Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Мышиных холин недостаточным, дополнены Ethionine (CDE) модель хронической травмы печени диета

11.4K просмотров

DOI:

10.3791/56138

21 октября 2017 г.

В этой статье

Краткое содержание

Здесь мы описываем общий метод, чтобы вызвать хронические повреждения печени в мышах, кормления Дефицит холина и ethionine дополнены диеты (CDE). Мы демонстрируем, наблюдение за работоспособностью, печени перфузии, изоляции и сохранения. Время курса шесть недель может сообщить о повреждения печени, Патогистологический центр, фиброз, воспалительных и печени прогениторных клеток ответов.

Аннотация

Хронические заболевания печени, таких как вирусный гепатит, алкогольная болезнь печени или Безалкогольные жирная болезнь печени, характеризуются постоянной воспаления, прогрессивного разрушения и регенерации печеночной паренхимы печени прогениторных клеток распространение и фиброза. Терминальная стадия все хронические заболевания печени-цирроз, основным фактором риска для развития гепатоцеллюлярной карциномы. Для изучения процессов, регулирующих начало болезни, создание и прогрессии, несколько животных модели используются в лабораториях. Здесь мы описываем шестинедельный курс холин недостаточным и дополнены ethionine (CDE) мыши модели, которая включает в себя питание шесть - неделя старый самцов мышей C57BL/6J холин недостаточным Чоу и 0,15% DL-ethionine дополнить питьевой водой. Мониторинг здоровья животных и Кривая потери веса типичный тела объясняются. Протокол демонстрирует брутто экспертизы CDE-лечение печени и крови коллекции сердца прокол для анализа последующих сыворотки. Далее печени перфузии технику и сбор различных печеночная лопастями для стандартных оценок являются оценки показали, в том числе печени гистология гематоксилином и эозином или Сириус красный stainings, immunofluorescent обнаружения печеночная клеточных популяций а также транскриптом профилирование печени микроокружения. Эта модель мыши подходит для изучения воспалительных, Фиброгенные и печени прогениторных клеток динамика индуцированных через хронические заболевания печени и может использоваться для проверки потенциальных терапевтических агентов, которые могут модулировать эти процессы.

Введение

Печень является самым большим органом железистой метаболизм тела и имеет множество сложных функций. Ключевые роли для печени включают пищеварение, обмен веществ, детоксикации, хранения необходимых питательных веществ, производство компонентов белков плазмы крови и иммунитета, опосредованного через резидентов макрофаги или клеток Купфера. Печень имеет большую способность восстанавливаться, даже если до 70-90% его общей массы теряется. В случае острого повреждения печени такие, как видно после частичной гепатектомии или ацетаминофен отравления, оставшиеся здоровые гепатоцитов размножаться для ремонта повреждений в весьма скоординированного процесса1. Однако, когда гепатоцитов хронически травму из-за долгосрочной вирусной инфекции, алкогольные или Безалкогольные жирная болезнь печени, воспалительные микроокружения вызывает активацию клеток вождения фиброз печени севрюга и пролиферацию клеток печени Прародителя (LPC) способны дифференцироваться в cholangiocytes или гепатоцитов2,3,4,5. Точное происхождение, дифференциация судьба LPCs, их вклад регенерации печени и hepatocarcinogenesis были темы интенсивных дебатов и скорее зависят от тяжести травмы и контекст2. Порядок начала регенерации связанных событий также состязательно обсужена, с некоторые следователи, заявив, что активации севрюга печеночных клеток и ремонт матрицы имеет важное значение для поколения ЛСМ в пользу нишу6, тогда как другие отчет, что расширение ЛСМ и так называемые Ductular реакции необходимы для триггера fibrogenesis7. Существует множество животных моделей для изучения конкретных аспектов травмы и регенерации, в попытке понять основополагающие факторы, которые регулируют прогрессирования заболевания и в конечном итоге разработать новые стратегии лечения для пациентов8.

Холин недостаточным и дополнены ethionine (CDE) диетическое модель была первоначально разработана для использования в крыс и позднее изменено для индукции хронической травмы печени в мышах9,10. Диетический дефицит холина приводит к ослабленным Ассамблеи и секрецию липопротеиды очень низкой плотности. В сочетании с hepatocarcinogen DL-ethionine, этот режим приводит к чрезмерной печеночная жира загрузки, непрерывной воспаление, перипортальный фиброз, ЛСМ ответ и долгосрочные гепатоцеллюлярной карциномы развития11,12 . Однако, важно, разные мыши штаммов экспонат отличительных моделей воспалительных, Фиброгенные и ЛСМ ответ динамики13. Этот протокол описывает хронической травмы печени индукции мышей C57BL/6J, наиболее часто используемые инбредных мыши штамма.

В исследованиях хронической болезни печени типичный анализы включают гистологические оценки гематоксилином и эозином, а также Сириус красное окрашивание визуализировать коллаген осаждений, иммуногистохимических или immunofluorescent обнаружения печеночная клеточных популяций, и транскриптомики анализов печени микроокружения, который оркеструет индуцированных клеточных изменений через комплекс факторов роста и цитокинов сети14,,1516,17 , 18.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. животных экспериментов

всех животных исследования, описанные в этом расследовании были утверждены Комитетом по этике животных Куртинского университета (номер официального утверждения: AEC_2014_28) до начала эксперименты и осуществляется в соответствии с австралийским код для ухода и использования животных.

  1. Животных
    1. использовать для экспериментов шесть - неделя старый самцов мышей C57BL/6J.
  2. Экспериментальный дизайн
    1. после прибытия на объекте животных, позволяют мышей, чтобы акклиматизироваться за четыре дня до начала каких-либо экспериментов.
    2. Домовых мышей на пшеничные плевел постельные принадлежности, которые были истощены видимых зерна и стебли и держать мышей на 12-часовой день/ночь циклы в отдельности вентилируемые клетки. Смена постельного белья в дни три и семь, потом неделю после.
    3. Диета
    4. предоставляют мышей с ad libitum доступ к холин недостаточным и питьевой воды, дополнена 0,15% DL-ethionine. Держите DL-ethionine дополнить воды при температуре 4° C и заменить каждый второй день питьевой воды для обеспечения свежести и поощрения пить. Пополните дефицит холина Чоу каждый второй день с полным изменением Чоу один раз в неделю.
    5. Наблюдать мышей на отдыхе и во время обработки. Стандартные признаки здоровья животных, включая общее возникновение, осанки, социального взаимодействия, груминг, монитор пальто условие и вес тела.
    6. Взвешивание мышей ежедневно в течение первых двух недель эксперимента, чтобы убедиться, что любые животных, экспонируется более чем 20% тела потеря веса умерщвлены ограничить ненужные страдания. Обычно это случай в менее чем 5% животных. После двух недель, частота взвешивания может быть снижена в три раза в неделю (например, понедельник, среда, пятница).
  3. Печени перфузии и изоляции
    1. анестезировать мышей в точках указанного времени (в этом исследовании один, два, а шесть недель на диете CDE) с кетамин (100 мг/кг) и ксилазина (10 мг/кг) внутрибрюшинной инъекцией. Проверить педаль вывода рефлекс для обеспечения адекватной анестезии.
    2. Мокрый мех с 70% этанола и сделать вертикальные срединной разрез в брюшной стенке до диафрагмы, ножницами Mayo. Грудная клетка могут быть удалены для облегчения доступа к сердцу.
    3. Собирать кровь медленно сердечной прокол, используя 25 G x 1/2 " регулярные стены иглой, чтобы избежать разрушения сердца. Позволяют крови к свертыванию в пробки microcentrifuge при комнатной температуре для получения образцов сыворотки после центрифугирования в 2000 g x 10 мин. Позже, измерять уровни трансаминаз сыворотки аланина, стандартные процедуры 12.
    4. Двигаться желудка и тонкой кишки в сторону и разоблачить воротной вены. Вырезать ножницами Mayo позволяет жидкости, чтобы выйти и perfuse печени с стерильных фосфата в буфер солевой сердца (рН = 7,4), cannulating воротной вены, с помощью 27 G x 1/2 " иглой регулярно стены. Равномерно бланшированные печень указывает успешное перфузии всех долей печени.
    5. Тщательно отсоединить печени и поместите его в чашку Петри, с помощью щипцов и Майо ножницы. Удаление ткани излишки, не печени и желчного пузыря.
  4. Сохранения печени
    1. после того, как был записан всего веса печени, одной небольшой доле несколько мелко нарезать несколько квадратных миллиметров, передавать их в стерильные пробирки и оснастки замораживание в жидком азоте для более поздних РНК и экстракции белка, согласно стандартных протоколов. Snap заморозить эти куски ткани как можно скорее после орган коллекции, чтобы избежать каких-либо деградации ткани.
    2. Собирать одной доле в нейтральных буферизации формалина 10% позднее обработки и встраивание парафин, как на стандартные протоколы.
    3. Место одной доле в форму заполненных с оптимальной резки температуры cryomatrix встраивание смолы и оснастки замораживание в жидком азоте.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

На протяжении шести недель время CDE-индуцированной хронической травмы печени параметры были оценены в дни 7 (фаза индукции), 14 и 21 (создание фаза) и 42 (фаза обслуживания). По сравнению с контролем мышей, мышей, CDE-лечение потеряли до 20% от их первоначального веса на этапе первоначальной адаптации и стремятся восстановить вес в установление и поддержание этапа (рис. 1). Вес тела обратно коррелировалось с уровни трансаминаз сыворотки алан...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Хронические заболевания печени часто молчание болезни с большинства пациентов, будучи бессимптомно и это один из основных вкладчиков в заболеваемости и смертности во всем мире. Хронический алкоголизм и инфицирования вирусом гепатита являются ведущими причинами. Хроническое повреждение печени характеризуется воспаление печени, фиброза и в тяжелых случаях цирроз печени, рак и в конечном итоге печеночной недостаточности. В настоящее время нет никакого лечения, и хотя крупные успехи чтобы понять механизмы, заболевания печени...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Существует ничего, чтобы быть раскрыты авторами.

Благодарности

Эта работа была поддержана субсидии от национального здравоохранения и медицинских исследований Совета (NHMRC) Австралии (APP1042370, APP1061332, APP1087125). Авторы хотели бы поблагодарить Кертин здравоохранения инновационной научно-исследовательский институт сотрудников для оказания технической помощи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Шестинедельный самец мышей C57BL/6J Центр ресурсов для животных Западной Австралии, Мердок, Вашингтон,   АвстралияН/Д
10 кг Паровая нарезка пшеничной мякины Специализированные корма, Глен Форрест, Вашингтон, Австралия Н/Д
Вода для полива бутылка 1000мл (Baxter) Хирургический дом, Перт, Вашингтон, Австралия 
Холин - дефицитный рацион, модифицированный (гранулы) MP Biomedicals Australasia Pty Limited, WA, Австралия 02960210
DL-этионин Сигма-Олдрич, Касл-Хилл, Новый Южный Уэльс,   Австралия E5139-25G
Кетамил для инъекций Troy Laboratories Pty Limited, Гленденнинг, Новый Южный Уэльс, Австралия Н/Д
Илум Ксилазил для инъекций Troy Laboratories Pty Limited, Гленденнинг, Новый Южный Уэльс, Австралия N/A
27G x 1/2", Обычная настенная игла Terumo Australia Pty Limited, Новый Южный Уэльс, Австралия NN-2713R
Шприцы Terumo 1мл и 10мл Terumo Australia Pty Limited, Маккуори Парк, Новый Южный Уэльс, Австралия 1018242, 1018037
компаунд ОКТ Tissue-Tek VWR International Pty Limited, Тингальпа, Квинсленд, Австралия 25608-930
Нейтральный буферизированный формалин Amber Scientific, Мидвейл, Вашингтон, Австралия NBF-2,5 л Этанол
абсолютный anaLaR normalpur VWR International Pty Limited, Тингальпа, Квинсленд, Австралия 20821.33
Горки Superfrost Plus Grale Scientific Pty Limited, Рингвуд, Виктория, Австралия 
Dako Protein Block, без сыворотки Dako Australia Pty Limited, Северный Сидней, Новый Южный Уэльс, Австралия   X090930-2
Разбавитель антител Dako Dako Australia Pty Limited, Северный Сидней, Новый Южный Уэльс, Австралия   s0809
крыса анти-CD45 eBioscience, Сан-Диего, Калифорния, США М0701 Разведение 1/200
кролик антипанСК Dako Australia Pty Limited, Северный Сидней, Новый Южный Уэльс, Австралия   Z06221/300 разведение
козьего антикроличьего (Alexa Fluor 488)Life Technologies Australia Pty Limited, Малгрейв, Виктория, АвстралияA-110081/500 разведение
козьего антикрысиного IgG (Alexa Fluor 594) Life Technologies Australia Pty Limited, Малгрейв, Виктория, Австралия  A-110071/500 разбавление
ProLong Gold Антифейдный реагент с DAPI Life Technologies Australia Pty Limited, Малгрейв, Виктория, Австралия P36935   
Picrosirius Red Stain KitPolysciences Inc., Уоррингтон, Пенсильвания, США AB150681 
AHF7114ASF41296SP

Ссылки

  1. Taub, R. Liver regeneration: from myth to mechanism. Nat Rev Mol Cell Biol. 5, 836-847 (2004).
  2. Kohn-Gaone, J., Gogoi-Tiwari, J., Ramm, G. A., Olynyk, J. K., Tirnitz-Parker, J. E. The role of liver progenitor cells during liver regeneration, fibrogenesis, and carcinogenesis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 310, G143-G154 (2016).
  3. Lu, W. Y., et al. Hepatic progenitor cells of biliary origin with liver repopulation capacity. Nat Cell Biol. 17, 971-983 (2015).
  4. Prakoso, E., et al. Analysis of the intrahepatic ductular reaction and progenitor cell responses in hepatitis C virus recurrence after liver transplantation. Liver Transpl. 20, 1508-1519 (2014).
  5. Tirnitz-Parker, J. E., Tonkin, J. N., Knight, B., Olynyk, J. K., Yeoh, G. C. Isolation, culture and immortalisation of hepatic oval cells from adult mice fed a choline-deficient, ethionine-supplemented diet. Int J Biochem Cell Biol. 39, 2226-2239 (2007).
  6. Van Hul, N. K., Abarca-Quinones, J., Sempoux, C., Horsmans, Y., Leclercq, I. A. Relation between liver progenitor cell expansion and extracellular matrix deposition in a CDE-induced murine model of chronic liver injury. Hepatology. 49, 1625-1635 (2009).
  7. Clouston, A. D., et al. Fibrosis correlates with a ductular reaction in hepatitis C: roles of impaired replication, progenitor cells and steatosis. Hepatology. 41, 809-818 (2005).
  8. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration - mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13, 473-485 (2016).
  9. Akhurst, B., et al. A modified choline-deficient, ethionine-supplemented diet protocol effectively induces oval cells in mouse liver. Hepatology. 34, 519-522 (2001).
  10. Shinozuka, H., Lombardi, B., Sell, S., Iammarino, R. M. Early histological and functional alterations of ethionine liver carcinogenesis in rats fed a choline-deficient diet. Cancer Res. 38, 1092-1098 (1978).
  11. Knight, B., Tirnitz-Parker, J. E., Olynyk, J. K. C-kit inhibition by imatinib mesylate attenuates progenitor cell expansion and inhibits liver tumor formation in mice. Gastroenterology. 135, 969-979 (2008).
  12. Kohn-Gaone, J., et al. Divergent Inflammatory, Fibrogenic, and Liver Progenitor Cell Dynamics in Two Common Mouse Models of Chronic Liver Injury. Am J Pathol. 186, 1762-1774 (2016).
  13. Knight, B., et al. Attenuated liver progenitor (oval) cell and fibrogenic responses to the choline deficient, ethionine supplemented diet in the BALB/c inbred strain of mice. J Hepatol. 46, 134-141 (2007).
  14. Dwyer, B. J., Olynyk, J. K., Ramm, G. A., Tirnitz-Parker, J. E. TWEAK and LTbeta Signaling during Chronic Liver Disease. Front Immunol. 5, 39(2014).
  15. Karin, M., Clevers, H. Reparative inflammation takes charge of tissue regeneration. Nature. 529, 307-315 (2016).
  16. Ruddell, R. G., et al. Lymphotoxin-beta receptor signaling regulates hepatic stellate cell function and wound healing in a murine model of chronic liver injury. Hepatology. 49, 227-239 (2009).
  17. Tirnitz-Parker, J. E., et al. Tumor necrosis factor-like weak inducer of apoptosis is a mitogen for liver progenitor cells. Hepatology. 52, 291-302 (2010).
  18. Viebahn, C. S., Yeoh, G. C. What fires prometheus? The link between inflammation and regeneration following chronic liver injury. Int J Biochem Cell Biol. 40, 855-873 (2008).
  19. Hayner, N. T., Braun, L., Yaswen, P., Brooks, M., Fausto, N. Isozyme profiles of oval cells, parenchymal cells, and biliary cells isolated by centrifugal elutriation from normal and preneoplastic livers. Cancer Res. 44, 332-338 (1984).
  20. Tee, L. B., Smith, P. G., Yeoh, G. C. Expression of alpha, mu and pi class glutathione S-transferases in oval and ductal cells in liver of rats placed on a choline-deficient, ethionine-supplemented diet. Carcinogenesis. 13, 1879-1885 (1992).
  21. Chayanupatkul, M., et al. Hepatocellular carcinoma in the absence of cirrhosis in patients with chronic hepatitis B virus infection. J Hepatol. 66, 355-362 (2017).
  22. Mittal, S., et al. Hepatocellular Carcinoma in the Absence of Cirrhosis in United States Veterans is Associated With Nonalcoholic Fatty Liver Disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 14, 124-131 (2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги