$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Мы представляем здесь assay fluorogenic пептид, который позволяет для быстрого скрининга белковых последовательностей для их протеолитического расщепления протеаз. В нашем первом примере мы выбрали разные расщепления сайта мотивы протеина Спайк (S) РВК-CoV чтобы проиллюстрировать одну заявку на этот assay. Несколько оболочечных вирусов, которые обладают класса я синтез белков, таких как РВК-CoV, гриппа и ОРВИ-CoV (тяжелый острый респираторный синдром) являются основными проблемами для здоровья населения и новые подтипы постоянно развиваются, имеют потенциал для кросс видов барьеры из их естественной хостов для людей1,,1516. Изоляция вирусов и выращивание их в лаборатории не всегда возможно или требует специальных лабораторий, которые не доступны в каждом объекте исследования. Следовательно существует необходимость для оценки потенциальной угрозы общественного здравоохранения новых вирусов, которые могут проводиться в условиях регулярных лабораторных методов. Помимо вирусов ориентации людей, некоторые животные вирусы как FCoV также обладают же сорта синтеза белков, таким образом, аналогичными признаками, чем их коллеги-человека. Изолировать эти вирусы также может быть сложной задачей, что делает использование инновационных средств для их изучения необходимых.
Решающим шагом в жизненном цикле вышеуказанных вирусов является запись хоста клеток и синтез протеолитических обработка соответствующих синтез белка при посредничестве принимающей протеаз1,2. Стандартный способ для изучения этой части вирусный жизненного цикла является transfect mammalian клеток, которые позволяют для выражения протеина, инкубировать или совместно transfect с протеазы интерес, изолировать, чтобы клонировать синтеза белка гена в mammalian выражение вектор белка и выполнять Западный анализ помаркой. Этот метод поставляется с некоторыми ограничениями: наличие вирусной ДНК/РНК для клонирования, расходы для синтеза гена, если не ДНК или РНК, наличие антител для обнаружения синтез белка и его продуктов расщепления и это может занять несколько недель до тех пор, пока выполняется всего исследования. Он даже становится больше времени, деньги и трудоемким, если интерес исследования расследовать некоторые мутации на сайте расщепления, потому что он требует сайт Направленный мутагенез. Пробирного пептидные fluorogenic, которую мы опишем здесь не имеют эти ограничения. Пептиды интерес может быть разработан на основе публично доступных последовательностей, есть несколько поставщиков, которые предоставляют широкий спектр рекомбинантных протеаз, которые актуальны для этих видов исследований и анализа, включая анализ может быть выполнена в рамках один день.
В нашем примере, мы рассмотрели Фурин опосредованной расщепление S2' протеазы признание сайт белка S РВК-CoV, полученных от людей и верблюдов из Египта и Марокко. Как человека EMC/2012, так и верблюд HKU205 S2' сайты содержат типичный RXXR Фурин расщепления мотив. Однако, по мнению расщепления PiTou 2.0, забив алгоритм HKU205 S2' сайт не предсказал, чтобы быть расщепляется, Фурин, который мы экспериментально подтверждено19. Причина почему HKU5 S2' не обрабатывается Фурин может быть обусловлено изолейцина в P1' позиции. Когда мы проверили два пептидов, которые отдельные мутации в EMC/2012 S2' последовательности, мы были в состоянии подтвердить, что изолейцин в P1' основном аннулирует расщепления, тогда как аланина Серина замещения привели к сокращению расщепления. Mor213 S2' сайт не содержит Фурин расщепления мотив и это было не удивительно обнаружить почти не расщепления. Мы также рассмотрели, как Фурин расщепляет S1 S2 и S2' протеазы признание сайты белка FCoV S. Мы были в состоянии соблюдать Фурин расщепления пептидов как FECV (FECV I и-4 S1/S2 и FECV II 1683 S2'), в то время как мутировал последовательности от FIPV вирусов были не расщепляется, Фурин.
При сравнении Фурин опосредованной расщепление EMC/2012 S2' пептида (рис. 1A) с пептидами FECV I и-4 S1/2 (рисунок 2A), мы обнаружили, что существует приблизительно эмиссия разница в Vmax. Это можно объяснить мотив Фурин расщепления в обеих последовательностях (Таблица 1). В то время как минимальное требование для расщепления Фурин RXXR мотив, RXRR последовательность является гораздо более благоприятной2. Таким образом, EMC/2012 S2' пептид, который имеет RSAR мотив, расщепляется с менее специфика, по сравнению с пептидной FECV I и-4 S1/2, который содержит сайт расщепление RSRR Фурин (Таблица 1).
Однако одним из основных ограничений assay является, что пептиды не отражают третичную структуру протеина, которую они обычно встроены в. Расщепление полная длина синтез белка предоставляет синтеза пептида и триггеры принимающей ячейки ввода1. Взаимодействие между протеазы и синтез белка могут быть затронуты также Третичная структура синтез белка, в то время как мы предполагаем, что пептиды являются более или менее линейной. Следовательно расщепление, обнаруженных в assay пептида возможно, искусственной и могут не отражать ситуацию в естественных условиях . Об этом сообщила для расщепления гриппа H3N2 га подтип matriptase. Хотя несколько групп описанный расщепления H3N2 га matriptase в пептидной анализов, также было показано, что инкубации полная длина H3N2 га протеина и matriptase в клеточной культуре не привели к fusogenic HA белка4,20, 21. Существуют другие примеры, которые показывают, что биологически важные регулирование протеолитического расщепления находится на уровне конформации белка. Он был описан синтез белков иногда нужно серии предварительно фьюжн событий, чтобы иметь возможность подвергать расщепления сайтов после слияния. Семлики лес вирус синтез белка, например, требует структурных перестроек во время prefusion событий для того, чтобы разоблачить его синтез белка и сделать его доступным для активации протеолитических22. Таким образом результаты, полученные в assay пептидные fluorogenic должны быть одобрены клеток фьюжн анализов или подобные эксперименты. Однако пептид assay по-прежнему позволяет быстрый показ нескольких комбинаций протеазы/пептида и сократить труда и время последующих экспериментов, поскольку комбинации, которые не показывают расщепления весьма вероятно выставлять же результат в естественных условиях.
Вторым крупным ограничение assay касается протеаз. Пока это возможно только для тестирования растворимых протеаз, но не трансмембранного протеаз. В зависимости от замысла эксперимент это может быть проблемой. К примеру гриппа HAs активируются ряда трансмембранного протеаз, расположенный в клеточных мембранах8. В определенной степени эту проблему можно обойти, используя растворимых протеолитических активных доменов, но результаты должны интерпретироваться с осторожностью и должны быть проверены с обычными методами. Мы хотим сослаться на пример beforementioned с matriptase и его деятельности в направлении H3N2 га. В естественных условиях matriptase расположен в клеточной мембраны, но коммерчески доступных фермент — растворимые каталитического домен. Как уже говорилось в отношении синтез белков, возможно, что она также требует полнометражного протеазы взаимодействовать с полнометражного белкового субстрата для получения расщепления и что тестирование только отдельные домены может привести ложных срабатываний.
Эта методология показал, чтобы быть эффективным для изучения расщепления определенных аминокислотных последовательностей, Фурин. Однако применения техники экстентов в любых доступных протеазы (например, катепсинов, proprotein конвертазы), что делает его полезным методом для экрана пептид кандидатов для расщепления протеазы. Кроме того было показано, что этот assay может также использоваться для проверки эффективности ингибиторов протеазы и таким образом обеспечивает быстрый и простой инструмент для экрана белковых ингибиторов23.
Fluorogenic пептид расщепления assay описанных здесь представляет собой дополнение к bioinformatic расщепления, алгоритмы, который предсказывает расщепления пептидов определяется протеазы, на основе свойств аминокислоты и последовательности. Эти две методики, в сочетании с традицией западной blotting методы может использоваться как эффективный метод для изучения протеазы расщепления в пробирке.