Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Острого инфаркта миокарда у крыс

54.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/2464

⸱

16 февраля 2011 г.

 ,  ,  ,  , 
1Department of Internal Medicine, Division of Cardiology, University of Texas Medical Branch, 2Department of Pharmacological and Pharmaceutical Sciences, College of Pharmacy, University of Houston (UH), Texas Medical Center

В этой статье

Краткое содержание

Крысиной модели острого инфаркта миокарда (ОИМ) полезен для изучения последствий МИ на сердечную патофизиологические и физиологические функции.

Аннотация

Поскольку сердечная недостаточность является ведущей причиной смерти в США (Hunt), биомедицинские исследования имеют фундаментальное значение для совершенствования методов лечения сердечно-сосудистых заболеваний. Животные модели, имитирующие заболевания сердца у человека, такие как инфаркт миокарда (MI) и ишемия-реперфузия (IR), вызывающие сердечную недостаточность, а также перегрузка давлением (поперечное сужение аорты), вызывающая гипертрофию миокарда и сердечную недостаточность (Goldman and Tarnavski), являются полезными моделями для изучения сердечно-сосудистых заболеваний. В частности, ишемия миокарда (MI) является основной причиной сердечно-сосудистой заболеваемости и смертности, несмотря на контроль определенных факторов риска, таких как артериосклероз, и лечение с помощью хирургического вмешательства (Thygesen). Кроме того, острая потеря миокарда после ишемии миокарда (MI) приводит к увеличению нагрузки, что вызывает желудочковое ремоделирование пограничной зоны инфаркта и удаленного неинфарктного миокарда. Апоптоз and некроз миоцитов и результирующая повышенная гемодинамическая нагрузка активируют множество биохимических внутриклеточных сигнальных путей, что инициирует дилатацию ЛЖ, гипертрофию, изменение формы желудочка и формирование коллагенового рубца. Это патологическое ремоделирование и невозможность нормализовать повышенное напряжение стенок приводят к прогрессирующей дилатации, вовлечению миокарда пограничной зоны в рубец и, в конечном итоге, к ухудшению сократительной функции миокарда (т. е. к сердечной недостаточности). Прогрессирование дисфункции ЛЖ и сердечной недостаточности у крыс схоже с тем, что наблюдается у пациентов, перенесших обширный инфаркт миокарда, выживших и впоследствии развивших сердечную недостаточность (Goldman). Модель острого инфаркта миокарда (AMI) у крыс используется для имитации сердечно-сосудистых заболеваний человека; в частности, она применяется для изучения механизмов сердечной сигнализации, связанных с сердечной недостаточностью, а также для оценки эффективности терапевтических стратегий лечения сердечной недостаточности. Метод, описанный в данном отчете, представляет собой модель острого инфаркта миокарда (AMI) у крыс. Эта модель также называется острой ишемической кардиомиопатией или ишемией с последующей реперфузией (IR); она индуцируется острым 30-минутным периодом ишемии путем лигирования левой передней нисходящей артерии (LAD) с последующей реперфузией ткани путем снятия лигатуры с LAD (Vasilyev and McConnell). Данный протокол сосредоточен на оценке размера инфаркта и зоны риска (AAR) с помощью красителя Эванса и трифенилтетразолия хлорида (TTC) после 4 часов реперфузии; также представлены дополнительные комментарии по оценке функции сердца и ремоделированию путем изменения продолжительности реперфузии. В целом, эта модель AMI на крысах полезна для изучения последствий инфаркта миокарда для патофизиологической и физиологической функции сердца.

Протокол

1. Подготовка рабочей зоны

  1. Рабочей поверхности сначала подготовленную дезинфекции области с 70% этанола.
  2. Все хирургические инструменты должны стерилизоваться горячей бусинка стерилизатор до операции (а в отдельных операций между крысой). Эти инструменты включают в себя: хирургическое ножницы (2), щипцы (1), изогнутые щипцы (1), иглодержатель (2), и грудь rectractor.
  3. Марлевые хлопок и аппликаторы должны быть доступны для того, чтобы управлять кровотечением.
  4. Отрегулируйте температуру теплокровных системы одеяло (грелку), который будет использоваться для поддержания температуры тела животного при температуре 37 ± 1 ° C, для того, чтобы предотвратить резкое падение температуры тела; размер инфаркта зависит от Длительность окклюзии, а температура тела (Tarnavski и соавт.).
  5. Перед наркозом, каждое животное получит дозу бупренорфина (0.1-2.5 мг / кг SQ) и carprofen устные таблетки (Римадил, Bioserv таблетки, 1 таблетка) за день до операции. В то время, непосредственно перед началом операции, каждое животное будет снова получить дозу бупренорфина (0.1-2.5 мг / кг SQ).
  6. Примечание: для исследований, связанных с оценкой функции сердца и ремоделирования сердца в течение определенного периода времени (7 - 28 дней и за ее пределами), доза бупренорфина (0.1-2.5 мг / кг SQ) будет управляться, каждые 6 часов после операции в течение 24-48 часов после операции и carprofen оральных таблеток будет предоставляться один раз в день (см. "послеоперационной реабилитации").

2. Подготовка и интубации крыс

  1. До введения анестезии, животные будут рассмотрены с целью выявления любых уже существующих условий, которые могут усложнить хирургического результата; медицинский осмотр будет включать в себя визуальный осмотр и измерение частоты сердечных сокращений, частоту дыхания и температуру тела и массы тела.
  2. Если животные полны решимости быть здоровым, 250-300 грамм крыс-самцов (например, Sprague Dawley) будет взвешен и определение характеристик будут записаны.
  3. Крысы, то под наркозом с 80 мг / кг фенобарбитала; правильный уровень анестезии проверяется с помощью вывода ответа конечности, применяя давление кровати крысы ногтей (носок-пинча рефлекс) и периодически в течение всей процедуры.
  4. Бупренорфин (0.1-2.5 мг / кг; SQ) будет проводиться во время операции.
  5. Бритва электрическая затем используется для бритья меха форме шеи и груди областях. Примечание: для исследований, связанных с оценкой функции сердца и ремоделирования сердца в течение определенного периода времени (7 - 28 дней и за ее пределами), мех должен быть полностью бритая от хирургической области для сохранения стерильности.
  6. Бритая областях должны быть вымыты и продезинфицированы с бетадин решение следует вытирая области с 70% спирта, это бетадин и кустарников алкоголя и дезинфекции процедура повторяется три раза.
  7. Наркозом животного помещается в лежачем положении на теплокровных системы одеяло (грелку) с целью поддержания температуры тела.
  8. Интубация трахеи затем осуществляться сначала тщательно подвергая трахеи, в целях повышения визуализации интубации, сделав 5 мм середины шеи разрез и ретракция мышечных тканей, чуть выше трахеи.
  9. Это позволяет лучше визуализации для введения эндотрахеальной трубки (полиэтилен размер 90, ПЭ 90), где трубка скошенной по краю для удобства входа через гортань.
  10. Эндотрахеальная трубка вводится в трахею, с визуализацией помогают с помощью операционного микроскопа стерео, путем тщательного манипулирования языком во время просмотра трахеи и вход эндотрахеальной трубки.
  11. Механическая вентиляция, то возможен благодаря подключению к эндотрахеальной трубки в Кент Научно вентилятор (ТОПО Dual Mode), езда на велосипеде на 80 вдохов в минуту, дыхательный объем в 1,2 мл на 100 грамм веса тела.
  12. Стерильной драпировки помещается над крысой, оставив только хирургическое площадь воздействия, что позволяет минимизировать возможное загрязнение во время операции.
  13. Хирург животных и помощники носить маску, халат и перчатки, не снимая перчаток изменяется между отдельными операции крысы.

3. Переходные левой передней нисходящей (LAD) артерии Лигирование

  1. Как только устойчивый дыхания установлено, грудь открыта в левой четвертом межреберье, с помощью hemostats или круглые ножницы конца, чтобы открыть пространство, но без разреза тканей, так что риск кровотечения может быть снижена.
  2. Грудь втягивающим затем позиционируется в четвертом межреберье, с целью распространения ребра так, чтобы левого желудочка (ЛЖ) подвергается, беря максимальное стараясь не повредить легкие.
  3. Перикард, затем открывается, но остается на месте, если это возможно.
  4. Проксимальной левой передней нисходящей (LAD) артерии будут определены (рис.-1), с использованием в качествеurgical микроскоп стерео, и LAD затем временно лигируют (или может быть связана с удавкой), используя 6-0 проленовой шва на 30-минутном периоде ишемического (рис.-1), но без экстериоризации сердце.
  5. Чтобы разрешить сердечной реперфузии, микрохирургические ножницы для резки узел лигатуры (или, выпустив Slipknot), сделанные 6-0 проленовой шва, 30-минут после перевязки ЛАД.
  6. В фиктивный крыс контроля, процедура идентична, за исключением ЛАД не временно лигировали.
  7. Отток затем кратко (1-2 секунды) ущипнул прочь на респиратор, чтобы повторно инфляции легких.
  8. Грудь втягивающим затем удаляется и ребра взяты вместе, используя 2-0 проленовой шва с прервано швом узор.
  9. Как только ребра закрыты, отток вентилятор вновь кратко (1-2 секунды) ущипнул от обеспечения правильного дыхания.
  10. Кожа закрыт с помощью 6-0 проленовой шва с непрерывным швом узор.

4. Подтверждение успешного Лигирование артерии LAD

  1. Правильное перевязки ЛАД будет подтверждена путем наблюдения побледнение ткани миокарда дистальнее шов, а также дисфункция передней стенки; как это наблюдалось в течение переходного перевязки ЛАД.
  2. Реперфузии будет проверено возвращение красный цвет ткани миокарда и демонстрация некоторых восстановление движения передней стене, как это наблюдалось сразу после перевязки переходных ЛАД.
  3. Примечание: для исследований, связанных с оценкой функции сердца и ремоделирования сердца в течение определенного периода времени (7 - 28 дней и за ее пределами), эхокардиография будут выполняться 24-часов после ЛАД труб, для того, чтобы определить степень индуцированной инфаркта миокарда. Все животные с левого желудочка фракции укорочения (LV FS) <20%, определяемая по эхокардиографии, а также передние движения стенки в соответствии с дисфункцией миокарда, будут определены и используются для последующей сердечной функции и реконструкции исследований. Шам контрольных крыс должны иметь нормальные LV FS между 40-45% (-дель-Монте и др.).

5. Послеоперационной реабилитации

  1. Как только операция завершится, стерильные драпировать над животным будут удалены. Температура тела (по ректального термометра), частота дыхания (при визуальном осмотре), частота сердечных сокращений (на учащенное сердцебиение), и аномальные признаки боли, подлежат надзору, пока животное становится амбулаторно.
  2. Крыса будет удален из вентилятора, а затем поместить в клетку животного и позволили, чтобы оправиться от наркоза. В этой клетке, один конец клетки будут согреты грелку, чтобы крысы искать тепло. Кроме того, вода будет доступна для крыс в течение этого периода наблюдения.
  3. Если признаки обезвоживания наблюдается после операций, 0,5 мл стерильного физиологического раствора будет внутрибрюшинно (IP).
  4. Бупренорфин (0.1-2.5 мг / кг; SQ) будет вводиться сразу после операции, а во время послеоперационного восстановления.
  5. Примечание: для исследований, связанных с оценкой функции сердца и ремоделирования сердца в течение определенного периода времени (7 - 28 дней и за ее пределами), доза бупренорфина (0.1-2.5 мг / кг SQ) будет управляться, каждые 6 часов после операции в течение 24-48 часов после операции. Carprofen устные таблетки (Римадил, Bioserv таблетка) также будет оказана (1-таблетке в день) в течение 48-часов после операции.

6. Гистологическая оценка ишемией

  1. После завершения 4-часовой период реперфузии, крысы должны быть под наркозом снова с 80 мг / кг фенобарбитала и LAD лигируют еще раз (или удавкой можно retied) (Huang и др. и Kaiser и др.).
  2. 1 мл 5% Синий Эвана (в фосфатно-солевой буфер), затем вводят в правый желудочек и камеры разрешено заливать для 2-х минут.
  3. После 2-минут, 1 мл насыщенного раствора хлорида калия, затем вводится в правую камеру желудочка, чтобы остановить сердце от побоев.
  4. Сердце затем быстро вырезали, встроенные в 2% агарозном фосфатным буферным раствором, а затем секционного в 1-2 мм кубиков.
  5. Жизнеспособного миокарда затем окрашивали 2% хлорида трифенил тетразолия (ТТК) в течение 20-минут и изображения каждого среза в плен. Изображения затем количественно для того, чтобы определить количество инфарктов области: (1), который не высокого риска (синие участки), (2) область высокого риска (AAR, красные и белые участки), и (3 ) области, которая является инфаркта (белый "неокрашенных" разделов) (рис.-2).

7. Представитель Результаты

Для исследований, связанных с оценкой размера инфаркта и область высокого риска (AAR), синим красителем Эванса и трифенил хлорида тетразолия (ТТК), после 4-часовой реперфузии, правильная перевязка ЛАД может быть подтвержденопутем наблюдения побледнение ткани миокарда дистальнее шов, а также дисфункция передней стенки; как это наблюдалось в течение переходного перевязки ЛАД. Реперфузии может быть проверена путем возвращения красный цвет ткани миокарда и демонстрация некоторых восстановление движения передней стене; наблюдается сразу после перевязки переходных ЛАД. Для исследований, связанных с оценкой функции сердца и ремоделирования сердца в течение определенного периода времени (7 - 28 - дней, и за его пределами), правильная перевязка ишемии реперфузии следует также может быть подтверждено побледнение ткани, дисфункция передней стенке и возвращение красного цвета с некоторым восстановлением движения стенки после реперфузии. Кроме того, нарушения сердечной функции может быть определена эхокардиография выполняется 24-часов после ЛАД труб, для того, чтобы определить степень индуцированной инфаркта миокарда. Все животные с левого желудочка фракции укорочения (LV FS) <20%, определяемая по эхокардиографии, а также передние движения стенки в соответствии с дисфункцией миокарда, будут определены и используются для последующей сердечной функции и реконструкции исследований. Шам контрольных крыс должны иметь нормальные LV FS между 40-45% (-дель-Монте).

Рисунок 1
Рисунок 1. Принципиальная схема инфаркта миокарда и LAD труб. Принципиальная схема (1) инфаркт миокарда и (2) перевязка левой передней нисходящей желудочка (LAD) артерии использованием шва, используемые для имитации инфаркта миокарда, вызванного чумой образования.

Рисунок 2
Рисунок 2. Представителю изображения из сердца крысы после ОИМ. Представитель образ сердца крысы показывающий область, в синей (без окклюзии коронарной перфузии область), площадь в красном (окклюзии коронарной перфузии области выделяется область высокого риска (AAR) для миокарда, и области в белый / желтый (зона инфаркта в AAR).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Острый инфаркт миокарда (ОИМ) у крыс, также известный как ишемия-реперфузия (ИК), обычно используется для имитации человеческой ремоделирование желудочка приводит к сердечной недостаточности. Прогрессирование дисфункции ЛЖ и сердечной недостаточности на животных моделях (крысы и мыши) аналогична наблюдавшейся в людях, которые поддерживают М.И., выжить, а затем впоследствии развивается сердечная недостаточность (Goldman). Это процедура, описанная одной из версий этой техники, а также содержит дополнительную отмечает, опи...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

BKM поддерживается Национальным институтом здоровья (NIH) / Национальная легкого сердца и крови институт (NHLBI) грант (R01-HL085487). MH поддерживается Американской ассоциации сердца Национальный (AHA) Ученый грантов на цели развития (ГРС) и Общества гериатрической кардиологии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Аппарат ИВЛKent ScientificTOPOTOPO Dual Mode
Термостатический циркулятор E103Harvard Apparatus732802
Система гомеотермического одеялаHarvard Apparatus55-7222F
СтереомикроскопNikon InstrumentsMMA36300Зум-стереомикроскоп SMZ-645
Стерилизатор с раскаленными шарикамиHarvard Apparatus610183
ЭлектробритваGE Healthcare
Лезвия и рукояткиWelch Allyn690047-1Стандартные (ламповые) клинки ларингоскопа
Хирургические ножницыFine Science Tools14014-17
Хирургические ножницыFine Science Tools14072-10
ПинцетFine Science Tools11028-15
Изогнутый пинцетFine Science Tools11001-12
ИглодержательFine Science Tools12004-18
ИглодержательFine Science Tools91201-13
Грудной ретракторFine Science Tools17008-07
МаскиVWR international47730-640
Марлевые салфеткиDermacea441205
Стерильные перчаткиCardinal Health2D7203I
Трубки PE 90BD Biosciences427420
Шприц 20 mlBD Biosciences301625
Шовный материал Prolene 6-0Ethicon Inc.8706H
Шовный материал шелковый 2-0Ethicon Inc.K873H
Пентобарбитал натрия для инъекцийOVATION PharmaceuticalsNDC 67386-501-55
Повидон-йодNOVAPLUSV10-8204
БупренорфинPharmaceuticals Inc.NDC 12496-0757-1

Ссылки

  1. Hunt, S. A., Baker, D. W., Chin, M. H., Cinquegrani, M. P., Feldmanmd, A. M., Francis, G. S., Ganiats, T. G., Goldstein, S., Gregoratos, G., Jessup, M. L., Noble, R. J., Packer, M., Silver, M. A., Stevenson, L. W. SC.ACC/AHA Guidelines for the Evaluation and Management of Chronic Heart Failure in the Adult: Executive Summary A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines (Committee to Revise the 1995 Guidelines for the Evaluation and Management of Heart Failure). Circulation. 104, 2996-3007 (2001).
  2. Goldman, S., Raya, T. E. Rat infarct model of myocardial infarction and heart failure. J Card Fail. 1, 169-177 (1995).
  3. Tarnavski, O., McMullen, J. R., Schinke, M., Nie, Q., Kong, S., &, I. zumo, S, Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies. Physiol Genomics. 16, 349-360 (2004).
  4. Thygesen, K., Alpert, J. S. Universal Definition of Myocardial Infarction. Circulation. 116, 2634-2653 (2007).
  5. Vasilyev, N., Williams, T., Brennan, M. L., Unzek, S., Zhou, X., Heinecke, J. W., Spitz, D. R., Topol, E. J., Hazen, S. L., Penn, M. S. Myeloperoxidase-generated oxidants modulate left ventricular remodeling but not infarct size after myocardial infarction. Circulation. 112, 2812-2820 (2005).
  6. McConnell, B. K., Popovic, Z., Mal, N., Lee, K., Bautista, J., Forudi, F., Schwartzman, R., Jin, J. P., Penn, M., Bond, M. Disruption of protein kinase A interaction with A-kinase-anchoring proteins in the heart in vivo: effects on cardiac contractility, protein kinase A phosphorylation, and troponin I proteolysis. J Biol Chem. 284, 1583-1592 (2009).
  7. Monte, D. el, Butler, F., Boecker, K., Gwathmey, W., K, J., Hajjar, R. J. Novel technique of aortic banding followed by gene transfer during hypertrophy and heart failure. Physiol. Genomics. 9, 49-56 (2002).
  8. Huang, M. H., Nguyen, V., Wu, Y., Rastogi, S., McConnell, B. K., Wijaya, C., Uretsky, B. F., Poh, K. K., Tan, H. C., Cheng, J., Perin, E., Fujise, K. Synergistic Infarct Size Reduction by Combination Therapy with Milrinone and Esmolol at Early Reperfusion during Acute Myocardial Infarction. American Journal of Physiology. , Forthcoming Forthcoming.
  9. Kaiser, R. A., Bueno, O. F., Lips, D. J., Doevendans, P. A., Jones, F., Kimball, T. F., Molkentin, J. D. Targeted inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase antagonizes cardiac injury and cell death following ischemia-reperfusion in vivo. J Biol Chem. 279, 15524-15530 (2004).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Острого инфаркта миокарда у крыс
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.