Методическая статья

Визуализация и картирование метокси-X04-меченых амилоидных бляшек в отделе мозга мыши, больном болезнью Альцгеймера

29 мая 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Бишт, К., et. al. Корреляционная световая и электронная микроскопия для изучения взаимодействия микроглии с β-амилоидными бляшками. J. Vis. exp. (2016)

Это видео демонстрирует визуализацию и картирование метокси-X04-меченых амилоидных бляшек в мозге мышей при болезни Альцгеймера срезы с использованием флуоресценции и светлопольной микроскопии, что позволяет точно соотнести бляшки с анатомическими структурами для изучения патологии болезни Альцгеймера.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.

1. Скрининг участка на наличие метокси-x04-окрашенных бляшек

  1. С помощью стереотаксического атласа мозга мыши выберите участки мозга, содержащие интересующую область, например, гиппокамп CA1, как это используется в настоящем примере. Поместите каждую секцию в лунку внутри 24-луночной культуральной тарелки, содержащей достаточное количество раствора криопротектора, чтобы предотвратить высыхание секций.
  2. Осмотрите каждый срез последовательно, чтобы избежать пересыхания срезов, используя следующую процедуру:
    1. } Добавьте каплю фосфатно-солевого буфера (PBS) на предметное стекло микроскопа с помощью одноразовой пипетки и поместите срез на каплю.
    2. Изучите срез под флуоресцентным микроскопом, чтобы выявить участки, содержащие метокси-X04, меченные Aβ бляшками.
      Примечание: метокси-X04 можно легко визуализировать с помощью флуоресцентного ультрафиолетового (УФ) фильтра (возбуждение 340 - 380 нм).
  3. Получение изображений областей интереса (ROI) в светлом поле, а также в флуоресцентном режиме без перемещения предметного столика микроскопа, поскольку каждое изображение должно показывать одну и ту же область в обоих полях, чтобы соотнести наличие бляшек непосредственно со структурной областью участка ткани.
  4. Сохраните и назовите сделанные снимки в соответствии с номером животного. Также запишите номер колодца на табличке и поле для сделанных фотографий. Например, Пример: 9978A1B; Номер животного: 9978; Номер скважины: А1; Поле: Яркое. После завершения визуализации поместите секцию обратно в предназначенную для нее лунку.
    Примечание: В конце концов, для каждого рассмотренного участка получаются две картинки, одна в светлом поле, а другая в ультрафиолетовом поле.
  5. Откройте два изображения с одинаковым ROI (одно в светлом поле, а другое в поле UV) в Image J и с помощью плагина MosaicJ выровняйте края двух изображений и сохраните выровненное и объединенное изображение в соответствии с номером ячейки, из которой оно было получено.
  6. Сохраните картинку в отдельной папке с номером конкретного животного. Объедините изображения, чтобы идентифицировать и локализовать бляшки в срезе ткани и получить полное представление обо всем срезе в двух разных полях (ярком и ультрафиолетовом).
  7. После завершения процесса скрининга исследуемые срезы хранят при температуре -20 °C в 24-луночном культуральном планшете, содержащем криопротектор, до проведения иммуноокрашивания или дальнейшей обработки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Methoxy-X04Tocris Bioscience492010 мг субстрата на таблетку
Microscope SlidesFisher Scientific12-550-15
24-луночные планшеты для культуры тканейFisher Scientific353047 <
ЭтиленгликольFisher BioReagentsBP230-4
GlycerinFisher BioReagentsBP229-4
tr style='height:21px;'>

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи