Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Модель переходной трансгенерации IL-8 для

7.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/55499

⸱

7 июля 2017 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, General Pathology Division, Cystic Fibrosis Translational Research Laboratory "D. Lissandrini", University of Verona, 2Corporate Preclinical R&D, Chiesi Farmaceutici S.p.A., 3Department of Diagnostic and Public Health, Microbiology Division, University of Verona, 4Dipartimento di Scienze Medico-Veterinarie, University of Parma, 5Department of Biomedical Biotechnological and Translational Sciences, University of Parma, 6Department of Computer Science, University of Verona, 7Department of Neurological, Biomedical and Movement Sciences, University of Verona, 8Cystic Fibrosis Regional Center (CFC), AOUI Verona

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Описанный здесь способ позволяет визуализировать активацию IL-8-зависимого воспаления в легких мышей посредством неинвазивной биолюминесцентной визуализации (BLI). Одно и то же животное может быть подвергнуто BLI несколько раз в течение двух месяцев с момента доставки конструкции репортера люциферазы.

Аннотация

Воспаление дыхательных путей часто ассоциируется с бактериальными инфекциями и является основным фактором, определяющим заболевание легких. Определение in vivo провоспалительных возможностей различных факторов является сложным и требует терминальных процедур, таких как бронхоальвеолярный лаваж и удаление легких для анализа in situ , исключая продольную визуализацию у той же мыши. Здесь воспаление легких индуцируется путем интратрахеальной инстилляции супернатанта культуры Pseudomonas aeruginosa (SN) у временно трансгенных мышей, экспрессирующих репортерный ген люциферазы под контролем гетерологичного промотора коровы IL-8. Экспрессия люциферазы в легких контролируется анализом биолюминесцентного изображения in vivo (BLI) в течение 2,5-48-часовой таймфрейма после инстилляции. Процедуру можно повторять несколько раз в течение 2 - 3 месяцев, что позволяет оценить воспалительную реакцию у одних и тех же мышей сНеобходимость прекращения животных. Такой подход позволяет контролировать про-и противовоспалительные факторы, действующие в легких в реальном времени, и представляется пригодным для функциональных и фармакологических исследований.

Введение

Хронические заболевания легких, такие как астма, хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ), кистозный фиброз (CF) и бронхоэктазы, характеризуются воспалением дыхательных путей. Воспаление дыхательных путей характеризуется отеком, клеточной инфильтрацией, активацией Т-лимфоцитов и тучных клеток, увеличением выделения дыхательных путей и чрезмерным осаждением коллагена. CF является мультисистемным расстройством, и его основной причиной смертности и заболеваемости является бактериальная инфекция легких с увеличением обострения легочной артерии. Снижение функции легких предсказывает значительно худший результат 1 , 2 , 3 , 4 .

Состояние воспаления дыхательных путей обычно наблюдается путем оценки иммунологических маркеров, набранных во время воспалительного процесса, в материалах, полученных из нижних и верхних дыхательных путей, таких как мокрота, которая обеспечивает переменные resULTS. Бронхоскопия также выполняется 5 . Молекулы мурина являются ценными инструментами для исследования патогенеза и развития заболеваний, характеризующихся воспалением дыхательных путей, и для которых эффективные методы лечения или лечения еще не определены. Для изучения астмы и взаимодействия хозяина-патогена использовались животные модели инфекции легких и воспаления, включая роль химических веществ, которые имитируют состояние человека ( например, воздействие сигаретного дыма, LPS, эластаза, овальбумин, поли I: C и т. Д. , Как А также комбинации вышеуказанного). 6 . Измерение параметров, связанных с воспалением, требует жертвоприношения животных, так как необходимы инвазивные подходы для измерения таких факторов, как бактериальная нагрузка, цитокины в легких и собранная жидкость бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ). Кроме того, гистологические обследования часто требуются. Возможность получения информации о кинетике воспалительных реакций требует использования numМышей. Поэтому метод, позволяющий получать такую ​​информацию без необходимости жертвовать животными, ценен на технических, этических, экономических и эксплуатационных основаниях.

IL-8 является существенным игроком в процессе воспаления, рекрутируя лейкоциты в воспаленную ткань. Он представляет собой молекулярное считывание для изучения активации воспалительного пути. MIP-2 и KC могут быть функциональными гомологами человеческого IL-8 у мышей. Мыши экспрессируют только один потенциальный рецептор IL-8, гомолог человека CXCR2 7 , 8 , но они способны модулировать гетерологичный промотор гена IL-8, который управляет репортерным геном. Недавно была разработана модель мышиного воспаления легкого, после того как было обнаружено, что конструкция мышиного рецептора IL-8 / люциферазы может быть трансактивирована у мышей. Эта функция позволяет использовать биолюминесцентную визуализацию (BLI) для мониторинга воспалительного ответа при жизни9 .

Эта модель была адаптирована для изучения воспаления, вызванного бактериальными экзопроводами ( например, LPS или продуктами, высвобождаемыми бактериальными штаммами) или TNFalpha 10 , 11 . Процесс открытия лекарств ориентирован на разработку и оптимизацию старых и новых противовоспалительных молекул, которые могут лечить заболевания легких, такие как CF, астма и ХОБЛ. Эти новые химические объекты должны быть быстро и удобно протестированы на животных моделях, которые могут быть связаны с конкретными клиническими фенотипами, чтобы облегчить разработку интеллектуальных клинических испытаний.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все описанные эксперименты на животных были одобрены комитетом по животноводству для экспериментов на животных, проведенным Межведомственным центром службы экспериментальных исследований в Веронском университете и соответствовали Европейской директиве 2010/63 UE, итальянской версии D.Lgs 26/2014 и пересмотренной «Руководство по уходу и использованию лабораторных животных», Вашингтон, округ Колумбия: National Academy Press, 1996. Этот протокол и эксперименты были одобрены Национальными институтами здравоохранения (n 273/15). Животные имели свободный доступ к стандартным грызунам и смягченной водопроводной воде и акклиматизировались в течение как минимум 5 дней в условиях локального вивария (комнатная температура: 20-24 ° C, относительная влажность: 40 - 70%, светло-темный цикл: 12 ч ) Перед любым лечением.

1. Поставка гена Vivo

  1. Используйте ламинарный вытяжной колпак для приготовления комплексов реагентов / нуклеиновых кислот для доставки in vivo .
  2. Определить экспериментальный протокол aNd в соответствии с инструкциями производителя in vivo .
    1. Используйте общий объем инъекции 200 мкл комплексов на мышь.
    2. Начните с 40 мкг ДНК, суспендированной в воде, свободной от эндотоксина; Диапазон оптимизации может достигать 60 мкг.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Конечная концентрация нуклеиновой кислоты в объеме инъекции не должна превышать 0,5 мкг / мкл в соответствии с инструкциями производителя.
    3. Используйте соотношение N / P 6 - 8 (0,12 - 0,16 мкл реагента для доставки на мкг нуклеиновой кислоты). Рассчитайте соответствующий объем реагента доставки.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Комплексы должны быть катионными для эффективного ввода клеток. Отношение N / P определяется как количество остатков азота (N) в реакторе доставки in vivo на фосфат нуклеиновой кислоты (P) и представляет собой показатель ионного баланса внутри комплексов.
  3. Разбавьте рассчитанное количество (см. Шаг 1.2.1) нуклеиновой кислоты в 5% глюкозе (конечная концентрация) С использованием 10% -ного раствора глюкозы (при условии) и стерильной воды. Убедитесь, что объем разбавления составляет половину конечного объема впрыска. Вихрь осторожно или перемешайте пипетированием вверх и вниз.
  4. Разбавьте рассчитанное количество (см. Шаг 1.2.3) реагента доставки до половины объема инъекции 5% глюкозы (конечная концентрация) с использованием 10% -ного раствора глюкозы (при условии) и стерильной воды. Вихрь мягко и вращаться при 13000 xg в течение 15 с.
  5. Добавьте вышеуказанные разбавленные реагенты доставки к разбавленной нуклеиновой кислоте все сразу. Смешайте их, осторожно встряхивая и опустившись на 13 000 xg в течение 15 с.
  6. Инкубируйте смесь со стадии 1.5 в течение 15 мин при комнатной температуре.
    ПРИМЕЧАНИЕ. С этого момента комплексы стабильны в течение 4 ч при комнатной температуре и до 7 дней при хранении при 4 ° С.
  7. Выполнять инъекции хвостовых вен с использованием комплексов, уравновешенных при комнатной температуре. Поместите хвост мыши в теплую воду (50 - 53 ° C) в течение 30 с, чтобы обеспечить расширение вен.
    1. Поместите мышь в удерживающее устройство. Вставьте иглу 27 - 30 калибра в хвостовую вену под углом 20-30 ° и медленно вводите 200 мкл. По завершении удалите иглу и подайте давление на место инъекции.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Небольшой выступ в хвосте во время инъекции указывает на неправильное позиционирование. Если это произойдет, удалите иглу и повторите процесс, проксимальный к предыдущему сайту.
  8. Визуализируйте экспрессию гена, выполнив in vivo BLI (см. Этап 2) через 24 и 48 ч после внутривенной инъекции.

2. В Vivo BLI

ПРИМЕЧАНИЕ. Предварительно подготовьте свежий исходный раствор D-люциферина 15 мг / мл в DPBS, процедите в фильтре, используя фильтр-фильтр 0,22 мкм, и храните его при -20 ° C.

  1. Поместите мышей в ясную камеру для анестезии из плексигласа. Убедитесь, что изофлурановая камера заполнена. Когда вы готовы обезболивать животных, убедитесь, что насос (лEft) и камеры (справа). Поверните циферблат изофлурана до 2,5% для индукции и 2% для обслуживания. Животных внутри камеры IVIS удерживают под воздействием изофлуорана под 2,5% при получении изображения.
  2. После того, как мышей полностью обезболивают, вводите 10 мл / кг массы тела раствора D-люциферина с помощью внутрибрюшинного маршрута за 15 мин до визуализации.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Необходимо провести кинетическое исследование D-люциферина, чтобы определить время пика сигнала после введения D-люциферина.
  3. Откройте систему визуализации in vivo и подготовьте камеру для визуализации, наложив ее на кусок черного картона (отбросьте после завершения). Поместите носовые конусы, если необходимо для правильной анестезии (используйте один конус на мышь).
    ПРИМЕЧАНИЕ. Трубка, которая подает анестезию к инструменту, разделяется так, чтобы та же концентрация анестезии была отнесена к анестезиологическим коллекторам, расположенным внутри системы формирования изображения.
  4. Перенесите мышей (до 5) из bOx к носовым конусам, прикрепленным к коллектору в системе формирования изображения, и закройте дверцу. Приобретение изображения длится 5 мин.
  5. Приобретайте BLI, используя программное обеспечение производителя, следующим образом.
    1. Инициализация программного обеспечения. В панели управления приобретением системы визуализации in vivo поставьте галочку рядом с Luminescent . Убедитесь, что для параметра «Фильтр возбуждения» выбран «Блокировать», а параметр «Фильтр выбросов» - «Открыть».
    2. Нажмите стрелки: для режима люминесцентной визуализации выберите время экспозиции 5 минут, бит 8 и F / Stop 1; Для режима фотосъемки выберите Binning 4 и F / stop 8.
    3. В раскрывающемся списке «Область поля зрения» выберите D, 19 см и высоту темы 1,5 см. Нажмите «Приобрести», когда будете готовы получить изображение.
  6. Когда сбор изображений завершен, поместите мышей обратно в их клетки.
  7. Определите количество фотонов, испускаемых из определенных регионов, с помощью программного обеспечения производителя.
    1. Нажмите Инструменты ROI в палитре инструментов. В Инструментах ROI выберите « Измерить ROI» в раскрывающемся списке «Тип».
    2. Нажмите на значок площади и нарисуйте квадрат ROI с соответствующими размерами, чтобы покрыть грудную клетку одного животного. Скопируйте и вставьте ROI для каждого животного, чтобы получить ROI с одинаковыми размерами. На панели инструментов ROI нажмите « Измерять ROI», чтобы получить измерения общей интенсивности в ROI.
    3. Соблюдайте данные измерений ROI для всех ROI, созданных в изображениях или последовательностях во время сеанса (один ROI для каждой строки). Нажмите «Экспорт» и выберите папку, в которой будет сохранен файл.

3. Мышь с провоспалительными стимулами

ПРИМЕЧАНИЕ. Перед вызовом мыши с провоспалительными стимулами проверьте активацию базовой линии на i n vivo BLI (см. Шаг 2). По крайней мере, 7 дней должны проходить между доставкой гена in vivo и mousE, чтобы позволить мягкому и временному воспалению исчезнуть.

  1. Подготовьте оборудование для интратрахеальной инстилляции (см. Рис. 1 и рисунок 2 ).
    1. Подключите 5 мл одноразовые шприцы с пружиной (C, E), шприцем объемом 100 мкл (B) и одноразовым датчиком (D) к трехходовому кранову (A). Поместите систему на опору (H). Поместите систему на опору (H).
    2. Подключите микро-медицинскую трубку PE190 (F) к одноразовому датчику (D) и к столу пера (G).
    3. Заполните 5-мл шприц 800 мкл воздуха и поверните трехходовой кран.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Заполните пробирку супернатантом культуры Pseudomonas aeruginosa путем аспирации 50 мкл в 100 мкл шприца.

figure-protocol-1
Рисунок 1: Схематический видНитрата одного компонента внутритрахеального устройства.
(A) 3-полосный запорный кран, (B) 100 мкл гамильтонового шприца, (C) одноразовый 5-мл шприц, (D) одноразовый калибр, (E) одноразовый 5-мл шприц с пружиной (F) PE190 micro medical tubing , (G) эпохи пера и (H) . Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-2
Рисунок 2: Представление собранного внутритрахеального устройства.
Идентификация такая же, как на рисунке 1 . Пожалуйста, нажмитеЗдесь, чтобы просмотреть большую версию этого рисунка.

  1. Анестезируйте мышей, используя камеру испарителя изофлюрана, установленную на 2,5% изофлурана, смешанного с кислородом.
  2. Контролируйте животное, чтобы оценить действие анестетика через 3 - 5 мин.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Чтобы подтвердить, что мышь полностью обезболивается, внимательно следите за следующими признаками: замедленная скорость дыхания должна замедляться, отсутствие растяжения руки при поднятии шеи и отсутствие реакции при стимуляции задних конечностей. Подождите несколько минут и проверьте еще раз, прежде чем переходить к следующему шагу, если эти критерии не выполняются.
  3. Поместите анестезированную мышь на платформу для интубации плексигласа, повесив ее своими резцами, которые помещаются на провод.
  4. Включите ларингоскоп левой рукой (для правых исследователей) и возьмите пару тупоконечных пинцетов. Используйте кончик ларингоскопа и щипцы, чтобы осторожно открыть рот.
  5. Вытяните язычок и hСтарый он в сторону, используя щипцы. Направляйте лезвие ларингоскопа к задней части рта. Держите ларингоскоп очень мягко под углом 90 ° до тех пор, пока не откроется отверстие трахеи. Держите ларингоскоп на месте.
  6. С другой стороны, возьмите подающую трубку, подключенную к концу трубки из полиэтилена, и вставьте ее в трахею. Поверните трехходовой клапан, чтобы доставить инокулум. Вытяните трубку из трахеи как можно скорее. Держите мышь в вертикальном положении на несколько секунд, чтобы позволить инокулуму вдыхать в легкие.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Мыши задыхаются и умирают, если трахея блокируется слишком долго.
  7. Удалите мышь с платформы. Время восстановления может варьироваться в зависимости от штаммов; Внимательно следите за мышью, следя за тем, чтобы животное полностью проснулось в течение 30 минут после процедуры.
  8. Внутрибрюшинно вводят 150 мг / кг D-люциферина и имитируют легкие с использованием системы визуализации in vivo 4, 24 и 48 ч после интратрахеальногоИнстилляция стимулов. Определите количество фотонов, испускаемых из определенных регионов, с помощью программного обеспечения производителя.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Модель транзиторной трансгенной мыши bIL-8-Luc использовалась для мониторинга in vivo воспаления легких у мышей, которым была назначена концентрированная бактериальная супернатант (30x), содержащий секретируемые факторы вирулентности. Индуцированный воспалительный ответ обнаруживали посредством визуализации in vivo в качестве увеличения сигнала BLI. Провоспалительная активность отчетливо обнаруживалась через 2,5 часа после инстилляции, хотя сигнал BLI достигал наивысшег...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

В предыдущей работе 11 был показан контраст между bIL-8-Luc-зависимыми BLI и BAL-маркерами. Он полагался на дифференциальную степень чувствительности внутри мышей 12 . По этой причине первое применение модели bIL-8-Luc к другому штамму мыши требует первоначального изучения воспалительного ответа, как с точки зрения BLI, так и с более стандартизованными воспалительными маркерами.

Трансфекция мышей вызывает легкое воспаление легких и активацию bI...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана проектом итальянского проекта кистозного фиброза FFC № 18/2013, FFC № 29/2015 и итальянской линией мускулистого фиброза через Veneto Branch-Associazione Veneta Lotta contro la Fibrosi Cistica Onlus.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
FMT 2500 Система флуоресцентной томографииPerkin Elmer Inc.Экспериментальный конструктор
IVIS Lumina серии II Доклинический In Vivo; Система визуализацииPerkin Elmer Inc.Экспериментальный конструктор
MMPsense 750 FASTPerkin Elmer Inc.NEV10001EXБеречь от света, хранить щуп при температуре 4°°; C
Инбредная самка BalbCHarlan Laboratories ИталияПеред использованием животных акклиматизировали в течение не менее 5 дней к местным условиям вивария
bIL-8-Luc Кафедрамедицинской ветеринарии, Университет Пармы, ИталияХраните плазмиду при температуре -20 °°; C
pGL3basic vectorPromegaE1751Сохранить вектор при -20 ° C
JetPEI ДНК реагент для трансфекцииPolyplus Transfection201B-001GСмесь ДНК и JetPEI была составлена с окончательным соотношением N/P 7
D-люциферин, калийная соль 1 гPerkin Elmer Inc.122796Беречь от света, хранить при температуре -20°С; C
Программное обеспечение Living Image CaliperLife Sciences,ExperimentalBuilder
IsofluraneESTEVE spa571329.8Не вдыхать
набор Bio-Plex Cytokine Anasay KitBio-Rad LaboratoriesM60-009RDPDХраните неоткрытый набор при 4 ° C
Автоматизированный счетчик клетокDasit XT 1800JЭкспериментальный строитель
Модель Penn-century DP-4M Инсуффлататор сухой мощностиPenn-centuryDPM-EXT
Система газовой анестезии XGI-8Perkin Elmer Inc.Экспериментальный конструктор
PE190 микро медицинская трубка2биологические инструменты sncBB31695-PE/8
Шприц без иглы 5 млTerumoSS*05SE1Разрезать доски поршня ножницами
Hamilton 0,10 мл (модель 1710)Газонепроницаемый81022
Discofix 3-way StopcockBraun4095111
Шприц с иглой 1 mLPic раствор3,071,260,300,320Использовать без иглы
Пластиковые подающие трубки 18ga x 50 мм2Биологические инструменты sncFTP-18-50Разрезать наискось кончик 

Ссылки

  1. Barnes, P. J. Therapeutic approaches to asthma-chronic obstructive pulmonary disease overlap syndromes. J Allergy Clin Immunol. 136 (3), 531-545 (2015).
  2. Cohen-Cymberknoh, M., Kerem, E., Ferkol, T., Elizur, A. Airway inflammation in cystic fibrosis: molecular mechanisms and clinical implications. Thorax. 68 (12), 1157-1162 (2013).
  3. Dhooghe, B., Noel, S., Huaux, F., Leal, T. Lung inflammation in cystic fibrosis: pathogenesis and novel therapies. Clin Biochem. 47 (7-8), 539-546 (2014).
  4. Durham, A. L., Caramori, G., Chung, K. F., Adcock, I. M. Targeted anti-inflammatory therapeutics in asthma and chronic obstructive lung disease. Transl Res. 167 (1), 192-203 (2015).
  5. Sagel, S. D. Noninvasive biomarkers of airway inflammation in cystic fibrosis. Curr Opin Pulm Med. 9 (6), 516-521 (2003).
  6. Starkey, M. R., et al. Murine models of infectious exacerbations of airway inflammation. Curr Opin Pharmacol. 13 (3), 337-344 (2013).
  7. Cacalano, G., et al. Neutrophil and B cell expansion in mice that lack the murine IL-8 receptor homolog. Science. 265 (5172), 682-684 (1994).
  8. Simonet, W. S., et al. Long-term impaired neutrophil migration in mice overexpressing human interleukin-8. J Clin Invest. 94 (3), 1310-1319 (1994).
  9. Stellari, F. F., et al. In vivo imaging of transiently transgenized mice with a bovine interleukin 8 (CXCL8) promoter/luciferase reporter construct. PLoS One. 7 (6), e39716(2012).
  10. Stellari, F., et al. In vivo imaging of the lung inflammatory response to Pseudomonas aeruginosa and its modulation by azithromycin. J Transl Med. 13, 251(2015).
  11. Stellari, F., et al. In vivo monitoring of lung inflammation in CFTR-deficient mice. J Transl Med. 14 (1), 226(2016).
  12. De Simone, M., et al. Host genetic background influences the response to the opportunistic Pseudomonas aeruginosa infection altering cell-mediated immunity and bacterial replication. PLoS One. 9 (9), e106873(2014).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

8Pseudomonas aeruginosain vivoD
Модель переходной трансгенерации IL-8 для
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.