Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Вся ячейка электрофизиологии первичного культивировали мышиных Enterochromaffin клеток

10.2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/58112

⸱

26 сентября 2018 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Enteric Neuroscience Program, Division of Gastroenterology & Hepatology,Department of Physiology & Biomedical Engineering, Mayo Clinic, 2Division of Gastroenterology, Department of Medicine, University of Massachusetts Medical School

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Enterochromaffin (EC) клетки составляют небольшую часть желудочно-кишечного тракта эпителиальных клеток. EC клетки электрически возбудимых и освобождение серотонина, но трудности в культивировании и выявления EC клетки имеют ограниченный физиологические исследования. Представленные здесь метод устанавливает основной культуры модель для изучения единичных клеток EC по электрофизиологии.

Аннотация

Enterochromaffin (EC) клетки в эпителии желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) составляют самая большая субпопуляция enteroendocrine клеток. Как специализированные Сензорные клетки клетки EC смысл Люминал стимулы и конвертировать их в серотонина (5-hyroxytryptamine, 5-HT) релиз события. Однако электрофизиологии эти клетки плохо понимают, потому что они трудны для культуры и определения. Метод, представленные в этой бумаги очертания первичной EC клеточных культур оптимизирован для одной ячейки электрофизиологии. Этот протокол использует репортером трансгенных голубой флуоресцентный белок (СЛП) для идентификации клеток мыши EC в смешанных первичных культур, развитии подход для получения высокого качества записи клеточных электрофизиологии в режимах напряжения и тока клещи.

Введение

Желудочно-кишечного эпителия (Ги) является разнообразное сообщество, состоящее из нескольких типов клеток. Enteroendocrine клетки составляют примерно 1% от всех эпителиальных клеток, и клетки enterochromaffin (EC) являются крупнейшим enteroendocrine клеток населения1. Недавние исследования показывают, что enteroendocrine2 и3,EC4 клетки электрически возбудимых. Мы заинтересованы в понимании основной EC клеток электрофизиологии. Таким образом целью данного исследования было установить первичных культур клеток EC, оптимизированный для клеточных электрофизиологии.

Существующие ячейки EC линии, которые производят и выделяют 5-HT (например, QGP-15, Бон6,7KRJ-1) и были использованы для изучения электрофизиологии5,8 обычно создаются из увековечен опухолевой тканей. В то время как информация, полученные от этих клеточных линий ценные5,8, исследования электрофизиологии главной ячейки необходимы для правильного понимания физиологии клетки ЕС. Электрофизиологии первичных клеток ЕС требует изоляции и культуры одного эпителиальных клеток, которая ограничивается низкой жизнеспособности эпителиальных культур.

Метод культуры, представленные в настоящем исследовании опирается на трансгенных мышей с дневно обозначенные EC клетки, как Tph1-CFP9, используемые в данном исследовании. Этот метод оптимизирует смешанных начальных эпителиальных культур разработаны ранее10 2,для одной ячейки электрофизиологии3. Предыдущие методы используемые комбинации трипсина/ЭДТА плюс коллагеназы A или ЭДТА и DTT для ферментативного пищеварения и используемые градиенты плотности специально изолировать и культуры свинка11 и крыса EC клетки12. Совсем недавно кишечные organoids были созданы и механически нарушается для электрофизиологических записи4. Культур, используя эти методы хорошо подходят серотонина релиз эксперименты, RT-ПЦР анализа и, хотя они могут быть использованы для электрофизиологии, зависят от успеха времени органоид поколения, градиенты плотности для выявления EC клетки и Сотовый деструктивные последствия трипсина и ЭДТА. Напротив протокол, описанные здесь повышает ферментативную и механических методов лечения, оптимизирует культивирования условий и упрощает процедуры для производства одного и здоровой клетки EC подходит для высоких сотовых стандартов, необходимых для электрофизиологии.

Этот метод будет полезным для ученых, которые хотят работать на основной EC клетки в смешанных культур, а не увековечен культур и хотят расследовать электрофизиологии одиночных клеток. Однако она может оказаться менее подходящим для изучения клеточных популяций, требующих сортировки или долгосрочный культур, которые требуют выживания прошлых 72 ч.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все методы, описанные здесь были одобрены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) клиники Майо. Часть культуры главной ячейки этот протокол основан на опубликованных ранее методы, которые могут ссылаться для дальнейших деталей10. Все экспериментальные процедуры должны быть одобрены (IACUC), и все эксперименты должны выполняться в соответствии с соответствующих руководящих принципов и правил.

1. Культура подготовка

  1. Средства массовой информации.
    1. Подготовить EC клеток, полный культуры средств массовой информации с высокой глюкозы [4500 мг/Л] Дульбекко изменение средних орла (DMEM) дополнены 5% плода Bovine сыворотки (ФБС), 1% L-глютамина и 1% пенициллин-стрептомицином (Таблица 1).
      Примечание: Средства массовой информации могут храниться при температуре 4 ° C на срок до одного месяца.
    2. Фильтр EC клеток полный культуры средств массовой информации и место 25 мл СМИ в Тюбик 50 мл при 37 ° C.
    3. Подготовить пищеварение СМИ с высоким глюкозы [4500 мг/Л] DMEM дополнена 0,1% бычьим сывороточным альбумином (БСА) (Таблица 1).
    4. Фильтр пищеварение средства массовой информации и место четыре 10 мл аликвоты СМИ в отдельные 50 мл трубки и инкубировать в ванну воды 37 ° C.
      Примечание: Средства массовой информации могут храниться при температуре 4 ° C на срок до одного месяца.
  2. Фермент.
    1. Вес 4 мг (для тощая кишка) или 24 мг (для Колон) XI коллагеназа [≥800 единиц/мг] в пробки microcentrifuge 1,5 мл.
      Примечание: Коллагеназа стабильным на уровне-20 ° C на срок до одного года.
    2. Ресуспензируйте коллагеназы аликвота в 1 мл холодного льда PBS с Ca2 + и Mg2 +. Вихрь решение тщательно объединить и место на льду.
  3. Покрытие плиты культуры.
    1. Оттепель 150 мкл внеклеточная матрица на ночь при 4 ° c на льду.
    2. Сделайте раствор 5% w/v внеклеточного матрикса, смешивая 100 мкл талой внеклеточная матрица с 2 мл ледяной DMEM сыворотки Бесплатные высокого глюкозы.
      Примечание: Внеклеточная матрица затвердевает при комнатной температуре и должны быть обработаны с предварительно охлажденные пипетки, труб и СМИ до готовности блюд пальто.
    3. Сразу же Герб стекла внутренний круг стекло дно блюда 35 мм с 250 мкл раствора внеклеточная матрица 5%. Этот рецепт будет охватывать до 8 блюд.
    4. Место стекло дно блюда в инкубаторе 37 ° C в течение оставшихся шагов изоляции культуры клеток. Внеклеточная матрица занимает как минимум 1 час для установки, но может инкубированы для до 2,5 ч при выполнении других шагов изоляции.
      Примечание: Инкубаций дольше, чем 3 h можно создать наращивание внеклеточного матрикса, который может препятствовать уплотнение образование в течение всей ячейки электрофизиологии.

2. ткань изоляции

  1. Согласно этические принципы, жертву 3Для 6 недельных мужского или женского пола Tph1-CFP трансгенные мыши (складе Лаборатория Джексон: 028366)9 или другой штамм репортер.
    Примечание: Мы используем смертельную дозу повышение уровня углекислого газа и шейки матки дислокации, как дополнительного средства для обеспечения смерти. АВАМ Комитет по эвтаназии также считает шейки матки дислокации метод допустимый первичный эвтаназии лицами подготовку в его использования, если животные сначала седативные.
  2. Закрепите Усыпленных мыши вне на сцене рассечение пенополистирола с помощью иглы 21 G. Обеззараживанию мыши живота с 70% этиловом спирте.
  3. Потяните кожу мыши тугой с помощью микро рассечение щипцы (#5), и затем используйте острые хирургические ножницы сделать поперечный разрез в нижней части живота мыши подвергать внутрибрюшинного полости. Сделайте еще один разрез вертикально вверх живота до тех пор, пока грудная клетка подвергается.
  4. Используйте микро рассечение щипцы для перемещения слепой кишки в левую кнопку мыши, чтобы получить четкое представление о двоеточие.
  5. Использование микро Рассечение ножницами вырезать наиболее Дистальная часть толстой кишки (но по-прежнему проксимальнее прямой кишки) и сделать второй сократить дистальной части желудка. Место, извлеченные кишечника в 100 x 15 мм2 Петри заполнены с 20 мл ледяной фосфата в буфер солевой раствор (PBS).
  6. Используйте небольшой линейки для измерения и вырезать 10 см либо середины толстой кишки и тощей кишки. Экстракт толстой кишки путем измерения 10 см сегмент расположен проксимально первого пропила, принятые выше прямой кишки кишечника. Определите тощей кишки, складывающиеся весь кишечник в половину и делая первый надрез в середине и второй надрез 10 см проксимальнее первый сократить.
    Примечание: По-прежнему выполнять все последующие изоляции шаги на льду.
  7. Заполните 6 мл шприц с лед холодной PBS и поместите иглу шприца в Люмене извлеченные кишечных сегмента. Используйте корнцанг микро рассечение зажим и печатью кишечника вокруг иглы шприца и осторожно промойте 10 мл PBS через просвет полоскать прочь фекалиями.
  8. Инвертируйте кишечных тканей, нежно ткачество микро рассечение щипцы через просвет, щипать кишечной стенки и втягивания проксимальнее кончик щипцы ткани. Повторите этот процесс до тех пор, пока сегмент изнутри наружу с люмен, наружу.
  9. Использование микро Рассечение ножницами в сегмент ткани нарезают кусочками по 1 см.
  10. Используйте микро рассечение щипцы для передачи ткани сегментов в 50 мл стакан, наполненный 5 мл стерильной PBS. Используйте ножницы микро рассечение, чтобы фарш куски ткани до консистенции сжиженные.
  11. Поместите фарш из ткани и 15 мл холодного льда PBS в чистой 50 мл трубки, передачи пипеткой. Нарезанных 2 раза с пипеткой передачи, ждать ткани, чтобы урегулировать, удалить 15 мл супернатант PBS и заменить свежим PBS. Повторите этот процесс в три раза, пока не ясно, PBS.
  12. Место 50 мл трубки с кусочками ткани промывают на льду и принести ведро льда в культуре ткани капюшоном.

3. ферментативные и механические пищеварение

  1. Первый пищеварение
    1. Из водяной бани получить один из 50 мл пробирки с 10 мл подогретым пищеварение средства массовой информации. В Тюбик 50 мл 250 мкл PBS коллагеназы решения и кусочки рубленого кишечных тканей.
      Примечание: позаботьтесь, чтобы избежать, включая любые PBS из предыдущих шагов стирки.
    2. Место Тюбик 50 мл на водяной бане 5 минут (толстой кишки или тощей кишки) при 37 ° C. Встряхнуть трубки 2 x в минуту.
      Примечание: Оптимальные сроки и интенсивность механических пищеварение может варьироваться и должны быть определены пользователем. Для определения условий оптимального пищеварения, 10 мкл Алиготе клеток может рассматриваться после каждого пищеварение. Во время пищеварения 1 супернатанта должен состоять из скопления клеток.
    3. Медленно нарезанных ткани один раз с 10 мл Серологические Пипетки. Кратко пусть ткани, которую штук урегулировать, а затем использовать пипетку передачи для удаления всего 10 мл супернатант.
  2. Второй пищеварения: Повторите шаги 3.1.1 до 3.1.3. Увеличить время инкубации до 10 мин, если переваривание Колон и сохранить время инкубации в 5 мин для тощей кишки.
    Примечание: После наблюдения, супернатанта должно по-прежнему состоят из большого скопления клеток.
  3. Третий пищеварение
    1. Повторите шаг 3.1.1
    2. Место 50 мл трубки в 37 градусов водяной бане 10 минут (толстой кишки или небольших тощей кишки). Встряхните трубки 2-3 x / мин в более высокой интенсивностью, чем пищеварения 1 и 2.
    3. Медленно Пипетка ткани вверх и вниз с Серологические Пипетки 10-мл. Разрешить куски ткани поселиться на короткое время.
      Примечание: Супернатант должен состоять из комбинации одиночных клеток и небольшие сгустки.
    4. Использование пипетки передачи место 10 мл супернатант в новом 15 мл трубку, добавить 2 мл утепленные EC клеток полный культуры средств массовой информации, и инвертируем раз смешивать.
    5. Спина на 100 x g 5 мин при комнатной температуре, а затем использовать передачи пипетку, чтобы удалить супернатант. Используйте передачу пипетки для Ресуспензируйте оставшиеся таблетки по 2,5 мл утепленные EC клеток полный культуры средств массовой информации.
  4. Четвертый пищеварения: Повторите шаги 3.3.1 до 3.3.5. Увеличить время инкубации до 15 мин для Колон и остаются в 10 мин на тощей кишки.
    Примечание: Супернатант теперь должен состоять из одной клетки.

4. клеточная культура

  1. Используйте передачу пипетки для объединения клеточных суспензий, собранных от пищеварения 3 и 4 в новой трубки 15 мл (5 мл общий объем).
  2. Удаление 10 мкл Алиготе клеток для подсчета с Горяева и спина оставшиеся суспензию клеток на 100 x g 5 мин при комнатной температуре.
    Примечание: Суспензию клеток окончательный будет состоять из небольшой пряди и одиночных клеток.
  3. Удалить супернатант с передачей пипетки и Ресуспензируйте гранулы в ЕС клеток полный культуры СМИ на плотности 1,000,000 клеток / мл.
    Примечание: Окончательный объем суспензии клеток будет зависеть окончательный мобильный граф. Типичные клетки подсчитывает колеблются от 2 000 000 до 4000000.
  4. Удалите с покрытием стекло дно культуры блюда из инкубатора. Используйте P1000 пипетки для замены внеклеточная матрица от каждой культуры блюдо с 250 мкл суспензии окончательного клеток.
    Примечание: Внеклеточная матрица покрытие имеет тенденцию прилипать к краям стекло дно тарелки. Особое внимание необходимо снять покрытие от вдоль края для предотвращения накопления гель.
  5. Сделайте раствором штока ингибитора Y-27632 рок на 1 мм. 2.5 мкл Стоковый раствор, чтобы каждое блюдо дно стекла для достижения рабочей концентрации ингибитора рок 10 мкм в каждое блюдо.
    Примечание: Этот шаг имеет решающее значение для выживания тощую культур, но является необязательным для Колон.
  6. Место каждой культуры блюдо в 37 ° C и 5% CO2 инкубатора для 24-72 ч (рис. 1).

5. Подготовка EC клеток для клеточных электрофизиологии

  1. Линия внутренний диаметр микроскопа с двумя полосками 5 x 0.5 см воск фильм создать кольцо. Смонтируйте 35-мм ячейку культуры блюдо в кольцо (рис. 2A-B).
  2. Промывайте обе плавающего мусора, такие как неприсоединенной внеклеточная матрица или мертвые клетки и культуральных сред сыворотки полностью от EC клеток, чтобы предотвратить либо препятствовали печать формирования между ЕС и электрода. Использование трех следующих вариантов для достижения тщательного клеток стирки достаточно для электрофизиологии:
    1. Вариант 1: Обмен решение является более эффективным в камере длиной больше, чем циркуляр камеры. Поскольку ЕС клетки были культивировали в раунде 35 мм блюда, создайте пластиковые эллиптическая вставка для блюдо.
      1. Создайте Вставка 3D печать или традиционных фрезерных методами. Вставка, мы использовали мололи из акрилового пластика с следующие размеры (в мм): внешний диаметр, 34,5; внутреннего эллипса, 20 x 9; Высота наружная, 10; Внутренняя высота, 1,5; пролетом моста, 3 x 3; ватерлинией, 1,5; вход и выход, 4 x 4.
      2. Нижний Вкладыш в культуры блюдо (A-BРисунок 2) и зафиксируйте его в верхней части микроскопа с двумя блоками 0,15 – 0,2 g пластилин вдавлен в 1.2 x 0.3 x 0,1 см прямоугольники (рис. 2A-C).
      3. С пипетки пластиковые передачи медленно добавьте внеклеточного решение одной стороне блюдо (вход) во время аспирационных от другой стороны (выход).
    2. Вариант 2: Без инженерных пластиковые вставки, добавьте внеклеточного решение путем передачи пипетки с одной стороны блюдо (впускной) во время аспирационных с противоположной стороны (выход). Медленно поверните расположение передачи пипеткой (например, N – E – S) во время зеркального отображения размещение аспирационная игла на противоположной стороне (например, S к W-N).
    3. Вариант 3: Пальто внеклеточная матрица на прямоугольной coverslips шаге 1.3.3. и культура суспензию клеток на эти coverslips на шаге 4.4. Передать этот coverslip прямоугольной камеры заполнены с внеклеточного решение, опуская шаг 5.1 и пропустить шаг 5.3. Промойте отсек с внеклеточного решения от пипетки пластиковые передачи, как описано в вариант 1 (5.2.1.3).
  3. Повторно присоедините сцену с клеточной культуры выше инвертированным микроскопом (Рисунок 2D). Инкубации клеточной культуры ЕС в сыворотки бесплатно внеклеточного решения при комнатной температуре.
  4. После 4 часов промойте культуры снова с внеклеточного решение, как описано выше. Продолжите клеточных электрофизиологии.

6. вся ячейка электрофизиологии EC клеток от основной культуры

  1. Достижение клеточных гига печать
    1. Тяните один десяток электроды сопротивления 1 – 5 MΩ.
      Примечания: Пипетки 1 – 2 MΩ сопротивления, которые дают 10-100 GΩ уплотнения работать лучше. Огонь, шлифовальные советы электрода не является необходимым для достижения GΩ тюленей.
    2. Равномерно пальто носовой конус всех пипеток с полимера. Держите горизонтальный пипетки на землю и перпендикулярно к передней части тепловой пушки. Медленно поверните дозатор пока отвердевает полимер.
    3. Залейте Алиготе внутриклеточных раствора в 15 мл Конические трубки. Перевод 1.2 мл этого раствора в пробки microcentrifuge 1,5 мл через 1 мл шприц. Вывести другой 0,7 мл внутриклеточных раствора в шприц. Рассеять воздух от конца шприца. Присоединить гибкий 34 G, 67 мм иглу в шприц и вымывать любой оставшийся воздух от этой иглы.
    4. Определить Tph1-CFP + ячейки, которая не находится в контакте с любой другой ячейки или мусора.
    5. Заполните электрода с внутриклеточной решения. Засыпки пипетку в шприц. Осторожно проведите пипетку с ногтем развеять интерфейс пузырь воздуха.
    6. С плунжера, составлен с 0,3 мл воздуха Прикрепите 6 мл шприц на выходе из держателя трубы. Смонтируйте в держатель электрода.
      Примечание: Подключение шприц трубок до электрода входит баня решение поддерживать нейтральный или положительный давление внутри внутриклеточных решения до уплотнения.
    7. Загрузите двухэтапный мембраной протокол, который записывает устойчивого состояния активации токи по лестнице напряжения на первом шаге и записи доступны токи одного напряжения на втором шаге. Откройте печать тест (5 мВ на 50 кГц).
    8. Опустите электрода в раствор для ванн. С микроманипуляторы маневр электрода подсказка в плоскости с и непосредственно горизонтальных из ячейки. Высылать 0,3 мл воздуха из шприца.
    9. Аккуратно переместите электрода горизонтально вдоль оси x для сенсорных клеток. Часы для Димпл появляться на EC клеток и/или увеличения сопротивления мембраны на печать тест. При необходимости, скорректировать электрод вниз вдоль оси z и/или горизонтально вдоль оси x, не движется мимо средней ячейки.
    10. Применить 0,1 – 0,2 мл всасывания на 6-мл шприц. Удерживать поршень до 100 MΩ достигается, затем отпустите ручки от поршень. Ждать для ячейки гига печать. Аккуратно отсоедините шприц с отвинчивания движения.
      Примечание: Если EC ячейки не первоначально уплотнения, это может быть возможность вновь запечатать его с последующей попыткой. Для этого осторожно потяните электрода от EC клеток с < 20 MΩ уплотнение сопротивление. Руководящий отработанного электрод с микроманипуляторы, обогнуть целевой ячейки EC вручную убрать матрицы или мусора. Затем попытка уплотнение EC ячейки с свежий электрода.
  2. Запись клеточных напряжения закрытом Na+ текущей.
    1. Присоединить шприц 3 мл с 0,5 – 1,0 мл воздуха. Применение быстрого крана всасывания (0,1 – 0,5 мл) на шприц 3 мл. Повторяйте, пока не достигается клеточных доступ, а затем осторожно Отсоедините шприц.
      Примечание: как производительность шприц может варьироваться первоначально и постепенно меняться со временем и использовать, практика заранее с шприц 3 мл (уплотнения конца с указательным пальцем) для обеспечения, что поршень будет отдача в пределах 0,1 – 0,2 мл его начальную позицию. Если нет, то обмен шприцев для новое одного.
    2. Включите клеточных емкостной компенсации. Настройка емкости и серии сопротивления. Включите компенсация сопротивления серии. С лагом в 60 мс Отрегулируйте предсказал тогда исправленный компенсация сопротивления серии. Закройте печать тест.
    3. Запись в среднем 5 работает поклеточного закрытого напряжения тока Na+ (рисA).
    4. Быстро принять к сведению два параметра закрытого напряжения тока Na+ : напряжение на текущее окно (Рисунок 3B, красные символы, пересечение кривых устойчивого состояния активации и инактивации) и пиковый ток Na+ плотность.
      Примечание: ЕС клетки с пик Na+ течения более чем-50 ПА в режиме напряжение зажим обычно будет идти огонь вызвал потенциалов в текущем режиме зажим. Кроме того, токи больше-200 Па в напряжение зажим (рис. 3А), то обычно пожар потенциалы действия спонтанно в текущей зажим от мембранных потенциалов (красная линия, Рисунок 3D) вблизи напряжения окно текущей (красные символы, Рисунок 3B).
  3. Запись вызвал потенциалы действия.
    1. Выключите компенсация сопротивления серии. Выключите внешней команды. Переключите режим от V-образный зажим фиксатор. Отрегулируйте коэффициент усиления. Загрузите эпизодические текущий протокол зажим. Регулировать количество проведения текущего 0 Па. Включите внешней команды.
      ВНИМАНИЕ: Не включайте от V-образный зажим зажим (или наоборот) без первого выключения внешней команды.
    2. Обратите внимание, мембранный потенциал покоя. Отрегулируйте проведение текущего ввода чтобы мембранного потенциала читает ниже текущего окна (например, -80 до -100 МВ). Отрегулируйте эпизодические зажим протокола таким образом, чтобы шаг интервал текущего ввода меньше, чем значение текущей холдинга (рис. 3C врезные, шаги ПА + 2-3 Па проведение текущего).
    3. Запись вызвал потенциалы действия. Обратите внимание, наименьшее количество тока, вводят выстрелить потенциал действия (рис. 3C, развертки 3, 5, + 4 Па шаг от-3 Па Холдинг = + 1 ПА).
  4. Запись спонтанное потенциалы действия.
    1. Выключите внешней команды. Загрузите текущий протокол зажим разрыв бесплатно (не эпизодическая).
      Примечание: Не включите внешней команды до тех пор, пока количество проведения тока в протоколе бесплатно разрыв текущих зажим была проверена пригодны для ячейки.
    2. Изменить текущий быть сумма текущих, вводят в последнего прохода в протоколе вызвал, что не огонь потенциал действия проведение (Рисунок 3D, текущий вход во время второго прохода, ПА + 2 шаг от-3 Па Холдинг =-1 ПА).
    3. Включите внешней команды. Дважды проверьте, что предсказал текущее проведение приносит мембранного потенциала ниже порога огонь потенциал действия. При необходимости отрегулируйте проведение текущего. Запись спонтанной активности.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Культуры:
Основная мышиных эпителиальных клеток, сделанные из трансгенные модели Tph1-CFP придают блюдам после 4 часов и готовы для физиологических опытов между 24-72 ч. Когда культура условия не оптимизированы, эпителиальных клеток культуры состоял из больших сгустков, плавающие сотовой мусора, поврежденные мембраны и слабый сигнал СЛП в ЕС клеток (рис. 1А). Культур, которые были оптимизированы для электрофизиологии состо...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Полностью понимая EC клеточной функции требует высокого качества первичной культуре метод для создания клетки для клеточных электрофизиологии. Основных культур эпителия GI традиционно затруднен из-за низкой выживаемости. Облегчение этот смешанным фактором, нынешний метод дает культур сингулярных клеток EC от большого или малого кишечника, которые способны выжить в течение нескольких дней.

Мы обнаружили, что решающее значение для повышения качества культуры пригодны для электрофизиологии были с...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Авторы благодарят г-жа Линдсей Басби для административной помощи и г-н Роберт Хайет из Майо клиника отдел инженерного дизайна и 3D печати вставить блюдо культуры. Эта работа была поддержана NIH K08 AB (DK106456), пилот и осуществимости Грант АБ из клиники Майо центр для клеток сигнализации в гастроэнтерологии (низ P30DK084567) и 2015 американской гастроэнтерологической ассоциации исследования ученый премии (Ага RSA) AB и низ R01 GF (DK52766).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Чашка для культуры 100 мм x 15 ммCorning (Falcon)351029
Трансферная пипеткаFisherbrand13-711-7M
10 мл серологическая пипеткаCorning (Falcon) 
50 мл коническогоCorning (Falcon) 
15 мл коническогоCorning (Falcon) 
1 000 мл барьерные наконечники для пипетокThermo Scientific (Art)2079EKeep sterile
Стеклянные донные тарелки MatTekMatTekCorporation P35G-1.5-14-CKeep sterile
Микродиссекционные щипцы - очень тонкие, сверхдлинные точкиFine Science ИнструментыSB12630M
хирургические ножницы-острыеNasco14002-14
Ножницы для микродиссекцииNascoSB46568M
Monoject Hypo Needle, 21 г x 1" A, 100/BXCovidien8881250172
  Tg(Tph1-CFP)1Able/J МышиJacksonStock # 028366Используйте самцов или самок мышей в возрасте от 4 до 7 недель
Неметаллические иглы для шприцев Microfil (34 калибра, 67 мм)World Precision InstrumentsMF34G-5
Парапленка "M" Лабораторная пленкаPechiney Plastic Packaging
R6101Dow Corning
6 мл шприц с обычным наконечником люэраМоноджект
Шприц 3 мл со штатным наконечником люэраМоноджект
<стронг>Электрофизиологическое оборудование
УсилительМолекулярные устройстваAxopatch 200B
Система сбора данных (daq)Молекулярные устройстваDigidata 1440A
ПреобразовательсигналовМолекулярные приборыCyberAmp 320
Программное обеспечениеМолекулярные приборыpClamp 10.6
357551352098352097

Ссылки

  1. Rindi, G., Leiter, A. B., Kopin, A. S., Bordi, C., Solcia, E. The "normal" endocrine cell of the gut: changing concepts and new evidences. Annals of the New York Academy of Sciences. 1014, 1-12 (2004).
  2. Rogers, G. J., et al. Electrical activity-triggered glucagon-like peptide-1 secretion from primary murine L-cells. The Journal of Physiology. 589, Pt 5 1081-1093 (2011).
  3. Strege, P. R., et al. Sodium channel NaV1.3 is important for enterochromaffin cell excitability and serotonin release. Scientific Reports. 7 (15650), (2017).
  4. Bellono, N. W., et al. Enterochromaffin cells are gut chemosensors that couple to sensory neural pathways. Cell. 170 (1), 185-198 (2017).
  5. Alcaino, C., Knutson, K., Gottlieb, P. A., Farrugia, G., Beyder, A. Mechanosensitive ion channel Piezo2 is inhibited by D-GsMTx4. Channels. 11 (3), 245-253 (2017).
  6. Kim, M., Javed, N. H., Yu, J. G., Christofi, F., Cooke, H. J. Mechanical stimulation activates Galphaq signaling pathways and 5-hydroxytryptamine release from human carcinoid BON cells. Journal of Clinical Investigation. 108 (7), 1051-1059 (2001).
  7. Modlin, I. M., Kidd, M., Pfragner, R., Eick, G. N., Champaneria, M. C. The functional characterization of normal and neoplastic human enterochromaffin cells. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 91 (6), 2340-2348 (2006).
  8. Wang, F., et al. Mechanosensitive ion channel Piezo2 is important for enterochromaffin cell response to mechanical forces. The Journal of Physiology. 595 (1), 79-91 (2017).
  9. Li, H. J., et al. Distinct cellular origins for serotonin-expressing and enterochromaffin-like cells in the gastric corpus. Gastroenterology. 146 (3), 754-764 (2014).
  10. Psichas, A., Tolhurst, G., Brighton, C. A., Gribble, F. M., Reimann, F. Mixed primary cultures of murine small intestine intended for the study of gut hormone secretion and live cell imaging of enteroendocrine cells. Journal of Visualized Experiments. (122), 55687(2017).
  11. Raghupathi, R., et al. Identification of unique release kinetics of serotonin from guinea-pig and human enterochromaffin cells. The Journal of Physiology. 591, Pt 23 5959-5975 (2013).
  12. Nozawa, K., et al. TRPA1 regulates gastrointestinal motility through serotonin release from enterochromaffin cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (9), 3408-3413 (2009).
  13. Reimann, F., et al. Characterization and functional role of voltage gated cation conductances in the glucagon-like peptide-1 secreting GLUTag cell line. The Journal of Physiology. 563, Pt 1 161-175 (2005).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

Первичная культура клетокмыши с CFP-репортеромфиксация потенциалафиксация токарасщепление тканейизоляция клетокрегистрация натриевого токадетектирование потенциала действия
Вся ячейка электрофизиологии первичного культивировали мышиных Enterochromaffin клеток
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.