Monitorar a viabilidade celular usando azul de tripano. Continue a incubação e verifique a dissociação colhendo amostras a cada cinco minutos. Incubar até que 90% das células sejam separadas em células únicas.

Depois que o tecido pancreático estiver bem dissociado, indicado pelo desaparecimento dos fragmentos pancreáticos e pelo aumento da turbidez da solução, pare a reação enzimática lavando duas vezes com a solução de parada de atividade enzimática por cinco minutos a quatro graus Celsius. A partir desta etapa, mantenha a suspensão da célula no gelo. Passe a suspensão celular através de uma malha de nylon de 70 mícrons.

Uma malha de nylon menor pode reduzir a viabilidade celular. Verificar a viabilidade celular ao microscópio. Ressuspenda e lave o pellet com 5 a 10 mililitros de solução tamponada gelada antes de contar as células.

Se forem observados vários glóbulos vermelhos, trate as células com um tampão de lise de glóbulos vermelhos durante dois minutos à temperatura ambiente. Nos casos em que forem observados aglomerados, as amostras devem ser novamente tratadas com tripsina, conforme descrito anteriormente. Se a viabilidade for inferior a 80%, as células vivas devem ser isoladas usando a classificação de células ativadas por magnetismo ou o kit de remoção de células mortas MACS com colunas MACS MS.

A coloração vermelha do tecido pancreático isolado resultou da expressão de tdTomato nas células acinares. Em um estágio inicial da dissociação, havia baixo número de células isoladas e grande número de aglomerados. Posteriormente, células viáveis isoladas foram obtidas, evitando-se a redução do número de células viáveis.

O tempo de incubação mais prolongado reduziu a viabilidade das células. As células tdTomato positivas foram estimadas por meio de triagem celular ativada por fluorescência. O Protocolo de Dissociação Suave apoiou a recuperação de múltiplos tipos celulares, com alta viabilidade que permitiu o acompanhamento com a triagem celular dos tipos celulares desejados.

A contagem de células vivas para células mortas foi feita usando um hemacitômetro. As imagens de fluorescência dos cortes pancreáticos congelados mostraram células acinares positivas para tdTomato. O sequenciamento de RNA de célula única confirmou a detecção de todos os tipos celulares detectados na triagem celular ativada por fluorescência em cada tecido ressecado de todos os pontos de tempo.

A expressão da carboxipeptidase1, ou CPA1 em células acinares foi estudada, indicando mínima contaminação com o transcriptoma de outros tipos celulares. É importante notar que tempos de incubação mais longos reduziram a viabilidade das células, por isso é importante monitorar a amostra e observar a dissociação do tecido e a viabilidade celular a cada poucos minutos sob o microscópio. O protocolo de isolamento celular pode ser usado para sequenciamento de RNA de célula única, cultivo de células, ou como material de partida para organoides.

Essa técnica permite explorar como o câncer de pâncreas se desenvolve e investigar as interações entre as células que se infiltram no tecido inflamado ou canceroso.

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