Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение и культуры крысы эмбриональных нервных клеток: Быстрый протокол

39.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/3965

⸱

24 мая 2012 г.

 , 

В этой статье

Краткое содержание

Мы описываем методологию быстрой, чтобы изолировать и культуры гиппокампе и коре нейроны от грызунов эмбрионов. Этот протокол позволяет проводить эксперименты, в которых почти чистой культуры нейронов не требуется.

Аннотация

Мы описываем быстрый способ отделить и культуры гиппокампа и коры нейроны от E15-17 крысиных эмбрионов. Эта процедура может быть успешно применен для выделения мышиных и человеческих первичных нейронов и нейронных предшественников. Диссоциированных нейронов поддерживается в бессывороточной среде до нескольких недель. Эти культуры могут быть использованы для nucleofection, иммуноцитохимия, нуклеиновых кислот подготовки, а также электрофизиологии. Пожилые нейронов культуры можно трансфекции с хорошей скоростью эффективность лентивирусов трансдукции и менее эффективно, с фосфатом кальция или на основе липидов такие методы, как липофектамина.

Протокол

1. Поли-D-лизин (PDL): Подготовка

  1. Добавьте 5 мл стерильной DDH 2 O 5 мг PDL для получения маточного раствора 1 мг / мл.
  2. Смешайте маточного раствора с помощью пипетки несколько раз.
  3. Используйте сразу или хранить поли-D-лизин решения при температуре 2-8 ° C.

2. Поли-D-лизин (PDL): Покрытие пластиковой посуды культуре клеток

  1. Развести PDL маточного раствора стерильной DDH 2 O в конечной концентрации 10 мкг / мл.
  2. Внесите достаточно раствора в 60 мм блюдо для покрытия культуры поверхности (3 мл на 60 мм блюдо).
  3. Рок осторожно, чтобы обеспечить ровное покрыт....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Метод вскрытия и культуры гиппокампа крыс и корковых нейронов описаны здесь позволяет проводить эксперименты с использованием почти чистый нейронных культур, выращенных в химически определенной среде (рис. 3). Хотя протоколы для культивирования почти чистый нейронов в сыворотке крови, свободные средства массовой информации были ранее описаны 2,3,4, есть важные изменения, внесенные в наш метод. В отличие от традиционных протоколов (например, банкир и др.). 5, мы заменили трипсина с .......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Мы благодарим Jonna Ellis за помощь в редактировании. Проект описан была поддержана премии Количество R01MH079751 (PI: Ф. Перуцци) из Национального института психического здоровья. Содержания несут их авторы и не обязательно отражает официальную точку зрения Национального института психического здоровья и Национального института здоровья.

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Реагент Концентрация
Neurobasal 98%
B27 2%
Glutamax 0,5 мМ

Таблица I. Neurobasal/B27 полной среде.

Реагент Концентрация
Глюкоза 16 мм
Сахароза 22 мм
HEPES 10 мМ
NaCl 160 мМ
KCl 5 мМ
Na 2 HPO 4 1 мМ
KH 2 PO 2 0,22 мм
Гентамицин 50 мкг / мл
Fungizone 250 нг / мл
рН 7,4
Осмолярность 320-330 мОсм

Таблица II. Вскрытие среды.

Реагент Объем (мкл)
Neurobasal/B27 полной среде 240
Трипановый синевы 0,4% 250
Общий 490

Таблица III. 50x Подсчет решение.

Таблица IV. Специальные реагенты.

Реагент Компания Кат. номер
Hibernate E Brainbits 767171
Neurobasal Gibco, Invitrogen 21103-049
B27 Gibco, Invitrogen 17504-044
Fungizone Gibco, Invitrogen 15290-018
Гентамицина сульфат Sigma Aldrich G1264
Glutamax 200 мМ Gibco, Invitrogen 35050
TrypLE Экспресс без фенола красного Gibco, Invitrogen 12604
Цитозин-β-D-арабинофуранозида гидрохлорид Sigma Aldrich C6645
Поли-D-лизин Sigma Aldrich P6407
Ламинин 1 мг / мл Millipore CC095
HEPES Sigma Aldrich H3375
Трипановый синевы 0,4% Gibco, Invitrogen 15250
Оборудование Компания Кат. номер
Стерео микроскоп Олимп SZ61
Большие щипцы FST 11022-14
С острым концом щипцов Мория MC40B
Micro острым концом щипцов Мория MC31
Razor-острыми ножницами Roboz RS-6820
Micro Анатомический ножницы FST 91460-11
Micro Анатомический изогнутые ножницы FST 14067-11
Стекло 2-камерные слайды Лаборатория-Tek 154461
60 мм блюда BD Сокол 353002
100 мм блюда Гранулирование 430167
15 мл труб BD Сокол 352099
1,5 мл крио-трубка флакон Nunc 375353

Таблица V. Специальное оборудование.

Ссылки

  1. Aprea, S. Tubulin-mediated binding of human immunodeficiency virus-1 Tat to the cytoskeleton causes proteasomal-dependent degradation of microtubule-associated protein 2 and neuronal damage. J. Neurosci. 26, 4054-4062 (2006).
  2. Kivell, B. M., McDonald, F. J., Miller, J. H.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

Изоляция нейроновкультура кортикальных нейроновкультура нейронов гиппокампаэмбриональные нейроны крысыбессывороточная культураферментативное расщеплениепокрытие PDLпокрытие ламининомподсчет клетокнуклеофекция