ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого протокола необходимо использовать подходящий вектор экспрессии млекопитающих. Здесь используется одна конструкция, содержащая две кассеты экспрессии (т.е. экспрессия тяжелой и легкой цепи управляется отдельными промоторами). Тяжелые и легкие цепи трастузумаба ранее клонировались в переносчик. Этот вектор был подарком от Эндрю Бивила, полученным через некоммерческое хранилище плазмид
.
1. Восстановление и масштабирование векторной ДНК
ПРИМЕЧАНИЕ: Векторная ДНК была получена в виде мягкой агаровой стаб-культуры в штамме Escherichia coli XL-1 Blue; вектор обладает устойчивостью к гигромицину.
- Вставьте стерильный инокуляционный кол или петлю в мягкий агар посевной культуры, затем прорежьте агаровую пластину Luria Bertani (LB), приготовленную с гигромицином 75 мкг/мл для изолированных колоний. Инкубируйте планшет при температуре 37 °C в течение 18-24 часов.
- Введите одну колонию в 5 мл отвара Terrific (TB), содержащего 75 мкг/мл гигромицина. Инкубировать культуру при 37 °C в течение 18-24 часов с встряхиванием при 225 об/мин.
- Используйте ночную культуру для получения глицеринового запаса векторной ДНК, аккуратно смешав 800 мкл культуры с 200 мкл 80% глицерина в криовиале и заморозьте при -80 °C.
- Добавьте 100 мкл ночного посева к 100 мл ТБ, содержащему 75 мкг/мл гигромицина, в колбе с перегородкой (т.е. разведение 1/1000). Инкубировать культуру при 37 °C в течение 18-24 часов при встряхивании со скоростью 225 об/мин.
- После ночного культивирования извлеките и очистите дезоксирибозную нуклеиновую кислоту (ДНК) в соответствии с инструкциями производителя для набора для препарата миди/макси, за следующим исключением: на заключительном этапе элюируйте или ресуспендируйте ДНК водой (pH 7,0-8,5).
- Проверьте концентрацию и чистоту ДНК по показаниям абсорбции при 260 и 280 нм, затем сохраните ДНК при температуре -20 °С. <бр/>
ПРИМЕЧАНИЕ: Необязательно (настоятельно рекомендуется): Секвенирование ДНК с использованием векторно-специфичных праймеров для подтверждения идентичности.
2. Стабильная трансфекция клеток HEK-293
- Выращивание и поддержание клеток HEK-293 (суспензионных клеток) в соответствии со стандартными протоколами в бессывороточных средах с добавлением 0,1% неионогенного поверхностно-активного вещества в колбах Эрленмейера. Поддерживайте в концентрации 2 x 105 клеток/мл и субкультуру каждый четвертый день. Культивирование клеток при 37 °C с 5% углекислым газом (CO2) и вращением 120 об/мин.
Примечание: Клетки должны находиться в культуре не менее 4 дней и не более 4 недель до трансфекции. Для этой процедуры также можно использовать клетки HEK-293, выращенные в виде монослоев в сывороткосодержащих средах.
- За день до трансфекции засейте клетки HEK-293 в концентрации 3 x 105 клеток/мл в лунки 12-луночного планшета в 2 мл модифицированной орлиной среды (DMEM) от Dulbecco с добавлением 10% инактивированной при нагревании фетальной бычьей сыворотки (FBS). В день трансфекции убедитесь, что клетки достигли 80-90% конфлюенции
- Разведите ДНК и полиэтиленимин (ПЭИ) отдельно в трансфекционной среде, а затем смешайте их вместе.
- Развести 1,25 мкг векторной ДНК на лунку (15 мкг на 12 лунок) в 300 мкл трансфекционной среды. Выдерживать при комнатной температуре в течение 5 минут.
- Развести 2,5 мкл 1 мг/мл раствора ПЭИ (30 мкл на 12 лунок, т.е. соотношение ДНК и ПЭИ 1:2) в 300 мкл трансфекционной среды. Выдерживать при комнатной температуре в течение 5 минут.
- Добавьте разбавленную ДНК к разбавленному PEI, аккуратно перемешайте и инкубируйте при комнатной температуре в течение 15 минут.
- Добавьте по 50 мкл смеси ДНК/ПЭИ по каплям в каждую лунку планшета. Осторожно покачайте пластину, чтобы распределить трансфекционную смесь, затем поместите пластину при температуре 37 °C, 5%CO2 на 24 часа.
- Добавьте 50 мкг/мл гигромицина В на лунку и верните планшет до 37 °С, 5%СО2 на 10 дней.<бр/>
Примечание: К 10-му дню нетрансфицированные клетки умирают и отделяются от поверхности пластины, в то время как стабильно трансфицированные клетки становятся жизнеспособными и прикрепляются к пластине.
- Замените среду в лунках на 1/4 объема бессывороточной среды и 3/4 объема DMEM с добавлением 10% FBS (т.е. 0,5 мл бессывороточной среды + 1,5 мл DMEM = 7,5% конечной концентрации сыворотки) и инкубируйте в течение 4 дней.
- Замените среду в лунках на 1/2 объема бессывороточной среды и 1/2 объема DMEM с добавлением 10% FBS (т.е. 1 мл бессывороточной среды + 1 мл DMEM = 5% конечной концентрации сыворотки) и инкубируйте в течение 4 дней.
- Замените среду в лунках на 3/4 объемной бессывороточной среды и 1/4 объема DMEM с добавлением 10% FBS (т.е. 1,5 мл бессывороточной среды + 0,5 мл DMEM = 2,5% конечной концентрации сыворотки) и инкубируйте в течение 4 дней.
- Замените среду в лунках 2 мл бессывороточной среды с добавлением 0,1% неионогенного поверхностно-активного вещества (т.е. 0% конечной концентрации сыворотки) и инкубируйте в течение 4 дней.
ПРИМЕЧАНИЕ: Поддерживайте селективное давление гигромицина B 50 мкг/мл на клетки во время бессывороточной адаптации. Клетки, адаптированные к бессывороточным средам, отделяются от поверхности лунок и могут группироваться во взвешенном состоянии. Обратитесь к шагу 2.1 для условий культивирования с дополнительной добавкой гигромицина В в дозе 50 мкг/мл.
- С помощью пипетки аккуратно перемешайте суспензионные культуры в 12-луночном планшете и ячейках пула в отдельную пробирку.
- С помощью гемоцитометра перечислите объединенные клетки и семена в 30 мл бессывороточной среды в колбе Эрленмейера со скоростью 2 x 105 клеток/мл. Культивируйте клетки при 37 °C с 5% CO2 и вращением 120 об/мин. Субкультура и расширяется с каждым четвертым днем.
- Продолжайте увеличивать размер культуры до необходимой плотности клеток для получения 10 флаконов по 1 х 10 7 клеток/флакон для криоконсервации в жидком азоте. Заморозьте клетки в бессывороточной среде, содержащей 10% диметилсульфоксида (ДМСО).
ПРИМЕЧАНИЕ: Кондиционированные среды, содержащие антитела, могут быть собраны в каждой субкультуре для подтверждения выработки белка или использованы для оптимизации условий очистки. Для сбора кондиционированной среды и поддержания клеток для субкультуры культуру центрифугируют при 300 x g в течение 5 мин, затем фильтруют-стерилизуют надосадочную жидкость через фильтр 0,22 мкм. Отфильтрованный надосадочный продукт можно хранить при температуре 4 °C в течение 1-2 недель или при температуре -20 °C при более длительном хранении.
3. Крупномасштабное производство антител из культуры периодического зарастания
ПРИМЕЧАНИЕ: Производство антител можно продолжить, начиная с шага 2.11, где существующие клетки расширяются до требуемой плотности клеток в зависимости от объема культуры зарастания партии, который необходимо установить. В противном случае клетки, которые были разморожены в результате криоконсервации, начинают на этой стадии после расширения до соответствующей плотности и объема. Для оптимизации выработки антител можно использовать различные питательные добавки; Использование триптона для увеличения выхода антител продемонстрировано в этом протоколе.
- Затравочные клетки в концентрации 2 x 105 клеток/мл в 100 мл бессывороточной среды в двух колбах Эрленмейера (для сравнения выходов антител из культур без добавок и культур с добавлением питательных веществ). Культивировать при 37 °C, 5%CO2 и 120 об/мин.
- Через 24 часа добавьте триптон до конечной концентрации 0,5% к культуре, обогащенной питательными веществами. Выровняйте объем необогащенной культуры с помощью среды, не содержащей сыворотки.
- Начиная с 8-го дня, ежедневно проводите подсчет клеток культур с помощью гемоцитометра для контроля жизнеспособности клеток. Собирайте надосадочную жидкость культуры, когда жизнеспособность клеток составляет менее 80%.
- Соберите надосадочную жидкость путем центрифугирования культур при давлении 3000 x g в течение 15 мин, затем отфильтруйте и стерилизуйте надосадочную жидкость (содержащую антитела) через фильтр 0,22 мкм. Надосадочную жидкость хранить при температуре 4 °C (кратковременно) или заморозить при температуре -20 °C (долго).