Методическая статья

Проектирование автоматизированных, высокая пропускная способность, непрерывный рост клеток эксперименты с использованием Эволюционивер

DOI:

10.3791/59652

⸱

19 мая 2019 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Biological Design Center, Boston University, 2Department of Biomedical Engineering, Boston University, 3Program in Molecular Biology, Cell Biology and Biochemistry, Boston University, 4Department of Bioengineering, Rice University, 5Wyss Institute for Biologically Inspired Engineering, Harvard University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Фреймворк «Эвовер» обеспечивает высокопропускную непрерывную микробную культуру с высоким разрешением и динамическим контролем над экспериментальными параметрами. Этот протокол демонстрирует, как применять систему для проведения сложного фитнес-эксперимента, направляя пользователей на программирование автоматизированного контроля над многими отдельными культурами, измеряя, собирая и взаимодействуя с экспериментальными данными в режиме реального времени.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Непрерывные методы культуры позволяют клеткам выращиваемых в количественно контролируемых экологических условиях, и, таким образом, широко полезны для измерения фенотипов фитнеса и улучшения нашего понимания того, как генотипы формируются путем выделения. Обширные недавние усилия, направленные на разработку и применение нишевых устройств непрерывной культуры, выявили преимущества проведения новых форм контроля за культурой клеток. Это включает в себя определение пользовательского давления отбора и увеличения пропускной способности для исследований, начиная от долгосрочных экспериментальных эволюции генома широкий выбор библиотеки и синтетической схемы гена характеристика. Платформа Эволюционивер была недавно разработана для удовлетворения растущего спроса: непрерывная платформа культуры с высокой степенью масштабируемости, гибкости и автоматизации. Эвовер обеспечивает единый стандартизацию платформы, которая может быть (пере)-настроен и масштабируется с минимальными усилиями для выполнения многих различных типов высокой пропускной способностью или многомерных экспериментов отбора роста. Здесь представлен протокол для предоставления пользователям фреймворка Эвовер описание для настройки системы для проведения пользовательского, крупномасштабный непрерывный эксперимент роста. В частности, протокол направляет пользователей о том, как запрограммировать систему на мультиплексный два выбора давления-температура и осмоллярность-через многие флаконы Эвовер для того, чтобы количественно фитнес-пейзажи сахаромицеты сервициэ мутанты в порядке Разрешение. Мы показываем, как устройство может быть настроено как программно, через его с открытым исходным кодом веб-программное обеспечение, и физически, путем организации fluiудической и аппаратной макеты. Процесс физически настройке устройства, программирование культуры рутины, мониторинг и взаимодействующих с экспериментом в режиме реального времени через Интернет, выборки флаконов для последующего автономного анализа, и после эксперимента анализа данных являются подробными. Это должно послужить отправной точкой для исследователей различных дисциплин, чтобы применить Эвовер в разработке своих собственных сложных и высокопроизводительных экспериментов по росту клеток для изучения и манипулирования биологическими системами.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Непрерывные методы культуры клетки, сперва превращили почти 70 лет тому назад1,2, наслаждаются недавним возрождением3,4. Это связано с стечением факторов. Во-первых, развитие методов высокой пропускной способности, которые сделали возможным зачтение и создание большого числа генотипов5,6, создало сопутствующий спрос на экспериментальные методики, облегчающие Хорошо контролируемый рост клеток и фенотипирование. С этой целью непрерывная культура представляет собой мощный экспериментальный подход, чтобы извлечь выгоду из возникающих достижений геномной. Содействуя росту/экспериментам над клеточными популяциями в точно контролируемых (и динамичных) условиях окружающей среды, непрерывная культура предоставляет средства для строгого сопоставления генотипов к фенотипам7,8, количественно охарактеризовать инженерии штаммов и организмов9, и отслеживать адаптивные генетические изменения в лабораторных исследований эволюции10,11,12.

Во-вторых, недавнее появление методов доступного прототипирования, таких как аддитивное производство и элементы аппаратного и программного обеспечения с открытым исходным кодом, позволило более широкому кругу пользователей разрабатывать и создавать свои собственные рентабельные формы непрерывных систем культуры непосредственно в лаборатории. Все это привело к захватывающим массив сделай сам (DIY) устройства, которые выполняют непрерывную функциональность культуры, такие как ххимиотерастат13, turbidostat14, или морбидостат15. К сожалению, хотя успех в решении конкретных (нишевых) проблем, для которых они были разработаны, эти специальные решения, как правило, не имеют возможности масштабировать в пропускной способности и/или экспериментальной конструкции сложности.

Система Эвовер была разработана с целью создания единой платформы, которая может вместить растущие экспериментальные потребности непрерывной культуры и соответствовать скорости и масштабу возникающих геномных методов16 (рис. 1a). Дизайн эволюционирует реализует общие принципы, лежащие в основе высоко масштабируемые технологии из других дисциплин17, в том числе стандартизированные следы, модульные компоненты, и с открытым исходным кодом принципы проектирования. Таким образом, решения для новых нишевых приложений могут быть спроектированы без серьезных изменений в системе. Состоит из высоко модульных и с открытым исходным кодом, оборудование, электроника, и веб-программное обеспечение, Эволюционивер является первой автоматизированной непрерывной системы культуры, которые могут быть экономически эффективно и легко повторно настроен на проведение практически любого типа эксперимент по росту высокой пропускной способности. Благодаря модульным и программируемым смарт-рукавам, в которых находятся все датчики и приводы, необходимые для управления отдельными культурами, Эволвер однозначно обеспечивает масштабирование как пропускной способности, так и индивидуального контроля условий культуры. Кроме того, как веб-платформа, Эвовер обменивается данными и информацией с удаленными компьютерами в режиме реального времени, позволяя одновременному мониторингу сотен отдельных культур и автоматизированной культуры возмущений через произвольно определенный контроль Алгоритмы.

В предыдущей работе16, надежные показатели Эволвер был продемонстрирован в долгосрочных экспериментах в течение сотен часов работы, и его способность культивировать различные организмы, от E. coli и с . цервиии для неодомашненных Микробов. Была проведена серия различных экспериментов по отбору, в которых программно определены многомерные градиенты отбора были применены по всему спектру индивидуальных условий культуры и в результате этого клеточные фитнес-ландшафты были Количественно. Здесь цель состоит в том, чтобы предоставить пользователям Эвовер описание того, как использовать систему для проектирования и этих типов экспериментов. В качестве иллюстративного примера, методы количественного фитнес-пейзаж с. сервициэ мутантов через двумерный экологический градиент, состоящий из температуры и осмотического напряжения представлены. Протокол направляет пользователей через настройку платформы Эвовер для этого эксперимента как программно, в использовании программного обеспечения для установки заказной мутности и контроля температуры процедуры для каждой из 16 параллельных культур непрерывного, и физически, через макет флюидики надлежащим образом маршрут СМИ различной концентрации соли. Этот протокол должен служить в качестве общей рубрики для настройки Эволюционивер для выполнения широкого спектра автоматизированных непрерывных экспериментов культуры для различных исследований и дисциплин.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. подготовка средств массовой информации, ампул и Инокулям

Примечание: Этот протокол предполагает, что пользователи уже калибровали систему Эвовер и используют конфигурацию смарт-втулки, описанная в предшествующих работах16. Смарт-рукава легко перепроектированы или изменены, но настройка деталей объема и параметров управления может отличаться для альтернативных конфигураций.

  1. За день до эксперимента, подготовить 2 мл в одночасье жидких культур S. cerBY4741 , эталонных штамма и вариант штаммов в ИПД СМИ (дрожжи Пептоне декстроза) при температуре 30 ° c в встряхивании инкубатора установить по крайней мере 300 r.p.m.
  2. Передача стерильных носителей ИПД в чистые, автоклавные бутылки с трубками. Кроме того, средства массовой информации могут автоматически использоваться непосредственно в бутылках, предварительно оснащенных трубками.
    Примечание: Бутылки подходят с труб путем бурения отверстие в крышку и работает труб через него с разъемами для обеспечения его на месте. См. таблицу материалов.
  3. Добавить размешать бар, чтобы каждый флакон и винт на флакон крышкой оснащены притоком и стерлюкс соломинки. Убедитесь, что все компоненты чисты при визуальном осмотре.
  4. Поместите флаконы в автоматическую стойку, накрыть фольгой, и автоклав на гравитационном или вакуумном цикле с 20-мин шагом стерилизации.

2. Настройка эксперимента

  1. В трех больших Бикерс, подготовить 500 мл 10% отбеливателя, 200 мл 10% отбеливателя, и 300 мл 70% этанола.
  2. Использование переключателей на устройстве Эвовер, включите 5 V питания на Эвовер, подождите 5 с, затем включите 12 V питания.
  3. Если выполняется несколько флаконов из той же самой бутылки средств массовой информации, подключите несколько строк ввода средств массовой информации с трубками сплиттеры. Пользовательские разветвители труб могут быть сконструированы с помощью компонентов Luer.
  4. Погрузите медиавходные линии в первый стакан отбеливателя, а средства массовой информации – во второй стакан отбеливателя. Поместите нисходящий конец линий ввода средств массовой информации во второй стакан с линиями эффлюкс. Поместите линии отхода в отходы Carboy.
  5. Добавить 1-2 L отбеливателя в больших пустых отходов Carboy, который будет стерилизовать отходы, образующихся во время эксперимента. Проконсультируйтесь с координатором по безопасности, чтобы обеспечить надлежащее удаление отходов.
  6. Использование сенсорного экрана на Эвовер, перейдите в раздел настройки, и запустить все насосы для 20 s для заполнения линий жидкости с 10% отбеливателя. Во время работы, обеспечить визуальный осмотр, что все линии были заполнены, и что насосы работают нормально. Разрешить отбеливатель, чтобы сидеть в линиях, по крайней мере 30 мин для стерилизации.
  7. Запустите насосы снова с помощью сенсорного экрана приложения, пока линии больше не погружают, толкая воздух через линии, чтобы получить как можно больше отбеливателя, как это возможно.
  8. Поместите средства ввода-носителя в стакан этанола и повторите, как в выше, заполняя линии этанола и промывка с воздухом.
    Примечание: Как этанол убивает быстро, нет необходимости ждать 30 мин для стерилизации.
  9. Прикрепите линии ввода средств массовой информации к средствам массовой информации бутылок с разъемы Luer и запустить насосы до тех пор, пока средства массовой информации полностью проходит через линии, промывка любого остаточного этанола.
  10. Частично вставьте стерилизованных флаконов в эвовер смарт рукава и подключить линии к надлежащей позиции, в соответствии с цветом кодирования на линиях. Начните с присоединения входных линий к короткой соломы притока, а затем отходы линии в длинную соломинку эффлюкс.
    Осторожно: Очень важно проверять на свободные соединения или неправильно маршрутизированных линий. Неспособность сделать это вызовет переполнения и потенциально повредить смарт-рукав.
  11. Запустите все насосы в 10 с шагом, чтобы заполнить флаконы со средствами массовой информации. Обеспечить путем визуального осмотра насосы эффлюксы эффективно удаления средств массовой информации через соломинки эффеккс, чтобы предотвратить переполнения. Если соломинки из эффлюкса, как представляется, не функционируют эффективно, обследуйте флюидические соединения линии и перисталический насос. Исправьте или замените детали по мере необходимости.
  12. Push флаконы до полностью заключенная на смарт-рукав.
  13. Установите начальные условия для экспериментальных параметров с помощью сенсорного экрана Эвовер на интерактивной странице настройки. Для всех флаконов установите температуру до 30 °C и размешайте до 10. Это может быть сделано для всех флаконов сразу, перетаскивая пальцем по сенсорному экрану, чтобы выбрать все флаконы.

3. Настройка программного обеспечения и программирования алгоритмической культуры

  1. В приборной панели Эвовер на компьютере перейдите на страницу менеджера эксперимента. Выберите базовый эксперимент в панели Навигатор эксперимента или существующий эксперимент в качестве отправной точки и нажмите клон нового.
    Примечание: Можно использовать эксперименты других групп, вставляя ссылку GitHub в репо, где экспериментальное определение сохраняется в эксперименте менеджера.
  2. Укажите имя эксперимента и устройство эвовер, на котором будет проводиться эксперимент. Убедитесь, что нужные параметры калибровки были выбраны путем изменения этих полей на странице.
  3. Воспользуйтесь селекционером и параметром определения параметров, чтобы установить экспериментальные условия. Например, чтобы установить температуру для флаконов 0-4 до 30 °C, выберите флаконы для селектора флакона, установите определение параметра на 30 и щелкните набор. Повторите это для OD, чтобы установить верхний и нижний порог для каждого флакона.
  4. После завершения экспериментальных определений параметров сохраните эксперимент, нажав кнопку сохранить и нажмите кнопку Пуск для запуска.

4. Инициирование эксперимента и мониторинг в режиме реального времени

  1. Как только эксперимент продолжается, перейдите к панели данных в режиме реального времени в интерактивной приборной панели. Для каждого флакона проверьте, что значения OD держатся на нуле, и что температура на или прогрессирует к запрограммированным уровням, просматривая графики.
  2. Для приготовления инокулята, измерения OD ночных культур, рассчитать желаемый раз разбавления предполагая флакон объемом 25 мл, и пипетки рассчитывается объем инокулям в пробирки через порт выборки. Например, для достижения желаемого стартового OD около 0,05 в пробирку культуры из ночных культур, которые находятся на OD 2,0, 625 мкл клеток должны быть добавлены к каждому флаконе.
  3. Проверьте графики на приборной панели, чтобы увидеть, что OD графики были обновлены соответственно. Увеличение к ближайше пожеланного starting OD должно быть увидено в диаграммах.
  4. Отслеживайте различные типы данных (такие как OD, температура, темп роста, поколения и средства массовой информации) на протяжении эксперимента, просматривая соответствующие графики на приборной панели. Эти значения могут сообщать пользователю экспериментальные решения (например, временные точки расписания) или даже использоваться в функциях для выполнения автоматической обратной связи.
  5. Для замены средств массовой информации бутылки середине эксперимента, пауза эксперимент в эксперименте менеджер панели для предотвращения событий насоса от происходящих. Быстро отвинтить медиалинию из пустой бутылки и подключить его к новой бутылке. Избегайте прикосновения концы труб для предотвращения загрязнения. Возобновить эксперимент в эксперименте менеджера.

5. выборка клеток дрожжей от ампул Эвовер

  1. Подготовьте раствор циклогексиммид ингибировать синтез белка и исправить дрожжи клетки для анализа потока цитометрии. В 15 мл конической трубки, добавить 12 мл PBS и 12 мкл из 20 мг/мл циклогексиммид и вихрь для 5 s.
  2. Использование Мультиканальный пипетки, Алиготе 100 мкл в каждый колодец 96-хорошо круглый нижней пластины.
  3. Оберните пластины в алюминиевую фольгу, чтобы блокировать свет и держать на 4 ° c до тех пор, пока необходимо.
  4. Чтобы образец, пипетки через выборки порт на флакон крышкой с расширенной длины 200 мкл советы.
  5. Пипетка 100 мкл из пробирки в колодец в фиксацию пластины, смешивая 2-3x по дозирования вверх и вниз, затем восстановить в фольге и вернуть пластины до 4 ° c.

6. эксперимент сломать и очистить

  1. Подготовка 1 л 10% отбеливателя и 2 500 mL DI водные решения в больших биакерс.
  2. Остановите эксперимент, отправив команду Stop на панель менеджера эксперимента. Данные по-прежнему хранятся в базе данных с облачной базой данных и все еще могут быть просмотрены позднее в режиме реального времени на панели мониторинга или загружены для автономного анализа.
  3. Удалите флаконы с смарт-рукава и поместите их в стойку автоклав, чтобы избежать переполнения в последующих шагах.
  4. Открутить СМИ ввода строки из средств массовой информации бутылки и поместить их в стакан 10% отбеливателя. Запустите насосы от интерфейса Эволюционивер, как в установке для стерилизации линий и флаконов.
  5. Отключить линии от флаконов и затопить линии в воде DI. Запустите насосы, чтобы смыть все отбеливатель из системы сначала с водой DI, затем с воздухом.
  6. Выключите Эвовер, сначала переключившись на 12 V-блок питания, ожидая 5 с, а затем выключая блок питания 5 V.
  7. Замочите размешать бары и крышки в 10% отбеливателя, затем смойте водой DI. Будьте уверены, чтобы промыть приток и стерлюкс соломинки каждой крышки, пропустив DI воды через них. Скраб флаконы, используя кисть пробирки, если пленка сформировалась на стенах.
  8. Утилизируйте отходы надлежащим образом и тщательно промойте контейнеры.
    Осторожно: Контейнеры для отходов будут содержать смесь 10% отбеливателя, стерилизованных клеточных отходов культуры, и следовых количеств этанола. Обратитесь к координатору безопасности для надлежащей обработки и утилизации.

7. количественное определение фитнес с использованием потока цитометрии анализ дробных популяций

  1. Проанализируйте собранные образцы из раздела 5 с помощью потока, cytometer оснащен соответствующим флуоресцентной канальной и детекторами16.
  2. Получить по крайней мере 10 000 событий на образец, и ворота для нетронутыми клеток с помощью Форвард и боковой разброс данных.
  3. Ворота основаны на соответствующем канале флуоресценции (например, GFP) для определения частичного распределения каждой популяции.
  4. На компьютере сохраните данные в нужное место с страницы менеджера эксперимента, нажав кнопку «Экспортировать».
  5. Из файлов данных Эволюционивер Определите количество поколений, завершенные каждым пунктом времени для каждого флакона. В коде Эвовер, поколения рассчитываются по первой сегментирования OD данных между каждым разбавления события, то каждый сегмент подходит с базовой экспоненциальной формы figure-protocol-1 для каждого сегмента, уступая r, темп роста16. Количество поколений в течение периода времени затем рассчитывается с использованием следующей формулы:
    figure-protocol-2
  6. Участок журнала соотношение маркированных и немаркированных популяций из потока цитометрии данных против поколения номер из вышеуказанных расчетов на время образцов были взяты. Определите линейную область и подогнать наклон согласно следующему уравнению. Этот склон обычно определяется как конкурентоспособная фитнес18,19.
    figure-protocol-3

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Описанный здесь протокол использовался для построения фитнес-карт для генетических вариантов с. цервициэ через двумерный градиент напряжения температуры и солености. В частности, для каждого варианта деформации, мы использовали Эвовер для проведения pairwise конкуренции эксперименты против флуоресцентно-помечены ссылкой штамм (S. cer штамм BY4741 с интегрированными учредительный репортер mNeonGreen) в 16 различных комбинации этих напряжений (рис. 1). Для вариантов, два нокаут штаммов были выбраны каждый предсказал быть чувствительны к одному из стресса осей условие: ΔPRX1 который, как сообщается, имеют дефекты фитнес в высоких температурах20 и ΔPBS2 с Фитнес дефекты на высокой концентрации соли21. В качестве контрольного варианта использовался немаркированные штамм BY4741 дикого типа, которые, как ожидается, будут выполнять аналогично эталему деформации. В общей сложности, эти 3 72-часовой конкурс эксперименты проводились одновременно в 48 флаконы через три Эвовер (16-флакон) устройства все запустить с одного компьютера.

Интерактивная приборная панель Эвовер используется для навигации большого объема данных, генерируемых в ходе каждого эксперимента (Диаграмма 2A). Репрезентативные следы OD во всех 16 флаколах одного устройства Эвовер показаны на рисунке 2B. Каждый след отображает характерную пилозуб из алгоритма управления турбидостатом, который использует обратную связь на OD для запуска разведений и поддержания культур в узком диапазоне плотности (0,2-0,3 в данном случае). Данные о состоянии и температуре непрерывно измеряются, передаются в базу данных с поддержкой облака и обновляются в режиме реального времени в интерактивной приборной панели Эволюционивер. Из непрерывно потоковых данных показатели более высокого порядка (например, темпы роста, совокупные поколения) могут быть рассчитаны и нанесены на приборную панель (Рисунок 2C) и даже используются в качестве параметров обратной связи в различных схемах отбора (например, мормордостат).

Чтобы создать фитнес-карты, мы измеряем скорость, с которой эталон переконкурирует с вариантом деформации, включив измерения потока цитометрии и данные о росте Эвовера. В частности, популяции фракций вычисляются как соотношение между вариантом деформации по эталону, используя данные потока цитометрии из каждого образца времени. Для каждой культуры и времени, прошедшее число поколений интерполируется от данных о темпах роста в каждом периоде разбавления. Построение отношения бревна против поколений, качественные различия между условиями начинают появляться (Рисунок 3A). Для расчета пригодности, склон подходит через линейную часть каждого участка18,19, уступая количественное значение Фитнес (с обеих знак и скорость), который описывает, как вариант штамм конкурирует против эталонных штамма ( Рисунок 3B). В этом эксперименте отрицательные значения пригодности указывают на то, что вариант штамма превосходит по эталонных штаммов. Построение теплокарт из всех фитнес-вычислений позволяет визуализировать двумерный фитнес-ландшафт, выявляя тонкие количественные различия в производительности между штаммами и условиями (Рисунок 3C).

Из фитнес-карты, мы видим, что каждый вариант штамма экспонатов фитнес дефекты, которые проявляются в различных формах. ΔPRX1 в первую очередь чувствительны к высоким температурам, но соль стресс, как представляется, добавка эффект, увеличивая фитнес дефект. И наоборот, ΔPBS2 показывает фитнес дефекты в первую очередь в ответ на высокие концентрации соли, с минимальными различиями вдоль оси температуры. Эти результаты подчеркивают полезность экспериментов по отбору в высоком разрешении, особенно для расшифровки взаимодействий множественных факторов экологического стресса, которые могут иметь Аддитивные, синергетические или эпистатические эффекты.

Наконец, важно отметить, что в некоторых случаях, особенно при тяжелых условиях стресса, Фитнес расчеты могут привести к преувеличенным или искаженные результаты. Например, кажется, что ΔPBS2 показывает крутой положительный наклон в состоянии 39 °c/1 M относительно эталонных штаммов (Рисунок 3a). Это объясняется плохим ростом обоих штаммов, что отражено в данных дикого типа и ограничивает полезность данной метрики в этом состоянии. Недостаточное число поколений приводит к 1) бедное разделение точек времени, которое мешает фитинга склона, и 2) чувствительность к стохастической эффекты, возникающие из фазы ЛАГ. Хотя мы не решили сделать это в этом исследовании, данные о росте в реальном времени, собранные Эвовер во время эксперимента, можно было бы использовать для информирования о решении продлить эксперимент и собрать дополнительные временные точки для этого условия с небольшим усилием. В последующих экспериментах, начиная коэффициенты могут также быть модулированы, чтобы продлить длину линейного региона до насыщения происходит.


figure-results-1
Рисунок 1: обзор структуры Эвовер и экспериментального дизайна. A) эвовер является автоматизированной непрерывной платформой для культуры, позволяющей многопараметру контролировать условия культуры. Платформа состоит из смарт-рукава, в котором находятся датчики и приводы для управления условиями культуры, перисталический массив насоса для текучий носитель и отходы в и из культур, сенсорный экран для взаимодействия вручную с устройством, и компьютер используется для взаимодействия с облачной инфраструктурой, где передаются данные с платформы. (B) эвовер может быть настроен несколькими способами: физически, через ячейки и средства массовой информации входы, и программно, регулируя алгоритмы управления смарт-рукав флакона культуры модулей. Это может быть использовано для программы многомерного отбора/экологические градиенты в высоком разрешении, с выходы, состоящие из физически собранных ячеек в определенных временных точках и в режиме реального времени потокового данных культуры. (C) Настройка Эвовера для проведения фитнес-эксперимента роста через двумерный градиент выделения, состоящий из температуры и осмотического напряжения. флаконы культуры Эвовер были посеяны равными пропорциями эталона и варианта штамма дрожжей. Режим turbidostat был запрограммирован для поддержания всех культур в экспоненциальной фазе в определенном окне OD (OD 0,2-0,3). Температура и условия в средствах массовой информации были разнообразны через массив смарт-рукав, чтобы сформировать два независимых градиентов напряжения. Базовые средства массовой информации состояли из ИПД (2% глюкозы) + 100 мкг/мл карбенциллин + 25 мкг/мл хлорамфеникола в качестве меры предосторожности против бактериального заражения. Медиа композиции были разнообразны, добавив дополнительный нав до 0 м, 0,6 M, 0,8 M, или 1,0 м. температура была запрограммирована на одно из четырех значений: 30 ° c, 35 ° c, 37 ° c, или 39 ° c. D) примеры сырья для культуры ОД и фракций населения в трех проверенных условиях. Эксперимент по конкуренции был сохранен для 72 h, пробуя на 24 h и затем каждые 12 h до заключения эксперимента. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.

figure-results-2
Рисунок 2: Эвовер в реальном времени анализа данных приборной панели. (A) эвовер данные обрабатываются и передаются в режиме реального времени с помощью облачного программного обеспечения в интерактивную приборную панель. Через приборную панель, пользователи могут определить и инициировать свои собственные режимы культуры на подключенный Эволюционивер, монитор в настоящее время работает эксперименты по всем подразделениям Эвовер, и изменять экспериментальные условия вручную на отдельных флакон или набор флаконов, если это необходимо. (B) OD трассировки для каждого флакона по матрице условий, протестированных на протяжении всего эксперимента. Трассировки можно просматривать в реальном времени, чтобы убедиться, что эксперимент выполняется по желанию и используется после эксперимента для дальнейшего анализа. (C) темпы роста и клеточных поколений можно вычислить из следов OD на лету, чтобы отслеживать прогресс эксперимента. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.

figure-results-3
Рисунок 3: Строительство фитнес-поверхностей. (A) ячейки популяции фракций естественный лог (вариант штамма/ссылка штамм) заговор против клеточных поколений. Цвет указывает на температуру выделения, а капли выделяют концентрацию соли. (B) для количественной оценки относительной пригодности варианта к эталему деформации, метрика пригодности получена от скорости, с которой клеточная фракция изменяется за поколения. Эта метрика рассчитывается из линейной области клеточных участков фракции, используя как минимум три точки. (C) относительные метрики пригодности отображаются на теплокарте для построения фитнес-поверхности над градиентами экологического стресса. Верхний правый угловой условие (39 ° c/1.0 M) для дикого типа и ΔPBS2 не включены в этот анализ, поскольку культуры прошли через недостаточное поколение (см. репрезентативные результаты). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Выбор роста является незаменимым инструментом в биологии, широко используемый для создания и характеристики фенотипических различий между клеточной популяции. В то время как партии культур позволяют выбор роста ограниченным образом, непрерывные методы культуры резко расширяют степень контроля и предсказуемости этих экспериментов, оказывая точное регулирование по форме и динамике отбора, чтобы генерировать повторяемые количественные результаты22. Непрерывная культура используется для тщательного контроля отбора для библиотек высокого разнообразия20,23,24,25и для внедрения сложных адаптивных режимов в экспериментальных и направленная эволюция11,12,26,27. Непрерывная культура также позволяет точную характеристику клеток через массив количественно контролируемых условиях, чтобы лучше понять сложные генетические системы и оптимизировать инженерии штаммов биопроизводство9,14 , 28.

Однако, нет универсального протокола для непрерывной культуры, так как незначительные изменения в селективных условиях могут привести к резким изменениям биологических исходов4,29,30. Экспериментаторы должны уметь выбирать между режимами отбора и соответствующим образом адаптировать экспериментальные протоколы и оборудование. В дополнение к предложению выбора между параметрами управления, такие системы идеально будут достаточно сложными, чтобы самостоятельно управлять несколькими параметрами одновременно в высоко-параллельных экспериментах, которые необходимы для расшифровки взаимодействующих входов в сложных биологических систем (например, Эпистаз). Эволюционивер решает эту проблему, предоставляя пользователям возможность произвольно управлять обратной связью между условиями культуры и функциями флюидов для указания узкоспециализированных экологических ниш.

Чтобы преодолеть ограничения в текущей настройке и расширить или изменить параметры управления, смарт-рукав может быть легко изменен, чтобы добавить новые датчики или приводов. Дополнительно, уменьшая объем флакона уменьшал бы расходования средств, которые могут быть значительно в непрерывной культуре. В то время как текущий дизайн позволяет измерение и контроль температуры, агитация культуры, световой индукции, мутности, и флюидики, другие параметры должны быть измерены внешне путем отбора проб из флаконов. Текущая работа включает в себя способность контролировать ферментативную активность через люциферазы и регулировать растворенный кислород и pH непосредственно в культурах Эвовер. Кроме того, не будучи продемонстрирован в этой работе, Эвовер может взаимодействовать с новыми миллимузидической мультипикционными устройствами16 , которые рисуют на принципах крупномасштабной интеграции (происходящий из электроники и принятой микрофлюидией) для того, чтобы недорого включить более сложные флюидов обработки (например, мультиплексы флюидов входы, пузырек к флаконе переводы). Эти подарочные модули могут быть разработаны и изготовлены полностью в лаборатории, что позволяет пользователям маршрутных жидкостей программично приводя различные комбинации клапанов в автоматизированных fluiудических процедур. Это позволяет пользователям преодолевать жесткие флюидные конструкции, традиционно используемые в непрерывной культуре, а также масштабировать fluiудические возможности с высокой пропускной способностью с меньшим числом дорогостоящих элементов управления (например, периститетические насосы). Наконец, мы надеемся на включение автомасштабирования платформы, которая будет использовать эти миллифлюидики и DIY компонентов, преодоление ограничения ручного взаимодействия во время длительных и больших экспериментов, где выборки культур будет громоздким.

В дополнение к физическим модификациям платформы, веб-программное обеспечение открывает новые степени свободы, позволяя пользователям писать, редактировать и обмениваться пользовательскими скриптами эволюционирующих, генерируя полностью автоматизированные, основанные на обратной связи программы культуры (например, turbidostat). Пользователи могут программно развертки по параметру диапазоны в тонкие вариации на ту же схему отбора или подключить алгоритмы управления в новых комбинациях, чтобы указать любое количество сложных схем отбора. Кроме того, способность легко отслеживать культуры в режиме реального времени преобразует способ, в котором эксперименты проводятся. Мониторинг в режиме реального времени, пользователи могут 1) проверить согласованность между пробегов, критическая особенность для биопроизводство приложений и высокой пропускной способностью экспериментов, и 2) вмешиваться во время экспериментов, если это необходимо, чтобы устранить сложные штаммы, которые проявляют плохой рост или формирование биопленки, или диагностировать ошибки пользователей (например, загрязнение). Наконец, с несколькими потоками данных, собираемых и интерпретируется в режиме реального времени для каждой отдельной культуры, Эволюционивер генерирует высокую плотность данных, что может облегчить машинное обучение подходы для нового анализа вниз по течению.

Помимо продемонстрировали использует для пригодности характеристика, выбор библиотеки, и Лаборатория эволюции, мы рассматриваем ряд смежных областях, как созрели для реализации в Эвовер с интегрированной флюидики. эксперименты эвовера с образцами микробиома могли бы проанализировать стабильность сообщества в контролируемых средах31,32, исследовать состав микробиоты с помощью методов культуромики33, или динамично смешивать виды, чтобы Допросите экологическую динамику колонизации или вторжения34,35. Многочисленные методы непрерывной направленной эволюции биомолекул может быть легко реализована на устройстве, а26,36,37, значительно увеличивая доступность и пропускную способность этих систем. Способность оптимизировать условия выращивания, такие как состав СМИ, температура и деформаций в динамичной, высокой пропускной природы может помочь в оптимизации усилий для промышленного биомантуринга приложений9. Далее мы предусматриваем вертикально интегрирующую Эвовер с другими методами анализа, такими как микроскопия и поток цитометрии в замкнутом цикле моды, обеспечивая полностью автоматизированную систему для роста и анализа клеточных культур как в одиночной клетке, так и в популяции Уровней. Кроме того, с некоторыми аппаратными изменениями в смарт-рукав, таких как уплотнения судна и контроля содержания газа, Эволюционивер потенциально может быть адаптирована для поддержки роста более широкого диапазона типов клеток, таких как подвеска клеток млекопитающих. Также возможно поместить всю структуру в анаэробную камеру для анаэробной клеточной культуры. Заглядывая вперед, мы стремимся создать нашу программную основу в централизованную облачную инфраструктуру и считаем, что это позволит пользователям легко настраивать, анализировать и обмениваться своими данными удаленно без необходимости физически присутствовать в лаборатории. Функционирующая в качестве куратора данных, облачная инфраструктура также поддается крупномасштабным метаанализу во всех экспериментах. Мы предполагаем, что Эволюционивер и эти будущие достижения значительно расширят сферу возможных экспериментов по выбору роста, способствуя автоматизации и инновациям в непрерывной культуре.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы, Брэндон г. Вонг и Ахмад с. Халил, являются сооснователями Fynch БиоНайс инк, которая разрабатывает платформу Эволвер, используемые в этой статье.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим б. Стэффорд за помощь в проектировании системы и х. Халиля, а. Солтаничзаде, а. Сун, с. Пайк и а. Кавале за помощь в строительстве системы. Мы признаем, электроника дизайн фонда (ЭДФ), инженерно-технический продукт инновационный центр (EPIC), а программное обеспечение & применение инновационной лаборатории (парус) в институте Харири для вычислений в Бостонском университете за их услуги. Эта работа была поддержана НФ (MCB-1350949 to А.С.К.), и DARPA грантов HR0011-15-C-0091 и HR0011-18-2-0014 (до А.С.К.). А.С.К. также признает, финансирование из низ директор новый новатор награда (1DP2AI131083-01), DARPA молодой факультет премии (D16AP00142), и ННФ в области вычислительной техники (СРС-1522074).

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
5-галлонный пластиковый Hedpack с крышкойMidwest Brewing and Winemaking Supplies45-56Y8-E2FRДля сбора отходов
a-D(+)-глюкозыChem-Impex00805Для YPD Medium
Attune NxT AutosamplerThermo Fisherпозволяет проточному цитометру запускать образцы с 96-луночной пластины
Attune NxT Flow CytometerThermo FisherИспользуется для определения популяционных долей с помощью флуоресценции одиночных клеток
Bacto PeptoneFisher ScientificDF0118-07-0Для YPD Средний
карбенициллинFisher ScientificBP2648250Для YPD Средний
химически стойкий соединитель для фитинга с колючей трубкой, для 1/8" Tube ID, 250° F Максимальная температураMcMaster-Carr5121K731Для разветвления входной среды
ХлорамфениколFisher ScientificBP904-100Для YPD Medium
CLOROX GERMICIDAL Bleach 8.25Fisher Scientific50371500Для стерилизации жидкостных линий
Специальная крышка флакона eVOLVERFynchBioLid имеет порты для отбора проб и ввода/вывода жидкости
ЦиклогексимидFisher ScientificICN10018301Для проточной цитометрии пробоотборные пластины
Этанол, безводный (гистологический)Fisher ScientificA405P-4Для стерилизации жидкостных линий
eVOLVER UnitFynchBio
Fisherbrand Longended-Length Tips (Lift Off Rack; от 1 до 200 мкл)Fisher Scientific02-681-420Для отбора проб
из флаконовFisherbrand Octagon Spinbar Магнитные мешалкиFisher Scientific14-513-57Диаметр: 4,5 мм, Длина, 12 мм
Многоразовые стеклянные медиа-бутылки Fisherbrand с крышкойFisher ScientificFB8002000Должны быть оснащены трубкой
Высокотемпературная силиконовая резиновая трубка Полупрозрачный белый, твердость 70A, 1/8" ID, 1/4" ODMcMaster-Carr51135K73Для медиа-бутылок
Mac MiniAppleДля проведения эксперимента/сбора данных
Фосфатно-солевой буфер (PBS)BP243820Fisher Scientific Для проточной цитометрии Проточные цитометрические пластины
ПипеткиEppendorf
, Заглушки, для 1/16" Колючая трубка ID, полипропиленMcMaster-Carr51525K141Для бутылок
со средоточиемПластиковая быстроповоротная трубная муфта, заглушки, для колючей трубы 5/32" ID, полипропиленMcMaster- Carr51525K144Для медиа-бутылок
Пластиковая быстроповоротная трубная муфта, Гнезда, для 1/16" колючей трубки ID, полипропиленMcMaster-Carr51525K291Для медиа-бутылок
Пластиковая быстроповоротная трубная муфта, Гнезда, для 5/32" Колючая трубка ID, полипропиленMcMaster-Carr51525K294Для медиа БУТЫЛКИ
ВИНТОВЫЕ КРЫШКИ, С ОТКРЫТЫМ ВЕРХОМ, С СИЛИКОНОВЫМИ ПЕРЕГОРОДКАМИ С ПОКРЫТИЕМ ИЗ ПТФЭ, LAB-PAC, SEPTUM. Размер резьбы: 24-400, GREENChemglassCG-4910-04Пробирки
для культур Хлорид натрия (NaCl)FsherScientific S271-3Для YPD Medium
SpectraMax M5 Многорежимный считыватель микропланшетовМолекулярные устройствадля измерения OD600 ночных клеточных культур
Только флакон, образец, 40 мл, прозрачный, 28 мм x95 мм, GPI 24-400ChemglassCG-4902-08Флаконы для культур
Дрожжевой экстрактFisher ScientificBP1422-500для среды YPD
Научный Пластиковая быстроповоротная трубка

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Monod, J. The Growth of Bacterial Cultures. Annual Review of Microbiology. , (1949).
  2. Novick, A., Szilard, L. Experiments with the Chemostat on spontaneous mutations of bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 36 (12), 708-719 (1950).
  3. Bull, A. T. The renaissance of continuous culture in the post-genomics age. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology. 37 (10), 993-1021 (2010).
  4. Gresham, D., Dunham, M. J. The enduring utility of continuous culturing in experimental evolution. Genomics. 104 (6), 399-405 (2014).
  5. Lang, G. I., et al. Pervasive genetic hitchhiking and clonal interference in forty evolving yeast populations. Nature. 500 (7464), 571-574 (2013).
  6. Maddamsetti, R., et al. Adaptation, Clonal Interference, and Frequency-Dependent Interactions in a Long-Term Evolution Experiment with Escherichia coli. Genetics. 200 (2), 619-631 (2015).
  7. Ishii, N., et al. Multiple High-Throughput Analyses Monitor the Response of E. coli to Perturbations. Science. 316 (5824), 593-597 (2007).
  8. Brauer, M. J., et al. Coordination of Growth Rate, Cell Cycle, Stress Response, and Metabolic Activity in Yeast. Molecular Biology of the Cell. 19 (1), 352-367 (2008).
  9. Moser, F., et al. Genetic circuit performance under conditions relevant for industrial bioreactors. ACS Synthetic Biology. 1 (11), 555-564 (2012).
  10. Kao, K. C., Sherlock, G. Molecular characterization of clonal interference during adaptive evolution in asexual populations of Saccharomyces cerevisiae. Nature Genetics. 40 (12), 1499-1504 (2008).
  11. Toprak, E., Veres, A., Michel, J. -B., Chait, R., Hartl, D. L., Kishony, R. Evolutionary paths to antibiotic resistance under dynamically sustained drug selection. Nature Genetics. 44 (1), 101-105 (2011).
  12. Hope, E. A., Amorosi, C. J., Miller, A. W., Dang, K., Heil, C. S., Dunham, M. J. Experimental Evolution Reveals Favored Adaptive Routes to Cell Aggregation in Yeast. Genetics. 206 (2), 1153-1167 (2017).
  13. Miller, A. W., Befort, C., Kerr, E. O., Dunham, M. J. Design and Use of Multiplexed Chemostat Arrays. Journal of Visualized Experiments. (72), 2-7 (2013).
  14. Takahashi, C. N., Miller, A. W., Ekness, F., Dunham, M. J., Klavins, E. A low cost, customizable turbidostat for use in synthetic circuit characterization. ACS Synthetic Biology. 4 (1), 32-38 (2015).
  15. Toprak, E., et al. Building a morbidostat: an automated continuous-culture device for studying bacterial drug resistance under dynamically sustained drug inhibition. Nature Protocols. 8 (3), 555-567 (2013).
  16. Wong, B. G., Mancuso, C. P., Kiriakov, S., Bashor, C. J., Khalil, A. S. Precise, automated control of conditions for high-throughput growth of yeast and bacteria with eVOLVER. Nature Biotechnology. 36 (7), 614-623 (2018).
  17. Bondi, A. B. Characteristics of scalability and their impact on performance. Proceedings of the Second International Workshop on Software and Performance - WOSP ’00. , 195-203 (2000).
  18. Ziv, N., Brandt, N. J., Gresham, D. The Use of Chemostats in Microbial Systems Biology. Journal of Visualized Experiments. (80), e50168(2013).
  19. Sanchez, M. R., et al. Differential paralog divergence modulates genome evolution across yeast species. PLOS Genetics. 13 (2), e1006585(2017).
  20. Gibney, P. A., Lu, C., Caudy, A. A., Hess, D. C., Botstein, D. Yeast metabolic and signaling genes are required for heat-shock survival and have little overlap with the heat-induced genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (46), E4393-E4402 (2013).
  21. Giaever, G., et al. Functional profiling of the Saccharomyces cerevisiae genome. Nature. 418 (6896), 387-391 (2002).
  22. Piper, M. D. W., et al. Reproducibility of oligonucleotide microarray transcriptome analyses. An interlaboratory comparison using chemostat cultures of Saccharomyces cerevisiae. Journal of Biological Chemistry. 277 (40), 37001-37008 (2002).
  23. Badarinarayana, V., et al. Selection analyses of insertional mutants using subgenic-resolution arrays. Nature Biotechnology. 19 (11), 1060-1065 (2001).
  24. Dai, J., Hyland, E. M., Yuan, D. S., Huang, H., Bader, J. S., Boeke, J. D. Probing Nucleosome Function: A Highly Versatile. Library of Synthetic Histone H3 and H4. 134 (6), 1066-1078 (2008).
  25. McGeachy, A. M., Meacham, Z. A., Ingolia, N. An Accessible Continuous-Culture Turbidostat for Pooled Analysis of Complex Libraries. bioRxiv. , 450536(2018).
  26. Esvelt, K. M., Carlson, J. C., Liu, D. R. A system for the continuous directed evolution of biomolecules. Nature. 472 (7344), 499-503 (2011).
  27. Carlson, J. C., Badran, A. H., Guggiana-Nilo, D. A., Liu, D. R. Negative selection and stringency modulation in phage-assisted continuous evolution. Nature Chemical Biology. 10 (3), 216-222 (2014).
  28. Milias-Argeitis, A., Rullan, M., Aoki, S. K., Buchmann, P., Khammash, M. Automated optogenetic feedback control for precise and robust regulation of gene expression and cell growth. Nature Communications. 7 (May), 12546(2016).
  29. Wenger, J. W., Piotrowski, J., Nagarajan, S., Chiotti, K., Sherlock, G., Rosenzweig, F. Hunger Artists: Yeast Adapted to Carbon Limitation Show Trade-Offs under Carbon Sufficiency. PLoS Genetics. 7 (8), e1002202(2011).
  30. Yona, A. H., et al. Chromosomal duplication is a transient evolutionary solution to stress. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (51), 21010-21015 (2012).
  31. Auchtung, J. M., Robinson, C. D., Britton, R. A. Cultivation of stable, reproducible microbial communities from different fecal donors using minibioreactor arrays (MBRAs). Microbiome. 3, 42(2015).
  32. Goldford, J. E., et al. Emergent simplicity in microbial community assembly. Science. 361 (6401), 469-474 (2018).
  33. Lagier, J. -C., Dubourg, G., Million, M., Cadoret, F., Fournier, P. Culturing the human microbiota and culturomics. Nature Reviews Microbiology. 16 (September), 540-550 (2018).
  34. Fukami, T. Historical Contingency in Community Assembly: Integrating Niches, Species Pools, and Priority Effects. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. 46 (1), 1-23 (2015).
  35. Friedman, J., Gore, J. Ecological systems biology: The dynamics of interacting populations. Current Opinion in Systems Biology. 1, 114-121 (2017).
  36. Crook, N., Abatemarco, J., Sun, J., Wagner, J. M., Schmitz, A., Alper, H. S. In vivo continuous evolution of genes and pathways in yeast. Nature Communications. 7, 13051(2016).
  37. Ravikumar, A., et al. Scalable, Continuous Evolution of Genes at Mutation Rates above Genomic Error Thresholds. Cell. 175, (2018).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

eVOLVERSaccharomyces cerevisiae

Похожие статьи