Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Магнитно-резонансной спектроскопии живых Дрозофилы С помощью магии прядильной Угол

12K просмотров

DOI:

10.3791/1710

15 апреля 2010 г.

В этой статье

Краткое содержание

Эта технология позволяет использовать с высоким разрешением магическим углом спиннинг протона МР-спектроскопия (HRMAS 1H-MRS) для молекулярных характеристик живых Дрозофилы С обычными 14,1 тесла спектрометр оснащен датчиком HRMAS.

Аннотация

Высокого разрешения магическим углом Спиннинг (HRMAS) протонной магнитно-резонансной спектроскопии (

Протокол

Часть 1: Подготовка дрозофилы для измерения HRMAS

  1. С помощью стандартных процедур flylab 1, собирают вновь eclosing мух в течение 3 дней и передачи им летать флаконах, содержащих свежие продукты летать. Инкубируйте собранных мух в течение 5 дней, чтобы мухи станут 5-8 дней непосредственно перед экспериментом. Только одного пола (обычно мужчины) используется для экспериментов.
  2. Используйте здоровые, неповрежденные дикого типа мухи сравнить с обработанными например, травмированные или генетически измененных мух 1.
  3. Место одного летит в 2 мл пробирки, содержащие часть (~ 0,2 мл) летучей пищи за 24 часов до эксперимента. Эти трубки медведя отверстие в трубке чашку с использованием пламени нагревают инсулина иглу.
  4. Взвесьте трубы непосредственно до и после вставки летать использованием высоких баланс точности и определить вес каждого летать с вычитанием первое значение из последнего. Одного мужчины летают весит обычно 0,7-1 мг.

Часть 2: Подготовка HRMAS ротора.

  1. Место одной трубки на льду в течение менее чем за минуту, чтобы обезболить летать внутри.
  2. Положите летать на слой алюминиевой фольги помещают на лед и нажмите летать мягко в полусферической полые пространства вставить ЯМР ротора с помощью мягкой щетки, чтобы обеспечить полное включение летать, избегая при этом летать травмы.
  3. Место вставить оксида циркония (ZrO 2) трубы ротора (4 мм в диаметре, 50 мкл), чтобы найти мухи между ротором вставки и нижней части ротора (см. рисунок 1).
  4. Закрыть вставка с винтом и покрыть ее парафильмом (см. рисунок 1), чтобы предотвратить контакт между летать и решение TSP стандарт (TSP: триметилсилил-пропионовая-2 ,2,3,3-d4 кислоты, Mw = 172, δ = 0,00 промилле, 50 мм в дейтерированных водой D 2 O, которые функционируют в качестве ссылки для сдвига резонанса химического и количественного).
  5. Добавить 8 мкл TSP стандартное решение на верхней части ротора вставки. (См. рисунок 1).
  6. Безопасные и затянуть весь созданный в роторы с верхней крышке (см. рисунок 1).

Часть 3: HRMAS сбора данных

  1. Ввести ротора в зонд HRMAS и расположите его под магическим углом 54,7 ° (см. рисунок 1).
  2. Установите температуру на 4 ° С BTO-2000 блок в сочетании с единицы пневматического МАС. Мухи хранить при температуре 4 ° С в то время как в спектрометр для поддержания анестезии.
  3. Установить HRMAS 1 H МРС спиннинг ставка в 2 MAS кГц.
  4. Стабилизация частоты вращения MAS на 2,0 ± 0,001 кГц контроллер MAS скорость (частота вращения).
  5. Для магнит приготовления: настройка и соответствуют катушки для оптимальной производительности и прокладку магнитом для оптимального качества спектров.
  6. Приобретать одномерных 1 H спектров с использованием ротора синхронизированы Карр-Перселл-Мейбума-Гилл (CPMG) спиновое эхо последовательности импульсов 2, [90 ° - (τ-180 ° - τ) п приобретения], который работает как T 2 фильтра удалить уширения спектра ЯМР 1 Н одном лету спектров приобретенных одномерных данных по всем образцам. Синхронизация между задержки импульса (τ = 500μs) с частотой вращения MAS (2 кГц). Установить число переходных процессов при 256 с 32 768 (32k) точек данных. Приобретение время 9 мин.
  7. Приобретать двумерных (2D) 1 H-1 H ЯМР HRMAS одного лету спектры на всех образцах использованием TOBSY последовательность импульсов с адиабатическим 3. Приобретение параметрами являются: 2k точек данных прямого измерения (11 частей на миллион ширина спектра), 1 с водой предварительно насыщения в процессе релаксации задержки, 8 сканирований в прирост, 128 шагом, общее время повторения 2 сек, 45 мс, время перемешивания, и в общей сложности приобретением время 29 мин.

Часть 4: Обработка данных / Анализ

  1. Анализ образцов MRspectra использованием MestReC программное обеспечение (Mestrelab исследований, www.mestrec.com)
  2. Используйте уширения аподизации функцией 0,5 Гц и применяются ко всем HRMAS 1 H FIDS до преобразования Фурье.
  3. Ссылка спектров MR по отношению к TSP в δ = 0,0 промилле (внешний стандарт).
  4. Фазы спектров вручную и применять базовые оценки Уиттекер вычесть основных компонента базового до пика расчетами области.
  5. Оценка площадей пиков использованием MestReC программного обеспечения. Шкала высот пиков по отношению к TSP для каждого приобретенного спектра (TSP высота пика = 1). Использование Т-тестов (с двумя хвостами, р <0,05), для сравнения в группе, чтобы между-групп коэффициентов.
  6. 2D параметры TOBSY процесса являются: QSINE = 2 функция окна в обоих измерениях, FT с 2k точек в прямом измерении и нулевой наполнения 1k во втором измерении, фазовую коррекцию в обоих направлениях и коррекция базовой линии во втором измерении.
  7. Продукция 2D-спектров с использованием программы Спарки (TD Годдарда и Д. Г. Неллер, SPARKY 3, USCF, http://www.cgl.ucsf.edu/Главная / Sparky /)

Часть 5: Представитель спектры от игрового мухи дрозофилы

Процедур, описанных выше разрешение собирать воспроизводимых спектров от живых мух Drosophila MELANOGASTER. На рисунках 2 и 3 показаны спектры представитель MR, приобретенных в дикого типа (WT) Орегон-R мух. На рисунке 2 представлены 1D 1 H HRMAS CPMG спектров. Основные компоненты липидного [C H 3 (0,89 промилле), (С H 2) л (1,33 промилле), С H 2 C-CO (1.58ppm), С H 2 C = C (2,02 промилле), С H 2 C = O (2,24 промилле), C H = C H (5,33 промилле)], глицерина (1,3-C H 4,10 промилле и 4,30 промилле; 2-CH 2 5,24 промилле), и малых метаболитов: β-аланина (β-Ala , 2,57 промилле), ацетат (Ас, 1,97 промилле), фосфохолин (PC, 3,22 промилле) и phophoetanolamine (ПЭ, 3.23ppm) были обнаружены и присваивается в соответствии с предыдущих докладах 4, 5. Сигналы на 2,02 промилле были назначены на метиленовых протонов C H2-CH = CH фрагмент моно-ненасыщенных жирных кислот (т.е. пальмитолеиновой). Ненасыщенных кислот были определены сигнала на 5,33 промилле производства протонов-CH = CH-группу. Малый метаболиты, которые не могут быть назначены или не были видны использованием 1D спектра были обнаружены с помощью 2D-1 Н-1 Н TOBSY HRMAS (см. рисунок 3).

Рисунок 1
Рисунок 1. Экспериментальная настройка в естественных условиях HRMAS 1H MRS для исследования живых дрозофил на 14,1 Т. Внешний стандарт триметилсилил-пропионовая-2 ,2,3,3-d4 кислоты в дейтерированных воды (TSP / D 2 O). На площади: положение ротора под магическим углом в HRMAS зонда.

Рисунок 2
Рисунок 2. В естественных условиях 1D HRMAS 1 H CPMG спектры жить дрозофилы летать MELANOGASTER вес. Липидных компонентов: C H 3 (0,89 промилле), (С H 2) л (1,33 промилле), С H 2 C-CO (1.58ppm), ацетат (Ас), С H 2 C = C (2,02 промилле), C H 2 C = O (2,24 промилле), β-аланина (β-Ala), фосфохолин (ПК) и phophoetanolamine (PE), глицерин (1,3-C H 4,10, 4,30 промилле; 2-C 2 H 5,22 промилле) , C H = C H (5,33 промилле).

Рисунок 3
Рисунок 3. В естественных условиях 2D 1H-1H TOBSY HRMAS спектр жить дрозофилы вес летать на 14,1 Т. Малый метаболитов и липидных компонентов были определены. Метаболиты: аланин (Ala), β-аланина (β-Ala), аргинина (Arg), глютамин (Gln), глутамата (Glu), ПК фосфохолин (ПК), phophoetanolamine (PE), таурин (Тау), α-глюкозы (α-GLC) и глицерин. Липиды компонентов: C H 3 (0,89 промилле), (С H 2) л (1,33 промилле), С H 2 C-CO (1,58 промилле), С H 2 C = C (2,02 промилле), С H 2 C = O (2,24 промилле), C H = C H (5,33 промилле).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

За исключением последнего доклада возможности в естественных условиях МРТ у плодовых мушек 6, в естественных условиях MRS исследования у дрозофилы до сих пор не сообщалось. В настоящее время протокол, мы описываем реализацию романа в естественных условиях HRMAS 1 H-MRS подход для выявления биологически важных молекул. В частности, мы обнаружили липидов и малых метаболитов в живых мухи дрозофилы составляет 14,1 т в примерно 45 мин, что позволяет достаточн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами установленными Massachusetts General Hospital Институциональный комитет Исследования животных Review Board.

Благодарности

Эта работа была выполнена при частичной поддержке Национального института здоровья (NIH) предоставлять AI063433 к Лоуренс Г. Rahme, Национального института Институтов Здоровья (NIH) Центр Грант (P50GM021700) Рональда Г. Томпкинс (А. Ария Tzika, директор основные ЯМР), и больница Шрайнер по делам детей исследовательского гранта (# 8893) А. Ария Tzika. Мы благодарим Dionyssios Mintzopoulos кандидат за помощь в начальные фазы развития этого протокола и Овидиу С. Andronesi кандидат за помощь в TOBSY импульсной последовательности.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Оксид дейтерияРеагентSigma-Aldrich7789-20-0
3-(триметилсилил)пропионовая-2,2,3,3-d4 кислотаРеагентSigma-Aldrich24493-21-8
агар, сахароза, дрожжи, кукурузная мукаКормGenesee Scientifichttp://www.flystuff.com/
мухи линий Oregon RS или Canton-SЛинии взрослых мухЦентр стоков Блумингтонаhttp://flystocks.bio.indiana.edu/
Кисть для рисованияОборудование(размер 0)
пробирки объемом 2 млОборудованиеFisher ScientificK749521-1590
Инкубаторы для мухОборудованиевысокая влажность (60–75%), регулируемая температура и световой цикл 12 ч свет : 12 ч темнота.
ЯМР-спектрометр Bruker Bio-Spin Avance (600,13 МГц) с 4-мм зондом для тройного резонанса (1Н, 13C, 2H) Зонд HRMAS ОборудованиеBruker Corporation
Устройство BTO-2000 в сочетании с пневматическим блоком MASОборудованиеКорпорация Bruker
ротор из диоксида циркония 4 мм (вместимость 50 мкл)ОборудованиеBruker CorporationB3829 (магазин Bruker)
MestReC (Mestrelab Research) Программное обеспечениеАнализ одномерных ЯМР-спектров
http://mestrelab.com/
SPARKY 3, USCFПрограммное обеспечениеАнализ 2D ЯМР-спектров
http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/

Ссылки

  1. Apidianakis, Y., Rahme, L. G. Drosophila melanogaster as a model host for studying Pseudomonas aeruginosa infection. Nat Protoc. 4, 1285-1294 (2009).
  2. Meiboom, S., Gill, D. Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation time. Rev Sci Instrum. 29, 688-691 (1958).
  3. Andronesi, O. C., Mintzopoulos, D., Struppe, J., Black, P. M., Tzika, A. A. Solid-state NMR adiabatic TOBSY sequences provide enhanced sensitivity for multidimensional high-resolution magic-angle-spinning 1H MR spectroscopy. J Magn Reson. 193, 251-258 (2008).
  4. Astrakas, L. G. Proton NMR spectroscopy shows lipids accumulate in skeletal muscle in response to burn trauma-induced apoptosis. Faseb J. 19, 1431-1440 (2005).
  5. Fan, T. W. M. Metabolite profiling by one- and two dimensional NMR analysis of complex mixtures. Prog Nuc Magn Reson Spec. 28, 161-219 (1996).
  6. Null, B., Liu, C. W., Hedehus, M., Conolly, S., Davis, R. W. High-resolution, in vivo magnetic resonance imaging of Drosophila at 18.8 Tesla. PLoS One. 3, e2817-e2817 (2008).
  7. Zektzer, A. S. Improved signal to noise in high-resolution magic angle spinning total correlation spectroscopy studies of prostate tissues using rotor-synchronized adiabatic pulses. Magn Reson Med. 53, 41-48 (2005).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

in vivo