Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Модели костных метастазов

42.7K просмотров

DOI:

10.3791/4260

4 сентября 2012 г.

В этой статье

Краткое содержание

Животные модели часто используются для изучения раковых метастаз в костях. В этом протоколе мы опишем два распространенных метода инокуляции опухоли для исследования костного метастазирования, и кратко описать некоторые из анализов используются для мониторинга и количественной оценки этих моделей.

Аннотация

Метастазы в костях часто встречаются при различных злокачественных новообразованиях, включая рак молочной железы, предстательной железы и легких. После заселения костной ткани опухоли становятся причиной значительной заболеваемости и смертности1. Таким образом, существует острая необходимость в понимании молекулярных механизмов, контролирующих возникновение, рост и активность опухолей в костях. Для изучения этих процессов было создано несколько моделей in vivo, каждая из которых имеет свои преимущества и ограничения. В наиболее часто используемой модели применяется внутрисердечное введение опухолевых клеток непосредственно в артериальный кровоток атимических (обнаженных) мышей линии BalbC. Эту процедуру можно применять к многим различным типам опухолей (включая рак предстательной железы PC-3, карциному легкого и опухоли жировой подушки молочной железы мыши); однако в данной работе мы сосредоточимся на модели рака молочной железы MDA-MB-231. В этой модели мы используем высокоселективный к костной ткани клон, первоначально полученный в группе доктора Мунди в Сан-Антонио2, который впоследствии был трансфектирован для экспрессии GFP и повторно клонирован нашей группой3. Данный клон представляет собой костнометастатический вариант с высокой степенью остеотропности и очень низким уровнем метастазирования в легкие, печень или надпочечники. Хотя внутрисердечные инъекции чаще всего используются для изучения костных метастазов2, в некоторых случаях более подходящими являются внутрибольшеберцовые4 инъекции или введение в жировую подушку молочной железы. Внутрисердечные инъекции обычно проводятся при использовании опухолевых клеток человека с целью мониторинга поздних стадий метастазирования, а именно способности раковых клеток задерживаться в кости, выживать, пролиферировать и формировать опухоли, которые приводят к развитию индуцированного раком заболевания костей. Внутрибольшеберцовые инъекции выполняются, если внимание сосредоточено на взаимодействии раковых клеток и кости после метастазирования опухоли в кость, что примерно соответствует развившемуся метастатическому поражению костей. Ни одна из этих моделей не воспроизводит ранние этапы метастатического процесса, предшествующие эмболии и попаданию опухолевых клеток в кровоток. Если необходимо отслеживать рост первичной опухоли или метастазирование из первичного очага в кость, обычно предпочитают инокуляцию в жировую подушку молочной железы; однако очень немногие линии опухолевых клеток последовательно метастазируют в кость из первичного очага, исключением являются костно-предпочтительные клоны 4T1, представляющие собой карциному молочной железы мыши 5,6.

В данной рукописи подробно описаны процедуры инокуляции и выделены ключевые этапы послеоперационного анализа. В частности, она включает культивирование клеток, процедуры инокуляции опухолевых клеток при внутрисердечном и внутрибольшеберцовом введении, а также краткую информацию о еженедельном мониторинге с помощью рентгенографии, флуоресцентного и гистоморфометрического анализов.

Протокол

1. Сотовые обслуживание

  1. Многие кости метастатического подклонах MDA-MB-231 существуют, которые имеют переменную склонность к колонизации костей и роста. Для наших экспериментов мы используем клон происходит от GFP с метками MDA-MB-231 разработан в UTHSCA 2. Этот конкретный суб-клон образуют видимые остеолитические поражения костей примерно в 3 прививки сообщению недель, с жертвоприношением в течение 4 недель.
  2. Поддерживать клеток в DMEM, содержащей 10% FBS и 0,1 мг / мл пенициллина-стрептомицина при 37 ° С в 5-8% CO 2 7.
  3. Прохождение клеток на 80-90% слияния и повторно пластины при разведении 1:10 (это зависит от типа клеток и размер пластины. Для MDA-MB-231 клеток в Т-75 это примерно 6х10 5), который примерно каждые 72 часа.
  4. MDA-MB-231 поддерживают клеток фибробластов в целом внешний вид с многочисленными псевдоподии. Любой округления свидетельствует о перенаселенности или других нежелательных стрессов, и его следует избегать, так как этоможет повлиять на метастатического потенциала в естественных условиях.
  5. В идеале, клетки должны поддерживаться в культуре только на короткое время перед прививкой (мы рекомендуем менее 1 недели или пока у вас есть достаточное количество клеток для эксперимента), и новый флакон следует разморозить при округлении или изменения в клетке темпы роста происходит.

2. Сотовые подготовка

  1. Trypsinize клеток на 80-90% слияния с 0,15% трипсин / ЭДТА (разбавлять 0,5% Gibco Трипсин EDTA 1:2 в PBS). Такая концентрация позволяет быстро отряда (<2 мин) и уменьшает слипание клеток.
  2. Немедленно снять клеток из пластины с 10 мл ледяной DMEM, содержащей 10% FBS, пипетки на 15 мл коническую трубку и центрифуги при 200 мкг в течение 5 мин.
  3. Ресуспендируют гранул в 50 мл коническую трубку в 25 мл ледяной PBS (без Са и Mg) и считать.
  4. Центрифуга повторно гранул, и ресуспендируют на 10 6 клеток на мл (внутрисердечных) или на 250000 cells/10 мкл (intratibial) в ледяной PBS. Температуратуры ФСБ важно для предотвращения слипания клеток и последующей эмболии после инъекции. Суспензии клеток должны оставаться на льду при выполнении инъекций и будет жизнеспособным и остаются без слипаются в течение 30 мин. Хотя точное число пластин необходимо будет варьироваться от следователя к следователю, мы обычно используем 1 Т-75 по цене от 8-10 мышей.

3. Прививка Внутрисердечные

  1. 4-6 недельных самок (Foxn ню-/ -: Харлан) мышей используют для этих экспериментов, хотя другие с нарушением иммунной системы мышей (RAG1-/ -, RAG2-/ -, SCID, XID, и т.д.) также может быть использованы с человека экспериментов раковых клеток.
  2. Голым мышам следует кормить Teklad 2920x диеты 5-10 дней до инъекции для уменьшения смертности от введения процедуры и сократить фоновой флуоресценции в процедурах томография (так как еда является люцерна бесплатно).
  3. При использовании мыши, кроме ню / ню, удаление волос после бритья или использования Наир (в нашем опыте Nair работает лучше) на вентральной брюшной арEA перед началом процедуры.
  4. Anesthetize мыши в изоляции камеры с использованием изофлурана испаритель (2,5% Iso: 2-3 л / мин O 2) или другим предпочтительным анестезии (в нашем опыте изофлуран лучше переносится внутрисердечных прививки).
  5. Перемещение на одну мышь в то время, в носовой конус из наркоза машину внутри нержавеющая сталь вентилируемый капот.
  6. Поместите каждую мышь на спине, с грудью вверх.
  7. Мыть грудь с 10% повидон / йода тампон / раствором с последующим 70% этанола, повторяя 2 раза.
  8. Все мыши груди для инъекций (с помощью стерильного маркером или маркировка немного в сторону, чтобы сохранить место инъекции стерильными). Мы используем полпути знак расположен между выемкой грудины и верхнюю часть xyphoid процесс, и немного влево (анатомическая) от грудины. Нарисуйте маленький пузырек воздуха в шприц, чтобы создать пространство между поршнем и мениск (важно для видя сердечные импульсы) в 300 мкл 28 г ½ инсулиновый шприц, исоставляет 100 мкл клеток.
  9. Держите иглу в вертикальном положении. Удерживая кожу мыши туго с другой стороны, вставить иглу.
  10. Успешное включение в левый желудочек сердца должны привести различные ярко-красные импульса крови в шприце. На этой глубине, осторожно нажмите поршень шприца (100 мкл), без существенного движения иглы, чтобы избежать прокалывания сердца или разлив клеток в грудной полости.
  11. После клетки вводили, подтянуть немного на поршень, чтобы создать небольшое количество отрицательное давление, чтобы уменьшить капает клеток в грудной полости.
  12. Вытяните иглу прямо из груди, будучи уверены, чтобы избежать наклона иглы во время удаления, которая может разорвать оболочки сердца и вызвать кровотечение.
  13. Применить мягкое давление на грудь на месте инъекции для уменьшения кровотечения.
  14. Удалить мыши из носовой конус и продолжают применять светового давления примерно на 1 мин.
  15. Подведите курсор к грелку до полного консознательной.
  16. Если мышь начинает вращаться или дергаться после восстановления, вероятной причиной является эмболия. Inject мыши intraperitonally с 80-120 мг / кг кетамина, чтобы увеличить поток крови и сердечного выброса при снижении сосудистого сопротивления. Это должно помочь мышь проходит сгусток. После этого происходит, то лучше изменить клеточных препаратов, а это означает, что клетки слипания. Мы меняем клеточных препаратов примерно через 8 мышей, или 30 мин.

4. Intratibial

  1. Inject мыши с Buprenex (0,1 мг / кг) или аналогичные утвержденной обезболивающего непосредственно перед процедурой.
  2. Anesthetize мыши, используя изофлуран, а затем перейти к носовой конус и поддержания анестезии.
  3. Очистите обе ноги с 10% повидон / йода тампон / раствор, а затем этанолом, повторять 2 раза. Депилировать ног (с Наир или аналогичного продукта) перед очисткой, если мех присутствует.
  4. Аккуратно понять латеральной лодыжки, медиальной лодыжки и нижней половины голени с большим и указательным йUMB, затем согните ноги (сочетание сгибания и боковое вращение, так что колено видна и доступна.
  5. Смочите кожу с 70% этанола, чтобы увеличить видимость, лежащие в основе связки коленной чашечки, которая должна быть видна как отдельное, толстая, белая линия. В то время как крепко держа лодыжки / ног мыши вставки 28g ½ иглы под коленную чашечку, до середины коленной связки, а в передней межмыщелковое в верхней части голени.
  6. При установке иглы в кость, руководство внимательно за счет роста пластины с использованием устойчивой, твердой давления с небольшим действием бурения.
  7. После проникновения большеберцовой пластины роста, игла встретит заметно меньшим сопротивлением.
  8. Используйте мягкое, боковое движение иглы для обеспечения игла находится в голень и за счет роста пластины. Движение будет ограничено, если игла находится в нужном месте в голени.
  9. Медленно нажать на поршень, вводят 10 мкл клеточной решение. Практически не сопротивление должно быть чувствовал в этот момент.
  10. Slowly извлечения иглы.
  11. Следуя той же процедуре, переходите к следующему ноги для введения 10 мкл PBS.
  12. Удалить мышь от наркоза и держать на грелку, пока восстановлены.
  13. Следить за мышами в течение следующих 24 часов и ввести дополнительные Buprenex каждые 12 часа, если животные продолжают демонстрировать признаки бедствия.

5. Изображениями время курса

  1. Luciferase Imaging: Где это применимо, люциферазы изображений следует использовать, начиная с 7 дней после инокуляции опухолевых клеток (хотя в большинстве моделей костных метастазов, обнаруживаемых день ближе к 14). Мышь внутрибрюшинно вводили 150 мг / кг люциферин, под наркозом, и отображаемого 8 мин после инъекции с использованием ИВИС оборудования 8.
  2. GFP изображений: как правило GFP-экспрессирующих опухоли начинают быть обнаружены около 10-14 дней для intratibial инъекции и 16-21 внутрисердечных эксперименты с использованием Maestro съемочной аппаратуры (CRI) 9. Коротко, мышей анестезировали изофлурана (3%) И выдерживают под наркозом через носовой конус в камеру Maestro изображений. Для наших EGFP-клеток, экспрессирующих мы используем сине набор фильтров (498 excitation/515 выбросов для EGFP) на 500 мс экспозиции с шагом 10 нм.
  3. Faxitron (X-Ray): X-лучи принимаются еженедельно, начиная с 7-й день до 14. Поражения будет видна в внутрисердечных модели на 21 день и на неделю раньше в intratibial инъекций 3. Наши рентгенографические данные для естественных бывших и в естественных условиях были получены с помощью Faxitron LX-60 на 35 кВ в течение 8 секунд воздействия.
  4. Другие изображения: изображения условиях будет полностью основано на конкретных исследованиях. В дополнение к вышеуказанным методам, изображений живых животных на основе 3D микро-компьютерная томография (μCT), микро-позитронной эмиссионной томографии (μPET), и другие условия 10,11 могут предоставить ценную информацию.

6. Мышь жертвы

  1. Каждая модель имеет несколько иной ход времени. С MDA-MB-231 клеток мышей обычно становятся худосочные или страдающий параличом нижних конечностей от 21 до 35 дней, а обычно около 28-й день (IT вводили мышам между 21-28 дней).
  2. После нескольких мышей развиваются поражения, которые начинают разрушаться через кортикальной кости, стал страдающий параличом нижних конечностей, или потерять 10-20% от веса тела, пожертвовать всем мышам в исследовании с использованием кетамина / ксилазина передозировки смещения шейных позвонков (или другой IACUC утвержденным методом).
  3. Удалить кости, необходимых для дальнейшего исследования и хранить в буфере 4% формалином.
  4. У мышей с опухолями груди является признаком пропустили инъекцию и должны быть исключены из исследования.

7. Ex Vivo анализ

  1. μCT: сканирование в 70% этанола позволяет структурных и гистологических параметров, измеренных на того же образца кости.
  2. Контура и анализа в соответствии с индивидуальными опытно-конструкторских и имеющегося оборудования 10. Наши данные были получены с Scanco μCT 40 с использованием 12 мкМ резолюции.
  3. Histomorphometry: Процесс образцы использованием предпочтительного гистологических методов и окраска гематоксилин / эозином 7

8. Представитель Результаты

После внутрисердечного или intratibial инокуляции опухолевых клеток (рис. 1) мышей контролируется еженедельно с помощью рентгенографии и флуоресценции (или люминесценции). Поражения обычно проявляются на рентгеновских неделю между 2 и 3, в то время как они могут быть видимой флуоресценции и люминесценции в начале недели 2, в зависимости от модели (рис. 2). Поражения видны как темные отверстия в кости, и становятся более выраженными с течением времени (рис. 3). Поражения были количественно, используя Metamorph анализа рентгенограмм и флуоресценции измеряли с помощью Maestro (CRI) приобретение визуализации и анализа программного обеспечения. Как поражений начинают расти, мышей часто становятся худосочные. Жертва необходима при мышей потеряли 10-20% своего первоначального веса. Состоянии мышах могут быстро меняться и должны быть проверены несколько раз в течение дня. В период с 3-4 недель мышей стали тащить один или оба задних конечностей и всего исследования была принесена в жертву. Изображения были приняты до жертвовать. После анестезии передозировки, брали кровь для измерения маркеров костного или других факторов. После смещения шейных позвонков, кожа была лишена от мыши и кости вырезали и очищены для бывших естественных изображений (рис. 3), которая позволит визуализации опухолевых очагов по крайней мере 7 дней раньше, чем в естественных методов визуализации. Как только изображение было завершено кости были помещены в маркированных кассеты и хранятся в формалине для фиксации и дальнейшей гистологической обработки или μCT анализа. Гистоморфометрия проводился на образцах для обозначения опухоли и BV / TV после μCT был выполнен на голени, чтобы определить количество костной деструкции (рис. 4).

/ 4260/4260fig1.jpg "/>
Рисунок 1. Правильное размещение инъекций. Брюшной радиографический (A) взрослого грудной клетки мыши показывает правильное размещение иглы в 4-м межреберье и в левый желудочек для прививки внутрисердечной. Анатомические ориентиры показано с горизонтальной пунктирной линии на грудине (они изложены в белом). На коже мыши грудины качество и xyphoid процесса служат в качестве ориентиров, а игла немного слева от грудины. Брюшной зрения радиографический (B) взрослого ногу мыши показывает правильное размещение иглы в проксимальных голени, соответствие между мыщелков. Из боковой перспективе кончике иглы помещается за бугристости большеберцовой кости и глубоко, чтобы эпифизарных пластин. Идеальное место для инъекций показан белым кругом.

figure-protocol-1
Рисунок 2. Время хода кости модели метастазов. Прогрессирование окncer вызванных заболеванием костей показано с Х-лучами и GFP + флуоресцентные изображения опухолей в естественных условиях от intratibial инъекций (A) и внутрисердечной инъекции (B).

figure-protocol-2
Рисунок 3. Время конечно внутрисердечной MDA-MB-231 модель Верхний ряд:. Ex изображение естественных условиях флуоресцентного микроскопа показывает на 0 день, 14, 21 и 28 после внутрисердечной инъекции MDA-MB-231. Обратите внимание, что опухолевых очагов на 14 день видны только в бывших естественных условиях после удаления мягких тканей. Нижний ряд: EX VIVO рентгенографических изображений одного и того же бедра иллюстрирующие остеолитические поражения костей. Обратите внимание, что разрушения кости обычно не видно, пока через 3 недели после сердечных инъекций.

figure-protocol-3
Рисунок 4. Количественная оценка кости метастатического прогрессирования. GFP + опухоли, как визуализируется Maestro изображения бывших естественных условиях из Тибип. в неопухолевой подшипник мыши (А) и мышей через 4 недели после внутрисердечной инъекции GFP выражение MDA-MB-231 субклона (B). Опухолевых очагов коррелируют с участками костной деструкции, как показано Faxitron (D) по сравнению кости без опухоли (C). Кость структурных и минеральных данные из microCT измерений отображаются как 3D изображение здоровой кости (E) и опухоли костей подшипника (F), где области костной деструкции показано, как пустота области. Дальнейшие подробности костей и опухоли наблюдается в соответствующем H & E окрашенных гистологических срезов (G & H).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Исследование индуцированного опухолью болезни костей полагаются на нескольких животных моделях из которых два наиболее часто используемых внутрисердечной и intratibial прививок. Во многих случаях внутрисердечной является лучшим вариантом для изучения метастазы в кости, однако она не представляет полной метастатического процесса, и, следовательно, молочной жировой ткани или других ортотопической инъекции в идеале должны быть использованы в этом направлении. Опухолевые клетки не метастазируют легко с основного сайта в бол...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Авторы признают следующие источники финансирования: P01CA040035 (FE / JAS) и В. А. премию развития карьеры (JAS).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Название реагента Компания Номер в каталоге
MDA-MB-231 человеческих клеток рака молочной железы Первоначально ATCC-Внутренне клонировали и выбранные
DMEM GIBCO 11885
PBS Mediatech Inc 21-040-CV
FBS Атлас биологического F-0050a
Трипсин GIBCO 15400
Faxitron Faxitron
Маэстро CRi
μCT сканер Scanco
Бестимусным голых мышей Харлан Fox ню - / -
Инсулиновые шприцы (300 мкл, 28,5 г) Becton Dickinson 309300
ИВИС Каверномер
Облученных диета грызунов Teklad 2920x

Ссылки

  1. Sterling, J. A., Edwards, J. R., Martin, T. J., Mundy, G. R. Advances in the biology of bone metastasis: how the skeleton affects tumor behavior. Bone. 48, 6-15 (2011).
  2. Yoneda, T., Sasaki, A., Mundy, G. R. Osteolytic bone metastasis in breast cancer. Breast Cancer Res. Treat. 32, 73-84 (1994).
  3. Johnson, R. W. TGF-beta promotion of Gli2-induced expression of parathyroid hormone-related protein, an important osteolytic factor in bone metastasis, is independent of canonical Hedgehog signaling. Cancer Res. 71, 822-831 (2011).
  4. Li, X. Loss of TGF-beta Responsiveness in Prostate Stromal Cells Alters Chemokine Levels and Facilitates the Development of Mixed Osteoblastic/Osteolytic Bone Lesions. Mol. Cancer Res. , (2012).
  5. Yoneda, T. Actions of bisphosphonate on bone metastasis in animal models of breast carcinoma. Cancer. 88, 2979-2988 (2000).
  6. Rose, A. A. Osteoactivin promotes breast cancer metastasis to bone. Mol. Cancer Res. 5, 1001-1014 (2007).
  7. Sterling, J. A. The hedgehog signaling molecule Gli2 induces parathyroid hormone-related peptide expression and osteolysis in metastatic human breast cancer cells. Cancer Res. 66, 7548-7553 (2006).
  8. Lu, X. VCAM-1 promotes osteolytic expansion of indolent bone micrometastasis of breast cancer by engaging alpha4beta1-positive osteoclast progenitors. Cancer Cell. 20, 701-714 (2011).
  9. Oyajobi, B. O. Detection of myeloma in skeleton of mice by whole-body optical fluorescence imaging. Mol. Cancer Ther. 6, 1701-1708 (2007).
  10. Johnson, L. C. Longitudinal live animal micro-CT allows for quantitative analysis of tumor-induced bone destruction. Bone. 48, 141-151 (2011).
  11. Sterling, J., Johnson, R. Imaging Techniques for the Detection and Examination of Breast Cancer Metastasis to Bone. 46, Nova Science Publishers. (2011).
  12. Steinbauer, M. GFP-transfected tumor cells are useful in examining early metastasis in vivo, but immune reaction precludes long-term tumor development studies in immunocompetent mice. Clin. Exp. Metastasis. 20, 135-141 (2003).
  13. Oyajobi, B. O. Dual effects of macrophage inflammatory protein-1alpha on osteolysis and tumor burden in the murine 5TGM1 model of myeloma bone disease. Blood. 102, 311-319 (2003).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Внутрисердечная инъекциявнутриберцовая инъекцияинокуляция опухолевых клетокклетки MDA-MB-231флуоресценция GFPрентгенографиямикро-КТ анализгистоморфометрический анализатимические мыши