Методическая статья

Неонатальный пиальных поверхности Электропорацию

DOI:

10.3791/51319

7 мая 2014 г.

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Пиальных поверхности зона является уникальной предшественников в ЦНС, что уделяется все большее внимание. При этом мы подробно способ быстрого генетической манипуляции этой зоны предшественников с использованием модифицированного метода электропорации. Эта процедура может быть использована для клеточных и молекулярных исследований клеточных линий и сигнальных путей, участвующих в дифференцировке клеток и выяснить судьбу и свойства дочерние клетки.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

За последние несколько лет пиальных поверхность была определена в качестве зародышевого нише значение во время эмбрионального, перинатальной и взрослых нейро-и глиогенеза, в том числе после травмы. Тем не менее, методы генетически допрашивать этих групп населения предшественников и отслеживания их клоны были ограничены из-за отсутствия специфичности или времени производство вирусов. Таким образом, прогресс в этой области был довольно медленным только с горсткой исследований этого месте. Электропорация была использована уже более десяти лет, чтобы изучить нервные свойства стволовых клеток в эмбрион, а в последнее время в послеродовом мозга. Здесь мы опишем эффективную, быструю и простую технику для генетических манипуляций пиальных поверхностных предшественников на основе адаптированной для электропорации подхода. Пиальных поверхность электропорации позволяет легкому генетической маркировки и манипуляции этих предшественников, тем самым представляя экономия времени и экономичный подход к изучению этих клеток.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нервные стволовые и клетки-предшественники присутствуют в ЦНС млекопитающих 1, 2. Их природа и свойства в эмбриональных и взрослых зародышевых зонах, окружающих желудочковой области мозга и спинного мозга были хорошо документированы в последнее десятилетие 1-3. В значительной степени это было связано с развитием более точных генетических инструментов, таких как нервная система конкретного Cre рекомбинации floxed аллелей или ретровирусов линии трассировки 4. Тем не менее, один регион-прародитель относящийся к мягкой мозговой оболочке поверхность предшественников зона-недавно был описан только в деталях 5-7 и ждет комплексное обследование.

Пиальных поверхность мозга определяется как интерфейс между поверхностью мозга и окружающих мозговых оболочек 8. Во время развития нейроэпителиальные, а позднее, радиальные глиальные конечные футов приложить к этой поверхности 9,10. Некоторые из пихтыул нейроны в мозге человека и многих нейронных митозов наблюдаются в этом регионе 11. Позже, во время эмбрионального нейрогенеза, корковых интернейронов, как известно, пройти пиальных регион, в дополнение к их миграционных путей в промежуточной зоне и субвентрикулярной зоне 12-14. В течение этого периода, стволовые клетки можно культивировать из этой зоны, и это, кажется, активный центр нейро-и глиогенеза 5. Во взрослом мозге, было сообщено, что интернейроны может родиться от пиальных поверхностных предшественников следующее гипоксического вызов 7. Тем не менее, вклад этой области, чтобы его в genensis во время эмбрионального и постнатального развития остается неясным, в частности в связи с трудностью специально расследование этого региона 6. В верхний бугорок и в коре головного мозга, поверхностные (или слой I в коре) интернейроны может модулировать схему вывода основных возбуждающих популяций нейронов и тем самым способствовать significantly к функции этих структур. В частности, слой 1 интернейроны находятся в позиции, чтобы регулировать возбуждения нейронов на протяжении верхних слоях коры головного мозга с учетом их Широкие возможности подключения к поверхностных и глубоких слоев коры колонн 15,16. Аналогичным образом, горизонтальные интернейронов возбуждающих получать ввод от коры и сетчатки волокон, проекта в относительно широком области и предположили, посредником ингибирование нейрональных популяций, ответивших на удаленном зрительных стимулов 17,18. Кроме того, их морфология хорошо подходит играть потенциальную роль в узорной волновой активности в развивающихся зрительной системы 19. Интересно, что развитие интернейронов и созревание происходит в значительной степени после рождения. Кроме того, этот процесс созревания было установлено, регулируется нейронной активности и, следовательно, субстрат пластичности развития с пожизненных последствий для функции схемы 20,21. Примечательно, что пO промоторы описаны который может специфически нацелены эти клетки трансгенно. Разделительные предшественники могут быть направлены с ретровируса 7, но производство вируса занимает много времени и требует навыков, получая высокие титры клеток, необходимых для трансдукции.

Электропорацию привело к возрождению в изучении нервной системы, так как позволяет для быстрого и эффективного генетического допроса сигнальных путей в нейронных клеток-предшественников 4, 22, 23. Электропорации включает инъекции плазмидной ДНК, после чего доставки электрических импульсов к внешней части головы, в одном направлении приведения в действие ДНК в пролиферирующих клеток-предшественников, окружающих желудочки 4, 22, 23. Электропорации, как представляется, требуют транзит через клеток М-фазе клеточного цикла для экспрессии трансгенов плазмидных 24. В частности, было обнаружено, что толькоклетки, проходящие через M фазы в 8 часов электропорации плазмид выразит трансгены, несмотря на их эффективной доставки всех клеток в ~ 160 мкм желудочковой стенки 24. Он предположил, что это связано с необходимостью срыва ядерной оболочки в разрешении ядерной доступа из эписомные плазмид, как химические вещества, вызывающие ядерной пермеабилизации может индуцировать экспрессию плазмид в пост митотических клеток 25. Первоначально использовали в эмбрионе 22, электропорацию был адаптирован для использования в послеродовом мозга гораздо позже 26, 27. В последнее время мы приспособились электропорации для использования в генетических манипуляций пиальных поверхностных предшественников 6. Кроме того, с помощью этого подхода мы показали, что там, по-видимому два различных происхождений предшественников в этой области-межнейронной и астроцитов 6. Этот протокол детали простой, быстрый, и мощный способ предназначаться эти клетки для допросаразвития механизмов, регулирующих этих клеток.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта процедура в соответствии с требованиями Cedars-Sinai IACUC. Следователи должны обеспечить институциональную соответствие IACUC до судебного разбирательства. Все инструменты и реагенты должны быть стерилизованы перед использованием.

1. Подготовка Tools, решения, и ДНК смесь

  1. Вставьте 100-мм Fire полированного боросиликатного стекла капилляров в микропипетки съемник. Установить отопление для обеспечения стандартного средневзвешенного тянуть, чтобы сформировать пипетки приблизительно 17,5 мм. Cut наконечники с острыми хирургическими ножницами на расстоянии примерно 8-9 мм от начала наконечника, чтобы создать примерно отверстие диаметром мкм в 100.
  2. Сделать запас на 1% м / о быстрой зеленые решения путем смешивания отфильтрованного нуклеазы без воды (с использованием шприца фильтр 20 мкм) с сухим быстрого зеленый.
  3. Изолировать очищенной эндотоксина свободной ДНК плазмиды, что высококонцентрирована (т.е.> 3 мкг / мкл), разбавленный в Трис-ЭДТА (ТЕ) буфера. Добавить желаемых количеств плазмидык смеси разводили в ТЕ-буфере и добавить соотношение 1:10 в 1%-зеленому раствору быстрого приготовления (0,1% вес / объем конечной концентрации быстрого зеленый). Использование 0,5-2,0 мкг / мкл конечной концентрации плазмиды для надежной экспрессии трансгенов.

2. Животное Анестезия, Внесите загрузка и мягкой мозговой оболочки поверхности плазмиды впрыска

  1. Вызвать гипотермии анестезии на 1-2 день после рождения мышей, разместив их на чашку Петри, который помещен на льду в течение 5-8 мин (время зависит от щенка возраста / веса). После гипотермии подтверждается отсутствием движения от ног-зажимая и / или хвостовой рефлекса у мышей готовы быть введен. Поместите животных обратно на лед, если боль рефлексы очевидны. Процедура инъекции и электропорации занять менее 2-3 мин в общей сложности, так что время гипотермия, раствор для инъекций, и процедуры электропорации соответственно для поддержания соответствующего анестезии.
  2. Во время анестезии с использованием стандартного пипетку осторожно пипеткой требуемое количество plasmiг смешать, который будет введен (0,5-2 мкл) на кусок парафина фильма для справки. Здесь, общий объем 0,5 мкл плазмиды смеси впрыскивается. Далее, используя микро инжектор, осторожно вставьте собранный стакан капиллярную пипетку в пробирку, содержащую плазмиду смеси. Принять дополнительные меры предосторожности, чтобы предотвратить наконечник от взлома, убедившись, это не прикасайтесь к краям трубки. Аспирируйте решение в пипетку, медленно набирая назад переноса диск. После того, как был обеспечен достаточный объем загружалась в пипетку, не набрать вперед, пока давление возвращается в нейтральное положение от 0 гПа.
  3. Использование 300-450 гПа давление для инъекций для обеспечения соответствующего давления для равномерное заполнение пиальных поверхности / менингеального пространства, поместить кончик рядом с пипеткой парафин отсчета фильм инъекции (от 2.2) и использовать педаль от микро форсунки, чтобы извлечь один Объем на парафина фильма. Отрегулируйте давление соответственно пока количество выбрасывается не сравняется с ранее пипеткой Ссылки на сайтыэ объем.
  4. После того, как кончик была уравновешена и анестезии был подтвержден, щенки готовы для инъекции.
  5. Целью эксперимента является придать плазмиды микс под черепом и выше пиальных поверхности, чтобы позволить для электропорации ДНК вниз в мягкой мозговой оболочки поверхностных предшественников (рис. 1А). Для коры инъекций, удерживайте щенка вниз, используя большой палец и указательный палец менее доминирующей рукой. Корковые полушарий и другие поверхностные структуры, такие как улучшенные двухолмия могут видеть между P0 и P2, что позволяет легкому адресности этих структур (рис. 1В). Использование доминирующую руку и целевой нужный область коры (т.е. двигателя, соматосенсорной и т.д.), вставьте пипетку мимо кожи и черепа, заботясь, чтобы избежать мозговых артерий. Убедитесь, чтобы предотвратить дальнейшее проникновение наконечника мимо черепа (на что указывает отсутствие дальнейшего сопротивления только после прокалывания череп).
  6. Введите плазмуID решения с помощью ножной педали из микро форсунки и убедитесь, что он рассеивает равномерно по всей ткани (рис. 2А).
    Примечание: Очень важно, чтобы эмпирически определить подход, который максимизирует доставку плазмидной избегая гематому из-за давления жидкости. Это может быть сделано путем регулировки длительности впрыска, угол, объем, и точное значение целевой сайт, чтобы избежать нарушения сосудов.
  7. Обязательно попробуйте и держать кончик от высыхания между инъекциями, поместив кончик в каплях испытаний от инъекций, сделанных ранее на вощеную бумагу или пластиковую парафиновой пленки. Это необходимо, чтобы предотвратить накопление кончика испаряется и Crystalized раствора ДНК, что может привести к закупорке наконечника и объемов поставок, несовместимых.

3. Электропорацию

  1. Установите электропоратора в 135-150 V в течение пяти импульсов, длительностью 50 мсек, с 950 мс с интервалом между каждым импульсом. Для того чтобы увеличить проводимость ипредотвратить сжигание кожи, накрыть 3-мм платиновые tweezertrodes с электропорации геля. Проверьте ног-щипать и хвостовой рефлексов в этой точке для обеспечения анестезии. Если отзывчивый, разместить на льду в течение нескольких минут обезболить.
  2. Для коры (и верхний бугорок) инъекций, используют 3-мм электрод (рис. 2б), чтобы увеличить жизнеспособность щенков (по сравнению с 7 - и 10-мм электродами, которые используются для зоны желудочка электропорации). Поместите отрицательно заряженный зонд электрода над области инъекции и положительно заряженного зонда вокруг противоположной области под глазами такой, что ориентация электрод находится при 45-60 ° углом по отношению к срединной линии (рис. 2в).
  3. Используйте педаль электропоратора чтобы вызвать ток и удерживайте tweezertrodes на месте в течение 3-5 импульсов, в зависимости от щенка возраста и веса, эффективно ориентации ДНК в основных пиальных поверхностных клеток при учете кривизныполушарий.
    Примечание: отрицательный полюс может быть охватила области инъекции в между импульсами или больше электрод может быть использован, чтобы увеличить площадь электропорации.
  4. Сразу после электропорации, тщательно счистить гель от щенков и разместить их под инфракрасной лампой в течение примерно 5 мин.
  5. Щенки будут остро теряют естественной красновато-розовый оттенок в минут после электропорации из-за цианоз. Соблюдайте щенков для восстановления естественного цвета и началом нормального движения перед их возвращением в их клетки.
  6. Убедитесь ресоциализации с матерью, наблюдая приносит ли она щенков обратно в гнездо и начинает холить их. Если она становится агрессивным, убедитесь, что щенки не имеют остатки геля и инкубировать их с некоторыми из постельных принадлежностей передать запах щенков.

4. Модификации Ориентация Улучшенный двухолмия

Ориентация:

  1. ИнчжеКТ верхний бугорок таким же образом, что и коры, но отметили, что целевой регион находится только задняя и боковая лямбда и примерно по срединной линии (рис. 3А и 3В). С успешных инъекций, плазмиду смесь естественно заполняет контуры верхний бугорок. После инъекции были сделаны успешно, животные готовы к электропорации.

Электропорацию:

  1. В очень же образом, для превосходного инъекций бугорок, поместите отрицательно заряженный зонд электрода над области инъекции и положительно заряженной зонда вокруг глаз, морды или подбородок, вождение ДНК в поверхностные регионах верхний бугорок (рис. 3C) . В этом случае, ориентация электрод находится на 25-40 ° углом по отношению к средней линии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Пиальных поверхностные электропорации приводит к экспрессии ДНК плазмиды в клетки-предшественники в основном-на или вблизи пиальных поверхности 6. Более конкретно, ориентация электродов имеет решающее значение в диктовать направление движения плазмиды и последующей экспрессии. Таким образом, в конфигурации с двумя электродными, плазмиду направлен в почти прямую вектора между отрицательным и положительным электродом. Поэтому, если отрицательный полюс находится над месте инъекции, а положительный полюс вентраль...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Самый важный аспект для успешного электропорации пиальных поверхностных предшественников являются: 1) адресности плазмиды смеси, чтобы пиальных поверхности; 2) предотвращение генерацию гематом в месте инъекции; и 3) избежать смертности, связанных с среднего мозга электропорации.

Соответственно ориентации пиальных поверхность осуществляется измеренного и тщательного прокалывания черепа, чтобы избежать проникновения пиальных поверхности. Неправильное ориентации на покрывающей кожи или основной...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют, что они не имеют конкурирующие финансовые интересы.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы хотели бы выразить признательность поддержки со стороны Самуэль Ошина всеобъемлющем институт рака онкологического научного форума премии, а также средства от регенеративной медицины Института Cedars-Sinai, и Герена семьи. Проект описывается была поддержана в виде CTSI Основной ваучером, финансируемого Национальным центром исследований ресурсов, Грант UL1RR033176, и в настоящее время в Национальном центре для продвижения поступательного науки, Грант UL1TR000124. Содержание является исключительной прерогативой авторов и не обязательно отражают официальную точку зрения NIH.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Боросиликатные трубки огневой полировкиWorld Precision Instruments, Inc.1B100F-4
Съемник микропипетокSutter Instruments CompanyP-30
Fast Green FCFSigma Aldrich, Inc.F7528
XenoWorks Цифровой микроинъекторSutter Instruments Company
ECM 830 GeneratorHarvard Apparatus, BTX Instrument Div45-0052
3-мм Platinum TweezertrodesHarvard Apparatus, BTX Instrument Div45-0487
SignaGel Electrode GelCardinal Health70315-025
Tris-EDTA Buffer, pH 8.0Integrated DNA Technologies, Inc.11-01-02-05
Инфракрасная тепловая лампаVWR36547-009
Ножницы SharpFine Science Tools14060-09

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Breunig, J. J., Haydar, T. F., Rakic, P. Neural stem cells: historical perspective and future prospects. Neuron. 70 (4), 614-625 (2011).
  2. Gage, F. H. Mammalian neural stem cells. Science. 287 (5457), (2000).
  3. Kriegstein, A., Alvarez-Buylla, A. The glial nature of embryonic and adult neural stem cells. Annu Rev Neurosci. 32, 149-184 (2009).
  4. Breunig, J. J., Arellano, J. I., Macklis, J. D., Rakic, P. Everything that glitters isn't gold: a critical review of postnatal neural precursor analyses. Cell Stem Cell. 1 (6), 612-627 (2007).
  5. Costa, M. R., Kessaris, N., Richardson, W. D., Gotz, M., Hedin-Pereira, C. The marginal zone/layer I as a novel niche for neurogenesis and gliogenesis in developing cerebral cortex. J Neurosci. 27 (42), 11376-11388 (2007).
  6. Breunig, J. J., et al. Rapid genetic targeting of pial surface neural progenitors and immature neurons by neonatal electroporation. Neural Dev. 7, (2012).
  7. Ohira, K., et al. Ischemia-induced neurogenesis of neocortical layer 1 progenitor cells. Nat Neurosci. 13 (2), 173-179 (2010).
  8. Bystron, I., Blakemore, C., Rakic, P. Development of the human cerebral cortex: Boulder Committee revisited. Nat Rev Neurosci. 9 (2), 110-122 (2008).
  9. Schmechel, D. E., Rakic, P. A Golgi study of radial glial cells in developing monkey telencephalon: morphogenesis and transformation into astrocytes. Anat Embryol (Berl. 156 (2), 115-152 (1979).
  10. Halfter, W., Dong, S., Yip, Y. P., Willem, M., Mayer, U. A critical function of the pial basement membrane in cortical histogenesis. J Neurosci. 22 (14), 6029-6040 (2002).
  11. Bystron, I., Rakic, P., Molnar, Z., Blakemore, C. The first neurons of the human cerebral cortex. Nat Neurosci. 9 (7), 880-886 (2006).
  12. Tanaka, D. H., Maekawa, K., Yanagawa, Y., Obata, K., Murakami, F. Multidirectional and multizonal tangential migration of GABAergic interneurons in the developing cerebral cortex. Development. 133 (11), 2167-2176 (2006).
  13. Ang Jr, E. S., Haydar, T. F., Gluncic, V., Rakic, P. Four-dimensional migratory coordinates of GABAergic interneurons in the developing mouse cortex. J Neurosci. 23 (13), 5805-5815 (2003).
  14. Tamamaki, N., Fujimori, K. E., Takauji, R. Origin and route of tangentially migrating neurons in the developing neocortical intermediate zone. J Neurosci. 17 (21), 8313-8323 (1997).
  15. Larkum, M. E. The yin and yang of cortical layer 1. Nat Neurosci. 16 (2), 114-115 (2013).
  16. Jiang, X., Wang, G., Lee, A. J., Stornetta, R. L., Zhu, J. J. The organization of two new cortical interneuronal circuits. Nat Neurosci. 16 (2), 210-218 (2013).
  17. Endo, T., Isa, T. Functionally different AMPA-type glutamate receptors in morphologically identified neurons in rat superficial superior colliculus. Neuroscience. 108 (1), 129-141 (2001).
  18. Schmidt, M., Ozen Boller, M., G,, Hall, W. C. Disinhibition in rat superior colliculus mediated by GABAc receptors. J Neurosci. 21 (2), 691-699 (2001).
  19. Ackman, J. B., Burbridge, T. J., Crair, M. C. Retinal waves coordinate patterned activity throughout the developing visual system. Nature. 490 (7419), 219-225 (2012).
  20. De Marco Garcia, N. V., Karayannis, T., Fishell, G. Neuronal activity is required for the development of specific cortical interneuron subtypes. Nature. 472 (7343), 351-355 (2011).
  21. Boller, M., Schmidt, M. Postnatal maturation of GABA(A) and GABA(C) receptor function in the mammalian superior colliculus. Eur J Neurosci. 14 (8), 1185-1193 (2001).
  22. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).
  23. De Vry, J., et al. In vivo electroporation of the central nervous system: a non-viral approach for targeted gene delivery. Prog Neurobiol. 92 (3), 227-244 (2010).
  24. Stancik, E. K., Navarro-Quiroga, I., Sellke, R., Haydar, T. F. Heterogeneity in ventricular zone neural precursors contributes to neuronal fate diversity in the postnatal neocortex. J Neurosci. 30 (20), 7028-7036 (2010).
  25. De la Rossa, A., et al. In vivo reprogramming of circuit connectivity in postmitotic neocortical neurons. Nat Neurosci. 16 (2), 193-200 (2013).
  26. Boutin, C., Diestel, S., Desoeuvre, A., Tiveron, M. C., Cremer, H. Efficient in vivo electroporation of the postnatal rodent forebrain. PLoS One. 3 (4), (2008).
  27. Chesler, A. T., Le Pichon, C. E., Brann, J. H., Araneda, R. C., Zou, D. J., Firestein, S. Selective gene expression by postnatal electroporation during olfactory interneuron nurogenesis. PLoS One. 3 (1), (2008).
  28. dal Maschio, M., et al. High-performance and site-directed in utero electroporation by a triple-electrode probe. Nat Commun. 3, (2012).
  29. Yoshida, A., Yamaguchi, Y., Nonomura, K., Kawakami, K., Takahashi, Y., Miura, M. Simultaneous expression of different transgenes in neurons and glia by combining in utero electroporation with the Tol2 transposon-mediated gene transfer system. Genes Cells. 15 (5), 501-512 (2010).
  30. Chen, F., LoTurco, J. A method for stable transgenesis of radial glia lineage in rat neocortex by piggyBac mediated transposition. J Neurosci Methods. 207 (2), 172-180 (2012).
  31. Feliciano, D. M., Lafourcade, C. A., Bordey, A. Neonatal subventricular zone electroporation. J Vis Exp. , (2013).
  32. Lam, A. J., et al. Improving FRET dynamic range with bright green and red fluorescent proteins. Nat Methods. 9 (10), 1005-1012 (2012).
  33. Subach, O. M., Cranfill, P. J., Davidson, M. W., Verkhusha, V. V. An enhanced monomeric blue fluorescent protein with the high chemical stability of the chromophore. PLoS One. 6 (12), (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи