Методическая статья

Коинкубационный анализ для изучения конкурентных взаимодействий между штаммами бактерий

26 сентября 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Speare, L., et al. Коинкубационный анализ для количественной оценки конкурентных взаимодействий между изолятами Vibrio fischeri . J. Vis. Exp. (2019)

В этом видео демонстрируется анализ совместной инкубации, используемый для изучения того, как штаммы бактерий конкурируют в общей среде. Он широко применяется в микробиологии для выявления механизмов, таких как контактно-зависимое или контактно-независимое убийство, которые управляют этими взаимодействиями.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Коинкубационные штаммы (рис. 1B, C)
    1. Смешайте эталонный штамм и конкурирующий штамм в соотношении 1:1 (v/v), добавив по 100 мкл каждого штамма (нормализовано до OD 1,0) в маркированную центрифужную пробирку объемом 1,5 мл. В качестве контроля смешайте референсный штамм с дифференциально помеченной версией самого себя (референсный штамм pVSV102 + референсный штамм pVSV208). Этот контроль необходим для последующего статистического анализа, чтобы определить, влияет ли присутствие конкурирующего штамма на рост эталонного штамма. Вихревой смеситель культуры в течение 1-2 с.
      ЗАМЕТКА: Этот шаг может потребовать оптимизации, так как начальное соотношение может значительно повлиять на результаты и, возможно, потребуется скорректировать.
    2. Повторите шаг 1 для каждой биологической репликации. После завершения этого этапа должно быть в общей сложности восемь пробирок со смешанными штаммами: четыре биологические репликации с дифференциально мечеными референсными штаммами (контроль) и четыре биологические репликации с дифференциально мечеными референсными штаммами и конкурирующими штаммами (экспериментальные).
    3. Нанесите по 10 мкл каждой контрольной и экспериментальной смеси на пластины Петри, содержащие агар LBS; Эти пятна культуры будут использоваться для флуоресцентной микроскопии после инкубации.
    4. Дайте пятнам полностью высохнуть на скамейке, пока вся жидкость не впитается в агар, и инкубируйте пластины Петри при температуре 24 °C в течение 24 часов. Для того, чтобы штаммы V. fischeri , помеченные pVSV102 и pVSV208, выросли до достаточно высокой плотности клеток, чтобы визуализировать зеленый флуоресцентный белок (GFP) и красный флуоресцентный белок (RFP) соответственно на популяционном уровне с помощью флуоресцентного препарирующего микроскопа. Здесь мы используем 24-часовую инкубацию для визуализации смешанных пятен.
      ЗАМЕТКА: Важно использовать тарелки, которые не являются слишком влажными или слишком сухими. Если пластины будут слишком влажными, пятна коинкубации не впитаются в агаровую пластину; Избегайте использования тарелок, налитых в тот же день. Если пластины слишком сухие, на поверхности агара могут образоваться небольшие волны или трещины, что сделает пятна коинкубации неправильной формы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Рисунок 1: Блок-схема, иллюстрирующая анализ коинкубации. (A) Штаммы бактерий, содержащие либо pVSV102 (референсный штамм обозначен как Ref. Strain или R.S.), либо pVSV208 (конкурирующий штамм обозначен как Comp. Strain или C.S.), в...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 млРыбак05-408-129 
Многоканальный дозатор объемом 10 мкл   
Многоканальный дозатор объемом 100 мкл   
Многоканальный дозатор объемом 300 мкл   
Одноканальный дозатор объемом 10 мкл   
Одноканальный дозатор объемом 20 мкл   
Одноканальный дозатор объемом 200 мкл   
Одноканальный дозатор объемом 1000 мкл   
24-луночные планшетыРыбак07-200-84стерильный с крышкой
Пластины ПетриРыбакFB0875713стерильный с крышкой
Стартер TipOne 0,1-10 мклСША Сайентифик1111-350010 стоек
Стартер TipOne 200 мклСША Сайентифик1111-50010 стоек
Стартер TipOne 1000 мклСША Сайентифик1111-252010 стоек
LBS медиа
1М Трис Буфер (pH ~7,5)  50 мл 1 М буфер (62 мл HCl, 938 мл деионированной воды, 121 г основания Trizma)
АгарТехнический фишерДФ0812-17-915 г (Добавить только для тарелок)
Деионизионная вода  950 мл
Хлорид натрияРыбакС640-320 г
ТриптонРыбакBP9726510 г
Дрожжевой экстрактРыбакБП9727-25 г

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи