Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Структурно-функциональные исследования в мышиных эмбриональных стволовых клеток Использование Рекомбиназа-опосредованного кассетный Обмен

10.9K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/55575

⸱

27 апреля 2017 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biomedical Molecular Biology, Ghent University, 2Inflammation Research Center, VIB, 3Center for Medical Genetics, Ghent University Hospital, 4Cancer Research Institute Ghent (CRIG), 5Department of Basic Medical Sciences, Faculty of Medicine and Health Sciences, Ghent University, 6Helmholtz Center for Infection Research, 7Mammalian Functional Genetics Laboratory, Division of Blood Cancers, Australian Centre for Blood Diseases, Department of Clinical Haematology, Monash University and Alfred Health Alfred Centre

В этой статье

Краткое содержание

Белки часто содержат несколько доменов, которые могут вызывать различные клеточные функции. Генные выбивки (KO) не считают это функциональное разнообразие. Здесь мы сообщаем о рекомбинации опосредованного обмена кассетного (RMCE) основа структурно-функциональный подходе в нокауте эмбриональных стволовых клеток, что позволяет для молекулярного рассечения различных функциональных доменов или вариантов белка.

Аннотация

Генная инженерия в мышиных эмбрионов или эмбриональных стволовых клеток (mESCs) позволяет для изучения функции данного белка. Белки являются лошадками клетки и часто состоят из нескольких функциональных доменов, которые могут быть под влиянием посттрансляционных модификаций. Истощение всего белка в условном или конститутивном цепных из (KO) мышей не принимать во внимание это функциональное разнообразия и регулирование. Линии MESC и производная модель мыши, в котором стыковочный участок для FLPe рекомбинации опосредованного обмена кассеты (RMCE) был вставлен в ROSA26 (R26) локуса, ранее сообщались. Здесь мы сообщаем о структурно-функциональном подходе, который позволяет молекулярное рассечение различных функциональных многодоменного белка. С этой целью, RMCE-совместимыми мыши должны быть скрещены с мышами KO, а затем RMCE-совместимый mESCs KO должен быть изолирован. Далее, группа предполагаемых спасательных конструкций может быть введена в локус R26 через RMCE targetiнг. Спасательный кДНК-кандидатов может быть легко вставлен между RMCE участками ориентации вектора с использованием рекомбинации клонированию. Далее, KO mESCs трансфицируют с адресным переносчиком в сочетании с выражением рекомбиназы плазмиды FLPe. RMCE задействуется ген неомицин-сопротивления промотор-менее в док-сайтов ROSA26 и позволяет для выбора правильного события таргетинга. Таким образом, эффективность высокой таргетинга, близкие к 100%, получают, что позволяет для вставки множества предполагаемых спасательных конструкций в полу-высокой пропускной способности способом. Наконец, множество R26-управляемых спасательных конструктов могут быть проверены на предмет их способности, чтобы спасти фенотип, который наблюдался в родительских mESCs КО. Мы представляем структурно-функциональные исследования корректуры из-принципа в p120 катениной (p120ctn) KO mESCs с использованием энтодермы дифференциации эмбрионального телец (ЭТ) в качестве фенотипического считывания. Такой подход позволяет выявить важные области, предполагаемые пути вниз по течению, и болезни релевантной точкимутации, которые лежат в основе KO фенотипов для данного белка.

Введение

Предполагается, что геномы млекопитающих содержат около 20000 белок-кодирующих генов. Альтернативный сплайсинг и посттрансляционные модификации дальнейшего увеличения белка репертуара. Белки имеют модульную конструкцию 1 и часто содержат несколько доменов взаимодействия, которые позволяют их набор в различные белковых комплексы и их участие в многочисленных клеточных процессах 2. Одним из примеров является многофункциональный белок под названием p120ctn. p120ctn кодируется геном Ctnnd1 и состоит из большого центрального домена армадилл повтора в окружении N-концевой области и С-концевой. Домен армадилла из p120ctn связывается с высоко консервативным доменом околомембранного классических кадхеринов, которые участвуют в межклеточной адгезии, но она также связывается с репрессором транскрипции Kaiso. N-концевой домен p120ctn взаимодействует с различными киназ, фосфатаз, небольшие RhoGTPases, и ассоциированный с микротрубочками рroteins 3. Интересно отметить , что в результате альтернативного сплайсинга, p120ctn изоформы могут быть получены из четырех альтернативных стартовых кодонов 4. p120ctn изоформы 1A является самым длинным, как это переводится с большей-5' старт-кодоном и содержит полноразмерный N-концевой сегмент. В p120ctn изоформ 3 и 4, это N-концевой сегмент удаляется частично и полностью, соответственно. Понимание точной роли белков (или белкового изоформ) и их доменов в различных клеточных функциях остается проблемой.

Ген ориентации в mESCs позволяет исследовать функции белка через генетической делеции соответствующего гена и широко способствовал выявлению онтогенетически важных и болезненных значимых генов и путей. Этот прорыв в обратной генетики явилась результатом достижений в области изоляции MESC и гена ориентации за счет гомологичной рекомбинации 5 . Гомологичная рекомбинация представляет собой процесс, в котором происходят обмен ДНК-фрагменты между двумя аналогичными или идентичными нуклеиновыми остатками после того, как двухцепочечный (DS) разрывами ДНК. Как правило, HR является неэффективным, поскольку дц перерывы являются нечастыми. В последнее время , эффективность гомологического-направленный ген ориентации может быть увеличена с помощью сайта-специфических нуклеаз 6, 7, но , к сожалению, они склонны к вне целевых эффектов 8. Более надежный метод для того, чтобы ген таргетирование RMCE, который основан на конкретных участках систем рекомбинации, таких как Cre / LoxP или FLPe / Frt. LoxP и последовательность Frt найдены в бактериофаге Р1 и Saccharomyces CEREVISIAE, соответственно, и состоит из 34 пар оснований , в том числе последовательности асимметричных 8 пар оснований, которая определяет ориентацию сайта. С другой стороны, ориентация, например, два LoxP сайтов в участке ДНК будет определять, является ли становится вырезала floxed ДНК или яnversed при Cre-опосредованной рекомбинации 9. Кроме того, Cre может также индуцировать транслокацию, если два участка расположены на разных хромосомах. RMCE воспользовался преимуществом неспецифических сайтов рекомбинации, которые не вступают в перекрестную реакцию и внедренных в геномной локуса. В присутствии донора плазмиды, содержащая фрагмент ДНК , фланкированной один и та же неспецифических сайтами, то рекомбиназа будет вставить этот фрагмент ДНК в RMCE-совместимый геномный локус из - за двойное одновременное транслокации (рисунок 1). Здесь только правильно RMCE-ориентированные клоны могут оказать лекарственную устойчивость благодаря промотору на входящем векторе , который восстанавливает «ловушка» промотор-менее ген резистентности к неомицину (Neo R) присутствует в R26 геноме дока - клетках (фигура 1) 10, 11. Это приводит к очень высокой эффективности таргетинга, часто близкой к 100%, 11 </ SUP> 12. В заключении, на основе RMCE нацеливание имеет высокую эффективность и может быть использовано для структуры-функции исследований; Однако, это требует предварительно спроектированных геномного локуса.

figure-introduction-1
Рисунок 1. Схематическое изображение RMCE-опосредованной нацеливание. RMCE позволяет для обмена сегментов ДНК из входящего вектора направленного к определенной геномной локуса, если оба питают два неспецифических сайтов FRT (изображенные белыми и красными треугольниками). Кроме того, разработано геномный локус содержит ген без промотора и усеченной неомицин-сопротивление (Neo R). Предоставляя промотор и стартовый кодон во фрагменте ДНК входящего, только правильные события рекомбинации восстановить устойчивость к неомицину, что приводит к высокой эффективности таргетинга. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию тего фигура.

Геном инжиниринг в mESCs позволяет для генерации RMCE-совместимых мышей. В 1981 году две группы удалось захватить плюрипотентных клеток из внутренней клеточной массы (ICM) бластоцист и в поддержании их в культуре 13, 14. mESCs способны к самообновлению и дифференцировке во все типы эмбриональных и взрослых клеток, в том числе зародышевых клеток линии. Таким образом, ген ориентации в mESCs дает обратное генетические исследования путем разработки конститутивного или условного (с использованием системы / LoxP Cre) мышей KO. Тем не менее, классический способ выделения клеток мыши ES очень неэффективно. Несколько основных улучшений значительно увеличили вероятность успеха для получения линий MESC, в том числе использование определенного сывороточного замещения (SR) среды 15, чередуя MESC среде , содержащей SR и фетальной бычьей сыворотки (FBS) 16, а также использование фармакоЛогические соединения , такие как pluripotin или 2i 17. Pluripotin, небольшая синтетическая молекула, позволяет для распространения mESCs в недифференцированном состоянии в отсутствии фактора ингибировани лейкоза (LIF) и эмбриональных фибробласты мышей (MEFs) 18. Наконец, было показано , что mESCs может быть выделен с очень высокой эффективностью (близкой к 100%) , когда / ФБС протокола SR среднего чередование сочетается с LIF и pluripotin 19, 20. Эти протоколы позволяют эффективно изолировать RMCE-совместимый KO mESCs, которые впоследствии могут быть использованы для исследований структурно-функциональных.

В этой статье описан способ, который дает возможность определить ключевые домены или остатки в пределах белка, которые отвечают за специфических клеточных процессов. С этой целью трубопровод передовых технологий, позволяющих эффективно изоляции мЭСК, ориентации вектора сборки и мЭСК нацеливания было создатьд. Как таковые, большие панели с изоформы белка, мутанты доменов и вниз по течению эффекторов могут быть введены в KO mESCs и могут быть оценены по их способности , чтобы спасти в пробирке KO фенотип.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Были проведены все эксперименты на мышах по институциональным, национальным и европейским нормам животных.

1. Выделение RMCE-совместимых mESCs KO

  1. Порода гетерозиготных мышей KO с RMCE-совместимых мышей, таких как ROSALUC мышей 10 или ROSA26-иПСК мышей 21. Оба RMCE-совместимых мышей поддерживали на смешанном 129 / C57BL6 / Swiss фоне.
    Примечание: Пересечение с гетерозиготным мышеем KO рекомендуются преодолеть эмбриональную летальность у гомозиготного мышея KO.
  2. С помощью ПЦР , чтобы выбрать гетерозиготных мышей KO , содержащих RMCE кассету в R26 локуса 12.
  3. Порода RMCE-совместимая, гетерозиготный мышей KO с гетерозиготным мышеем KO и изолировать RMCE-совместимой, гомозиготные бластоцисты KO.
    1. Установите время вязку вечера и проверить спаривание пробки на следующее утро.
      Примечание: Вилки изготовлены из скоагулированных выделений из коагулирующих и везикулярных желез у мужчин.Эти пробки заполняют влагалище самки и сохраняются в течение 8 - 24 ч после разведения. Вставленные женщины считаются проведение 0,5 DPC (дней после коитуса) эмбрионов.
      1. Чтобы проверить наличие заглушек, поднимите самку основанием хвоста и изучить ее влагалища для белесой массы. Разведите губы вульвы слегка наклонным зондом, когда вилка трудно увидеть. Отдельные подключенные самки из их самцов.
    2. Сбор бластоцисты на 3,5 ДПЗ.
      1. Эвтаназии беременных самок утвержденного метод (например, рак шейки дислокации). Сделать midventral надрез и рассекают матку и яйцевод (все еще привязаны друг к другу) с использованием тонких ножниц и щипцов.
      2. Изгиб 26-калибровочную иглу в угол 45 °. Приложить 1-мл шприц, заполненный средой М2 к этой изогнутой иглы и использовать его, чтобы смыть бластоцисты из матки в крышку 10 см чашку.
        1. Вставьте иглу в конце матки, которая находится ближе всего кяйцевод. Удерживая иглу в месте с тонким пинцетом, нажимая на поршень; отек матки указывает на успешное гиперемию.
      3. Используйте рот пипеткой (с диаметром 100 - 200 мкм), чтобы собрать все эмбрионы и мыть их дважды в капле свежей среды М2. Сразу же после мытья их, передают бластоцисты в культуре пластины (см ниже).
        Примечание: Вскрытие и обработка бластоциста от должно быть сделано в ламинарном потоке воздуха.
  4. Изолировать RMCE-совместимый KO mESCs
    1. Подготовка 12-луночный планшет с митомицин-С-обработанных DR4 MEFs (см Таблицу материалов) за один день до изоляции бластоцисты.
      Примечание: Эти MEFs были выделены из мышей Tg (DR4) 1Jae / J , которые содержат четыре гена наркотиков по выбору и придают устойчивость к неомицину, гигромицину, пуромицину, и 6-тиогуанин 22.
      1. Шерсть все культуральные планшеты с 0,1% желатина. Добавить 0,1% желатинав культуральные планшеты, инкубируют в течение 5 мин при 37 ° С в 5% CO 2, и аспирацию раствора желатина. Семенной одна четверть флакона Р2 MEFs в 12-луночный планшет и выращивают их в 2 мл среды MEF (таблица 1, таблица материалов) к вырожденной монослоя 19.
      2. Деактивировать их с митомицином-C (10 мкг / мл) в течение 3 ч и промыть их дважды фосфатно-буферным солевым раствором (PBS) 19.
    2. Использование рот пипеткой, высевания бластоцисты на желатинизированные 12-луночные планшеты (1 хорошо / эмбрион), с митомицином-С-обработанных MEFs в SR-ES клеточной среде (2 мл / лунку) с добавлением либо 2 мкМ pluripotin или 2i (1 мкМ ингибитора Эрк PD0325901 и 3 мкМ ингибитора GSK3 CHIR99021). Инкубируют при 37 ° С в 5% СО 2.
    3. Обновление среды клеток SR-ES (с добавлением pluripotin или 2i) каждые 2 - 3 дней.
    4. Проверьте каждые бластоцисты при виде stereomicroОбъем при увеличении 4.0x и проверить на штриховку и прикрепление к MEF слою.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Когда бластоцисты люк, они теряют пеллюцид, который инкапсулирует их. Скважины с незамужними бластоцистами должны быть обновлены с помощью рта пипетки.
    5. Выберите индивидуальные ICM выросты (с использованием стереомикроскопа) через 10 - 12 дней культивирования с использованием P10 пипетки с одноразовыми наконечниками. Передача отросток в приблизительно 10 мкл среды в V-образную форму, 96-луночный планшет, содержащий 30 мкл / лунку PBS (при комнатной температуре).
    6. Добавьте 50 мкл 0,25% трипсина в каждую лунку с помощью многоканальной пипетки и инкубировать в течение 3 мин при 37 ° С в 5% СО 2.
    7. Добавьте 100 мкл ФБС, содержащего MESC среду; диссоциируют МКД наросты на отдельные клетки с помощью пипетки в 10-15 раз; и передачи диссоциированных клеток к митомицин-С-лечение, 96-луночные планшеты MEF, которые были получены за один день до того, как колонии ICM собирают.
    8. От этого шага вперед, оми т pluripotin или 2i из среды MESC. На следующий день, изменить среду от FBS- к SR-среде, содержащей MESC (100 мкл / лунку).
    9. Expand установленных MESC линии от 96- до формата 24-луночного 19.
      1. Промывают клетки с 200 мкл PBS, добавляют 50 мкл трипсина, и инкубируют в течение 5 мин при 37 ° С в 5% CO Добавьте 100 мкл ФБС-среде на основе MESC. диссоциируют с помощью пипетки 10 - 15 раз с помощью многоканальной пипетки; и передачи диссоциированных клеток на митомицин-С-лечение, 24-а MEF пластин.
      2. Изменение в SR на основе среды на следующий день. Разверните mESCs аналогичным образом от 24- до формата 6-луночного. Сделать 3 - 4 обморожений из вырожденного 6-луночного планшета 19.
    10. Определение RMCE-совместимый, гомозиготные mESCs KO с использованием ПЦР - праймеров для локуса R26 23 и KO аллеля выбора (в данном случае, p120ctn; p120ctn для МКП нуль и floxed аллели были описаны ранеедеваха = "Xref"> 12).

figure-protocol-1
Таблица 1. Культура СМИ. Все средства массовой информации хранили при 4 ° С и нагревали до 37 ° С 30 мин перед использованием.

2. Генерация RMCE-совместимых адресный переносчик Использование Рекомбинация Cloning

  1. Клон спасение конструкций в рекомбинационных-совместимые векторы с использованием фермента рестрикции (RE) основе или на основе ПЦР-24 способов клонирования. Убедитесь, что кДНК содержат стоп-кодон.
    1. Дизайн AttB меченные праймеры 24. Убедитесь, что прямой праймер содержит следующие элементы: а GGGG протяжение, сайт attB1, компоновщик, последовательность Козака, и около 25 нуклеотидов спасения кДНКа (начиная с ATG). Убедитесь в том, что обратный праймер имеет аналогичный состав: GGgg стрейч, в AttB2 сайт, компоновщик, и около 25 NUCleotides спасательного кДНК (обратная комплемента).
    2. Amplify кДНК с помощью ПЦР спасательную для получения AttB-фланкированные кДНК.
    3. Выполнение реакции 10 мкл-BP с 100 нг AttB-фланкированной кДНК и 150 нг вектора донора рекомбинации-совместимый, который содержит ген устойчивости к канамицину.
    4. Transform 5 мкл смеси BP в теплового шока компетентных МС1061 Escherichia coli (E.coli) бактерии (подобные тем , которые описаны в пункте 2.3).
    5. Определить колонии, содержащие правильные спасательный кДНК-содержащих векторы (подобные тем, которые описаны в пункте 2.4)
  2. Выполните 10 мкл реакции LR с использованием 100 нг кДНК-спасательного вектора, содержащего; 150 нг Cre-вырезанной pRMCE-DV1 вектора 11 (LMBP 8195); и 2 мкл смеси рекомбиназы, который содержит фаговый кодированный интегразы и excisionase и бактериальный фактор интеграции хозяина. Инкубировать в течение 2 ч при 25 ° С.
    Примечание: Реакция LR является рекомбинация естьиона, в котором клон, содержащий запись ATTL сайты и вектор, содержащий целевой атр сайты рекомбинируют с помощью фермента Clonase смеси LR. Это приводит к экспрессии клона, содержащему сайты attB, фланкирующий ген интереса.
  3. Transform 5 мкл LR смесей теплового шока компетентных МС1061 бактерии E.coli.
    1. Добавьте 5 мкл смеси LR с насечками, огибала, 2-мл с завинчивающейся крышкой пробирку с 40 мкл теплового шока-компетентных бактерии E.coli , и инкубировали в течение 20 мин на льду. Инкубировать в течение 5 мин при 37 ° С.
    2. Добавить 1 мл бульона Лурии (LB) среды и инкубируют в течение 1 ч при 37 ° С. Пластина 50 мкл на ампициллин (Amp; 100 мкг / мл) -содержащие агаром и выращивают в течение ночи при 37 ° С.
  4. Определить колонии с правильным вектором таргетинга.
    1. Pick 5 колоний случайным образом с использованием наконечника P200. Передача наконечник в пробирку, содержащую стеклянную 2 - 5 мл LB среды и расти в течение ночи при 37 ° С.
    2. бывшийтракта плазмидной ДНК из бактериальных культур с использованием коммерчески доступных наборов.
    3. Проверка их с помощью ВЭ дайджестов и секвенирования. Вырезать 0,5 - 2 мкг плазмиды с использованием 0,2 мкл RE (20 ед / мкл) и 1 мкл соответствующего буфера 10х в реакции 10 мкл. Инкубировать в течение по крайней мере 1 ч при 37 ° С и отдельно на 1% агарозном геле. Выбрать для колоний с предсказанным рисунком фрагментов ДНК.
      1. Анализ подтвержденных векторов (50 нг / мкл) с Tlox F (ATC ATG TCT GGA ТСС ССА ТС) и IRES R (GGG GCG GAA TTC GAT ATC AAG) праймеров (5 пмоль / мкл) с помощью Sanger секвенирования.

3. RMCE-опосредованной MESC Нацеливание спасения Создаёт к R26 локуса

  1. Начало культуры RMCE-совместимый KO mESCs и прохождения им, по крайней мере дважды на МЭФ в FBS среде на основе мЭСК. Разделить на mESCs в желатинизированной пластине 6-луночной.
  2. На следующий день, обновить клетки, примерно 50% сплошности, с 1,5мл ФБС-среде на основе MESC и трансфекции mESCs с Cre-вырезанной pRMCE-DV1 ориентации вектора, содержащего кДНК спасательную.
    1. Сделайте смесь ДНК. Добавить 1 мкг вектора направленного и 1 мкг FLPe-экспрессирующей плазмиды 25 до 250 мкл среды DMEM чистой.
    2. Сделать Липофекцию смесь. Добавить 7 мкл липофекции на основе трансфекции реагента (например, Липофектамин 2000) до 250 мкл среды DMEM чистой и инкубировать в течение 5 мин при комнатной температуре (RT).
      Примечание: Эквивалент RMCE ориентации эффективность была получена с использованием других реагентов Липофекции на основе (например, Липофектамин LTX и Effectene).
    3. Смешайте смесь ДНК с липофекцией смесью и инкубируют в течение 20 мин при комнатной температуре. Пипетировать трансфекции смесь на обновленной mESCs. Вихревой аккуратно и оставить на ночь.
  3. Через день после трансфекции, разделить все mESCs из 6-луночного планшета для культивирования блюда 10 см с вырожденным слоем DR4 MEFs и 10 мл FBS на основе мESC среда.
  4. Через два дня после трансфекции, выберите MESC клонов с правильной FLPe-опосредованный обмен кассеты добавлением 0,2 мг / мл G418 (100x) к среде.
    ПРИМЕЧАНИЕ: кривая деактивации для каждой партии С418, чтобы определить самую низкую концентрацию G418, которая убивает весь mESCs.
  5. Обновите mESCs ежедневно с G418, содержащей мЭСК средой. Колонии должны появиться через 7 - 10 дней, так что выбрать и расширить их в соответствии с шагом 1.4.
  6. Проверьте правильность клонов методом ПЦР 11.

4. Дифференцирование mESCs в эмбриональном телец (ЭТ)

  1. Начало культуры KO mESCs с R26-приводом спасательных конструкций и прохождения их по крайней мере дважды на МЭФ в FBS среде на основе мЭСК. Прохождение mESCs раза на желатинизированных 6-луночные планшеты, чтобы избавиться от МЭФА.
  2. Мытье с PBS и Trypsinize почти-сливные культур мЭСК. Пластина диссоциированных mESCs в различных разведениях (1/20 и 1/40) на неклейких, бактериально-класс домашних животныхри-блюда в дифференциации среды.
  3. Разрешить ЭТ сформировать в эти блюда в течение 30 дней. Обновление среды каждые 2 - 3 дней, используя следующую процедуру: передать суспензии EB в пробирку 50 мл, пусть ЭТ оседает под действием силы тяжести, удалить супернатант, добавить свежую среду, а также передавать суспензии EB обратно в бактериальный-класс блюдо.
  4. Анализ целевых mESCs и ЭТ с помощью иммунофлуоресценции и просвечивающей электронной микроскопии с использованием протоколов , которые были описаны ранее 12.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Процедура , чтобы изолировать RMCE-совместимой КО MESC линий изображена на рисунке 2. Два последовательных вязки должны получить RMCE-совместимый KO бластоцисты. Во-первых, гетерозиготные мыши KO скрещены с RMCE-совместимых мышей, чтобы получить RMCE-совместимый, гетерозиготных мышей KO. Эти мыши затем используются для синхронизированных скрещиваний с другим гетерозиготным мышеем KO, чтобы получить 3,5-DPC, RMCE-совместимого, гомозиготные бластоцисты KO. Вероятность полу...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Наш метод изоляции мЭСК является удобным и не требует особых навыков или оборудования, таких как микрохирургии бластоцисты. Таким образом, эта технология доступна для значительной части научного сообщества. Любой человек, имеющий базовый опыт культивирования клеток могут распространяться ICM наросты и установить mESCs линии. Тем не менее, промывочные и обработка бластоцисты требуют некоторой практики. Рот пипетка используется для передачи бластоцист и состоит из микропипетки, держатель микропипетки, насосно - компрессор...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Мы благодарим Jinke D'Гонт, Frederique Van Rockeghem, Натали Фарла, Келли Лемейр и Рит De Rycke за отличную техническую поддержку. Мы также благодарим Eef Parthoens, Evelien Ван Hamme и Аманда Гонсалвес из биоимиджинга ядра фонда научно-исследовательского центра Воспаление за помощь экспертов. Мы признаем член нашей исследовательской группы за ценное обсуждение. Эта работа была поддержана научной политики Бельгии (Belspo Межвузовский Аттракцион Столбы - Премия IAP VII-07 DevRepair; https://devrepair.be), Королева Элизабет Медицинский фонд, Бельгия (GSKE 2008-2010 годы; HTTP: // WWW .fmre-gske.be), так и действиями Согласованное исследований (ГОА 01G01908) из университета Гента, Бельгия (http://www.ugent.be/en/ghentuniv). СГ постдокторант из Фландрии научных фондов (FWO-V).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ROSALUC Мышиизготовленные в домашних условияхзамороженная сперма доступна по запросу
R26-iPSC мышиизготовленные в домашнихзамороженная сперма доступна по запросу
Сосудистый зондFine Science Tools10160-13для проверки на копуляционные пробки
M2 среднийSigma-AldrichM7167делают аликвоты и хранят при -20 °°; C
Тонкие щипцы (Dumont #5 Standard tip Студенческие щипцы)Fine Science Tools11251-10спрей с 70% EtOH перед использованием (не автоклавировать)
23 G иглыFineject8697
шприцы 1-млSoft-ject6680
60-мм бактериальные пластины (для промывки) GosselinBB60-01
Ротовая пипеткасобственного производствасм. обсуждение
Эмбриональные фибробласты мышей (MEFs, TgN (DR4)1 штамм Jae)ATTCSCRC-1045
TgN (DR4)1 Jae мышиThe Jackson Laboratory3208
Mitomycin C Sigma-AldrichM0503
Фосфатный буферный физиологический раствор (PBS) без кальция или магнияGibco14190-094
Tg(DR4)1Jae/JJAX3208мыши, которые содержат четыре лекарственно-селективных гена и DR4 MEFS придает устойчивость к неомицину, пуромицину, гигромицину и 6-тиогуанину
0,1% желатинаSigma-AldrichG1393Растворите 0,5 г в 500 мл дистиллированной воды, в автоклаве и храните при температуре 4°C.
Трипсин (0,25%) Gibco25200-056
2 μ M pluripotinCayman Chemical 10009557
pRMCE-DV1BCCM/LMBP collection LMBP 08870общедоступный из коллекции BCCM/LMBP (http://bccm.belspo.be) 
коллекция pRMCE-DV1BCCM/LMBP LMBP 08195общедоступный из коллекции BCCM/LMBP (http://bccm.belspo.be) 
pCAG-FlpE-IRES-Puro-pA Addgene20733
термошок компетентный DH5&альфа; бактерии изготовлен в собственном производстве
Gateway pDONR221 векторThermo Fisher12536-017содержит ген устойчивости к канамицину
BP clonase II mix ThermoFisher11789-020
LR clonase II mixThermo Fisher11791-020 
Бульон Лурия (LB) 
Ампициллин 
Applied Biosystems 3730XL Анализатор ДНКThermo Fisher3730XL
G418Thermo Fisher11811-023
Реагент для трансфекции Lipofectamine 2000 Реагент для трансфекцииThermo Fisher11668027
Lipofectamine LTX Реагент для трансфекцииThermo Fisher15338100
Реагентдля трансфекции EffecteneQiagen301425
GATEWAY pENTR 1A векторThermo FisherA10462совместимая с рекомбинацией векторная
мышь моноклональное антитело против p120ctn антителаBD Transduction Laboratories610134
мыши моноклональное антитело против экадгеринаBD Transduction Laboratories610181
General equipment
Стерильные инструментытонких ножниц и щипцов для рассечения матки
Стерильные пипетки: 5 мл, 10 мл и 25 мл
15 мл и 50 мл конические центрифужные пробирки
культуральные планшеты V-образное дно и плоское дно)
Чашки для культур: 24 лунки, 12 лунок и 6 лунок
Многоканальные пипетки (до пипеток 30, 50, 100 и 200 мкм; L) 
Стерильные многоканальные резервуары Доступ
к ламинарному потоку
Доступ к инкубатору при 37°С; C с 5% CO2
Доступ к инвертированному микроскопу
Доступ к настольной центрифуге
Доступ к стереомикроскопу с пропускаемым светом 
Culture media
MEF Mediumхранящийся при 4 ° C; согреть 30 мин при 37 °°; C перед применением
Dulbecco' s модифицированный Eagle' s среда (DMEM)Gibco41965-062
10% фетальная бычья сыворотка (FBS)Sigma-AldrichF-7524
L-глутамин (2 мМ)Gibco25030-024 
Пируват натрия  (0,4 мМ)Gibco11360-039 
пенициллин (100 ЕД/мл)Gibco15140-122 
стрептомицин (100 &; g/mL)Gibco15140-122 
Среда mESC на основе SR mediumstorage at 4 ° C; согреть 30 мин при 37 °°; C перед применением
DMEM/F12Gibco31330-038смешанный в соотношении 1
:1 15% нокаутирующая сыворотка для замещения (SR)Gibco10828– 028
L-глутамин (2 мМ)Gibco25030-024 
0,1 мМ заменимых аминокислот Gibco11140-050
пенициллин (100 ЕД/мл)Gibco15140-122 
стрептомицин (100 &; g/mL)Gibco15140-122 
&бета;-меркаптоэтанол (0,1 мМ) Сигма-ОлдричМ 3148 
2 000 Ед/мл рекомбинантной мыши LIF (IRC/VIB Protein Service facility)
среда mESC на основе FBS (аналогичная среде mESC на основе SR)хранящаяся при 4° C; Тепло 30 мин при 37°С; C перед применением
Knockout DMEMGibco10829-018 
15% FBSHycloneSH30070.03E
Differention Mediumхранящийся при 4 &� C; согреть 30 мин при 37 °°; C перед использованием
модифицированного Dulbecco's Medium (IMDM) от Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)Gibco21980-032 
15% FBSHycloneSH30070.03E
5% CD Hybridoma Medium (1x) жидкость   Gibco11279-023 
2 мМ L-глутаминGibco25030-024 
0,4 мМ 1-тиоглицеринSigma-AldrichM-6145
50; г/мл аскорбиновой кислотыSigma-AldrichA-4544 
пенициллин (100 ЕД/мл)Gibco15140-122 
стрептомицин (100 &; g/mL)Gibco15140-122 
2i
1 μ Ингибитор M Erk PD0325901 Axon MedchemAxon 1408
3 μ Ингибитор M Gsk3 CHIR99021Axon MedchemAxon 1386
, , , условиях, мыши для препарирования 96-луночные воздуха

Ссылки

  1. Gul, I. S., Hulpiau, P., Saeys, Y., van Roy, F. Metazoan evolution of the armadillo repeat superfamily. Cell Mol Life Sci. , (2016).
  2. Valenta, T., Hausmann, G., Basler, K. The many faces and functions of beta-catenin. EMBO J. 31, 2714-2736 (2012).
  3. Pieters, T., van Hengel, J., van Roy, F. Functions of p120ctn in development and disease. Front Biosci. 17, 760-783 (2012).
  4. Keirsebilck, A., et al. Molecular cloning of the human p120ctn catenin gene (CTNND1): Expression of multiple alternatively spliced isoforms. Genomics. 50, 129-146 (1998).
  5. Capecchi, M. R. Gene targeting in mice: functional analysis of the mammalian genome for the twenty-first century. Nat Rev Genet. 6, 507-512 (2005).
  6. Wang, H., et al. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 153, 910-918 (2013).
  7. Yang, H., et al. One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 154, 1370-1379 (2013).
  8. Fu, Y., et al. High-frequency off-target mutagenesis induced by CRISPR-Cas nucleases in human cells. Nat Biotechnol. 31, 822-826 (2013).
  9. Branda, C. S., Dymecki, S. M. Talking about a revolution: The impact of site-specific recombinases on genetic analyses in mice. Dev Cell. 6, 7-28 (2004).
  10. Sandhu, U., et al. Strict control of transgene expression in a mouse model for sensitive biological applications based on RMCE compatible ES cells. Nucleic Acids Res. 39, 1(2010).
  11. Haenebalcke, L., et al. Efficient ROSA26-based conditional and/or inducible transgenesis using RMCE-compatible F1 hybrid mouse embryonic stem cells. Stem Cell Rev. 9, 774-785 (2013).
  12. Pieters, T., et al. p120 Catenin-Mediated Stabilization of E-Cadherin Is Essential for Primitive Endoderm Specification. PLoS Genet. 12, e1006243(2016).
  13. Evans, M. J., Kaufman, M. H. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 292, 154-156 (1981).
  14. Martin, G. R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 78, 7634-7638 (1981).
  15. Cheng, J., Dutra, A., Takesono, A., Garrett-Beal, L., Schwartzberg, P. L. Improved generation of C57BL/6J mouse embryonic stem cells in a defined serum-free media. Genesis. 39, 100-104 (2004).
  16. Bryja, V., et al. An efficient method for the derivation of mouse embryonic stem cells. Stem Cells. 24, 844-849 (2006).
  17. Ying, Q. L., et al. The ground state of embryonic stem cell self-renewal. Nature. 453, 519-523 (2008).
  18. Chen, S., et al. Self-renewal of embryonic stem cells by a small molecule. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 17266-17271 (2006).
  19. Pieters, T., et al. Efficient and User-Friendly Pluripotin-based Derivation of Mouse Embryonic Stem Cells. Stem Cell Rev. 8, (2012).
  20. Yang, W., et al. Pluripotin combined with leukemia inhibitory factor greatly promotes the derivation of embryonic stem cell lines from refractory strains. Stem Cells. 27, 383-389 (2009).
  21. Haenebalcke, L., et al. The ROSA26-iPSC Mouse: A Conditional, Inducible, and Exchangeable Resource for Studying Cellular (De)Differentiation. Cell Rep. 3, (2013).
  22. Tucker, K. L., Wang, Y., Dausman, J., Jaenisch, R. A transgenic mouse strain expressing four drug-selectable marker genes. Nucleic Acids Res. 25, 3745-3746 (1997).
  23. Nyabi, O., et al. Efficient mouse transgenesis using Gateway-compatible ROSA26 locus targeting vectors and F1 hybrid ES cells. Nucleic Acids Res. 37, 55(2009).
  24. Katzen, F. Gateway((R)) recombinational cloning: a biological operating system. Expert Opin Drug Discov. 2, 571-589 (2007).
  25. Schaft, J., Ashery-Padan, R., vander Hoeven, F., Gruss, P., Stewart, A. F. Efficient FLP recombination in mouse ES cells and oocytes. Genesis. 31, 6-10 (2001).
  26. Spencer, H. L., et al. E-cadherin inhibits cell surface localization of the pro-migratory 5T4 oncofetal antigen in mouse embryonic stem cells. Mol Biol Cell. 18, 2838-2851 (2007).
  27. Stryjewska, A., et al. Zeb2 Regulates Cell Fate at the Exit from Epiblast State in Mouse Embryonic Stem Cells. Stem Cells. , (2016).
  28. Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. Manipulating the mouse embryo: A laboratory manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Third edn (2003).
  29. van den Berghe, V., et al. Directed migration of cortical interneurons depends on the cell-autonomous action of Sip1. Neuron. 77, 70-82 (2013).
  30. Li, J., et al. The EMT transcription factor Zeb2 controls adult murine hematopoietic differentiation by regulating cytokine signaling. Blood. , (2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Рекомбинационный обмен кассеттаргетинг локуса Rosa26вставка спасательной конструкцииэкспрессия рекомбиназы FLPeселекция по неомициновой резистентностианализ дифференцировки энтодермынокаут p120-катенинаформирование эмбриоидных телецскрининг генетического спасения
Структурно-функциональные исследования в мышиных эмбриональных стволовых клеток Использование Рекомбиназа-опосредованного кассетный Обмен
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.