Методическая статья

Фотопревращения Очищенная флуоресцентных белков и двойного зонда Оптические Выделение в живых клетках

DOI:

10.3791/1995

26 июня 2010 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол описывает общий подход для выполнения фотопреобразования флуоресцентных белков по конфокальной лазерной сканирующей микроскопии. Мы описываем процедуры фотопревращения puried образцов белков, а также для двойного зонда оптических подсветка в живых клетках с mOrange2 и Dronpa.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Photoconvertible флуоресцентных белков (рс-ФПС) представляют собой класс флуоресцентных белков с "оптический маркер" возможности, а это означает, что цвет флуоресценции может быть изменен под воздействием света определенной длины волны. Оптическая подсветка позволяет неинвазивным маркировка субпопуляции флуоресцентные молекулы, и поэтому идеально подходит для отслеживания отдельных клеток или органелл.

Критические параметры для эффективного фотопреобразования являются интенсивность и время экспозиции фотопреобразования света. Если интенсивность слишком мала, фотопреобразования будет медленно или не происходит вообще. С другой стороны, слишком много интенсивности или слишком длительном воздействии может photobleach белка и тем самым снизить эффективность фотопреобразования.

Этот протокол описывает общий подход, как настроить конфокальной лазерной сканирующей микроскопии для ПК-FP приложений фотопреобразования. Во-первых, мы описываем процедуру подготовки очищенные образцы белка капли. Этот образец формат очень удобен для изучения фотофизических поведение флуоресцентных белков под микроскопом. Во-вторых, мы будем использовать образец белка капли, чтобы показать, как настроить микроскоп для фотопреобразования. И, наконец, мы покажем, как выполнить оптическую подсветку в живых клетках, в том числе двойного зонда оптических выделение с mOrange2 и Dronpa.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка люминесцентные образцы капли белка

Флуоресцентного белка капли образец состоит из 1-octanol/water эмульсии с флуоресцентным белком, проживающих в водной фазе. Эта эмульсия зажата между слайд микроскоп и 22 мм квадратных покровного стекла для микроскопии приложений.

  1. Перед тем, люминесцентные образцы капли белка предметные стекла и покровные стекла должны быть очищены и покрыты гидрофобным агента.
  2. Чистая посуда промывкой 5 минут с ацетоном и просушить на воздухе. (При желании после чистки посуды можно лечить в течение 30 секунд в плазме очиститель для получения оптимальных результатов покрытием).
  3. Подготовка 2% метилтриметоксисилана раствора в ацетоне и пальто посуды в течение 2 минут инкубации в этом растворе. После нанесения покрытия удалить посуда из раствора и оставляют сохнуть на воздухе. Затем смойте 70% этанола из пульверизатора и просушить снова. (При желании, на данный момент изделия из стекла можно запекать в течение 1 часа при температуре 80 ° С до ковалентно ссылку покрытие для посуды). Покрытием изделия из стекла могут храниться в течение не менее одного месяца.
  4. Флуоресцентные белки очищаются как Его 6-меченый белок из E. Coli 1. Измерить абсорбцию спектр очищенного белка и подготовить запас разбавления оптическая плотность ~ 0,1 в STE буфера (150 мМ NaCl, 10 мМ Трис-HCl, рН 8, 1 мМ ЭДТА), содержащего 0,1% бычьего сывороточного альбумина (БСА) . Кроме того подготовить 10 мл смеси 1:1 1-октанола и STE буфера в 15 мл коническую трубку и перемешать энергично. После смешивания отпуск до разделения фаз является полным. Верхней фазе 1-октанол. (Внимание: Так как 1-октанол имеет сильный запах, важно использовать закрытый контейнер отходов за все, что приходит в соприкосновение с 1-октанол.)
  5. Чтобы сделать эмульсию пипетки 45 мкл 1-октанола и 5 мкл флуоресцентного белка в микроцентрифужную трубки. Нажмите трубку несколько раз пальцем, чтобы приступить к формированию эмульсии, а затем разрушать ультразвуком трубку в течение 30 секунд в ванне ультразвуком. В то же время получить покрытием слайд микроскопа и покровного стекла готовы. После обработки ультразвуком эмульсии должна быть полностью облачность. Сразу же после обработки ультразвуком пипетки 4 мкл эмульсии из середины тюбика на покрытие микроскопический слайд и накрыть стекла с покрытием крышки.
  6. Если процедура выполнена правильно эмульсии должна распространяться равномерно между слайд микроскоп и предметное стекло. В течение нескольких минут образца должна быть стабильной, состоящий из ~ 10 мкм флуоресцентные капель различного диаметра. Крупнейший капли близки к центру образца и меньше, расположенных дальше к краям.

2. Настройка фотопреобразования эксперимент

Следующая процедура является общей стратегии по созданию флуоресцентных эксперимент фотопреобразования белка. Эта процедура может быть применена для очищенных белков, а также для живых клеток.

  1. Следующие параметры обеспечивают общую отправную точку для настройки фотопреобразования эксперимент:
    40x 1.3NA цель погружения нефти
    Размер изображения = 512 х 512 пикселей
    Сканирование зума = 4

    Pixel время пребывания = 6 мкс.
    Z-разрешение (размер отверстия) = 3 мкм
  2. Настройка две обнаружения каналов для начального и photoconverted флуоресценции, а также "фотопреобразования канал". В этом примере мы будем использовать очищенную mOrange2 белка, который является оранжево-красного флуоресцентного белка photoconvertible. Видов оранжевый определяется с помощью 561 нм и возбуждения флуоресценции собирается между 570 нм и 630 нм. Photoconverted красного видов, обнаруженных с применением 633 нм и возбуждения флуоресценции собирается между 640 нм и 700 нм. Для "фотопреобразования канал" выберите 488 нм возбуждения флуоресценции и собирать между 490 нм и 540 нм. (Примечание:. Изображений фотопреобразования канал не является строго обязательным)
  3. Использование канала для работы с изображениями начальной флуоресценции с непрерывным сканированием для регулировки мощности лазера и детектора усиления для оптимального качества изображения.
  4. Активировать фотопреобразования канал и выберите малой мощности лазера. Начало серии изображений промежуток времени и постепенно увеличивать фотопреобразования лазерных до значительных отбеливания начальной флуоресценции не наблюдается. Продолжить сканирование до начальной флуоресценции составляет примерно 75% беленой.
  5. Отключить фотопреобразования канала и активировать обнаружения канала для photoconverted флуоресценции. Начать съемки с высоким коэффициентом усиления детектора и малой мощности лазера и постепенно увеличивать мощность лазера до photoconverted флуоресценции обнаружено. Как только вы обнаружили photoconverted флуоресценции можно регулировать мощность лазера и детектора усиления для оптимального качества изображения.
  6. Наконец, мощность лазера использовандля фотопреобразования, а также длительность фотопреобразования должны быть оптимизированы. Увеличение мощности фотопреобразования лазер ускорит скорость фотопреобразования, однако слишком много мощности лазера будет photobleach белка.
  7. После оптимальной мощности лазера фотопреобразования и продолжительность были определены, эти параметры могут быть использованы для настройки стандартных фотообесцвечивания или FRAP модуля и "фотопреобразования канал" больше не требуется.

3. Двойной датчик оптический выделение с mOrange2 и Dronpa

Из-за красное смещение спектральных свойств, mOrange2 может быть использован в сочетании с зеленым флуоресцентным photoswitchable Dronpa белка для двойного зонда оптических подсветка разрешение селективного выделения из 4 отдельных клетки (органелл) населения.

  1. Клетки, выращенные в стеклянным дном блюда Маттек и трансфицированных за 24 часа до визуализации с использованием стандартных Lipofectamine2000 трансфекции 1.
  2. Настройка микроскопа для mOrange2 фотопреобразования, как описано в разделе 2.
  3. Настройка микроскопа для photoswitching Dronpa. Dronpa флуоресценции могут быть отображены для использования mOrange2 "фотопреобразования канал" (см. п. 2.2). (Примечание: Свернуть мощности лазера используется для визуализации Dronpa, потому что слишком много мощности лазера приведет к инактивации Dronpa.) Добавить канал для фотоактивации Dronpa. Мы используем 800 нм двухфотонного возбуждения фотоактивации, но альтернативно это может быть достигнуто использованием 405 нм возбуждения. Определить мощность лазера требуется для работы с изображениями, фотоактивации и фотоинактивации Dronpa флуоресценции.
  4. Внимание: фотопревращения mOrange2 и инактивации Dronpa оба происходят от 488 нм возбуждения. Из-за высокой мощности лазера, необходимых для mOrange2 фотопреобразования это также инактивировать Dronpa флуоресценции. С другой стороны, Dronpa инактивация происходит уже при гораздо более низких мощности лазера и может быть выполнена без существенного mOrange2 фотопреобразования.
  5. Как только параметры mOrange2 фотопреобразования и Dronpa photoswitching установлены, двойной зонд оптического подсветки достигается за счет следующих шагов. Во-первых, инактивируют Dronpa флуоресценции всему полю зрения с малой мощностью 488 нм возбуждения. Во-вторых, выбрать область интересов и photoconvert mOrange2 с высокой мощностью 488 нм возбуждения. Наконец, выберите регион представляет интерес для активации Dronpa флуоресценции.

4. Представитель Результаты

figure-protocol-1
Рисунок 1. Капли пробоподготовки.) Правильно подготовленные капли образца. Б) образца, приготовленного без покрытия слайд микроскопа и покровного стекла. С) образца, приготовленного без добавления 0,1% BSA.

figure-protocol-2
Рисунок 2. Влияние фотопреобразования мощности лазера и продолжительность на mOrange2 фотопреобразования. Одноместный капель, содержащих протеин mOrange2 непрерывно photoconverted использованием разного количества 488 Мощность лазерного нм. Относительная мощность лазера, используемого для фотопреобразования составила 10% (твердые), 25% (пунктир), и 100% (пунктир). ) Оранжевый флуоресцентный видов. Б) Photoconverted красный флуоресцентный видов.

figure-protocol-3
Рисунок 3. Двойной датчик оптический выделение с mOrange2 и Dronpa.) Сотовые выражения mOrange2-гистонов H2B и Dronpa-Мито до фотопреобразования, демонстрируя оранжевые флуоресценции в ядре и зеленого свечения в митохондриях. Б) Dronpa флуоресценции был выключен с малой мощностью 488 нм возбуждение, что приводит к минимальным фотопревращения mOrange2. С) mOrange2 был photoconverted до красного с высокой мощностью 488 нм возбуждения. D) Dronpa флуоресценции был включен еще раз, используя 800 нм 2-фотонного возбуждения. Панели перекрытия флуоресцентные изображения вместе с контрастное изображение вмешательства дифференциала.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Очищенной люминесцентные образцы капли белка очень удобно типовой формат для фотофизических характеристик флуоресцентные белки, например, для исследования кинетики и фотообесцвечивания фотопреобразования кинетики. Крайне мало объема капли (~ 20 пиколитра) облегчает фотообесцвечивания и фотопреобразования экспериментов, которые могут быть трудными для выполнения в кювете систем. Кроме того, как показано здесь капли образец идеально подходит для создания конфокальной микроскопии для фотопреобразования приложений. Гидрофоб...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим В. Майк Дэвидсон (Университет штата Флорида) за предоставление плазмиды ДНК, кодирующий флуоресцентные белки. Работа выполнена при поддержке Национального института здоровья грант GM72048 (для ДПР).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Предметные стеклаVWR international48312-003
Покрывные стекла 22 mmCorning2940-245
1-октанолSigma-AldrichO4500
метилтриметоксисиланSigma-AldrichM6420
Чашки MatTekMatTek Corp.P35G-1.5-14-C
Lipofectamine2000Invitrogen11668-019

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kremers, G. J., Hazelwood, K. L., Murphy, C. S., Davidson, M. W., Piston, D. W. Photoconversion in orange and red fluorescent proteins. Nature Methods. 6, 355-358 (2009).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи