Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Стерильный перикардит у минипигов Aachener как модель миопатии предсердий и фибрилляции предсердий

2.8K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/63094

⸱

24 сентября 2021 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Physiopharmacology, University of Antwerp, 2Department of Cardiac Surgery, University Hospital Antwerp, 3Department of Animal Welfare, University of Antwerp, 4Comparative Perinatal Development, University of Antwerp, 5Department of Cardiology, University Hospital Antwerp, 6Department of Cardiology, ZNA Middelheim Hospital, 7Research Group Cardiovascular Diseases, GENCOR, University of Antwerp

В этой статье

Краткое содержание

Мы описываем модель стерильного перикардита в минипигах для изучения предсердной миопатии и фибрилляции предсердий (ФП). Мы представляем хирургические и анестезиологические методы, стратегии сосудистого доступа и протокол для изучения индуцируемости ФП.

Аннотация

Фибрилляция предсердий (ФП) является наиболее распространенной аритмией, вызванной структурным ремоделированием предсердий, также называемой предсердной миопатией. Современные методы лечения нацелены только на электрические аномалии, а не на лежащую в основе предсердную миопатию. Для разработки новых методов лечения необходима воспроизводимая модель миопатии предсердий крупного животного происхождения. В данной работе представлена модель стерильной миопатии предсердий, вызванной перикардитом, у минипигов Aachener. Стерильный перикардит был вызван распылением стерильного талька и оставлением слоя стерильной марли над эпикардиальной поверхностью предсердия. Это привело к воспалению и фиброзу, двум важнейшим компонентам патофизиологии предсердной миопатии, что делает предсердия восприимчивыми к индукции ФП. Два кардиостимулятора были расположены эпикардиально на каждом предсердии и соединены с двумя кардиостимуляторами разных производителей. Эта стратегия позволяла проводить повторную неинвазивную запрограммированную стимуляцию предсердий для определения индуцируемости ФП в определенные моменты времени после операции. Для проверки индуцируемости ФП использовались различные протоколы. Преимуществами этой модели являются ее клиническая значимость, с индуцируемостью ФП и быстрой индукцией воспаления и фиброза, как присутствующих при предсердной миопатии, так и ее воспроизводимостью. Модель будет полезна при разработке новых методов лечения, нацеленных на предсердную миопатию и ФП.

Введение

Фибрилляция предсердий (ФП) является наиболее распространенной сердечной аритмией, приводящей к значительной заболеваемости, смертности и расходам на здравоохранение1. Во многих случаях ФП является просто электрическим симптомом основной предсердной миопатии, которая определяется структурным, электрическим, вегетативным и сократительным ремоделированием предсердий. Эта предсердная миопатия может привести к ФП и инсульту 2,3. Большинство методов лечения нацелены только на электрическое ремоделирование, но не нацелены на основные структурные изменения в предсердиях (воспаление и фиброз)4,5,6,7. Это, вероятно, одна из причин, почему современные методы лечения эффективны лишь незначительно, особенно при более продвинутой предсердной миопатии8.

Воспроизводимая животная модель имеет решающее значение для борьбы с воспалением и фиброзом, присутствующими при миопатии предсердий. Модели тахипаирования предсердий были разработаны у нескольких крупных видов животных 9,10,11,12. В этих моделях предсердная ткань непрерывно развивается в течение длительных периодов времени, чтобы вызвать электрические и, в конечном итоге, структурные изменения. Основными недостатками моделей тахипации являются длительная продолжительность появления структурных признаков предсердной миопатии и их актуальность только для клинических синдромов, при которых электрические аномалии развиваются до предсердной миопатии. Теоретическим риском является отказ от темпа из-за фиброза во время длительного наблюдения9.

В моделях стерильного перикардита стерильный тальк распыляют на эпикардиальную поверхность предсердий, чтобы вызвать острую воспалительную и фиброзную реакцию, в результате чего миопатия предсердий13,14. Свиньи имеют анатомию и физиологию сердца, аналогичные человеческой, и поэтому модели свиней имеют высокую трансляционную значимость. Преимущества использования минипигов заключаются в том, что они легче обрабатывать из-за их меньшего размера, чем обычные штаммы свиней, и могут поддерживаться в течение длительного периода без какого-либо значительного увеличения массы тела10. Все эти причины делают стерильный перикардит у минипигов отличной моделью для исследования предсердной миопатии и фибрилляции. Этот протокол и видео направлены на то, чтобы облегчить настройку этой модели в различных исследовательских учреждениях и стандартизировать протоколы для изучения индуцируемости ФП.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Этот протокол был одобрен Этическим комитетом по испытаниям на животных Университета Антверпена (номер дела 2019-29) и соответствует руководящим принципам ухода за животными Университета Антверпена. Семнадцать 6-месячных минипигов Aachener (самцов, кастрированных) весом ~ 20 кг были отобраны для этого исследования.

1. Лекарства и анестезия

  1. Премедикация
    1. Убедитесь, что свиньи голодают в течение 12 ч, но с неограниченным доступом к воде.
    2. Для седации вводят в одну внутримышечную инъекцию: атропин 0,05 мг/кг, кетамин 10 мг/кг, мидазолам 0,5 мг/кг.
    3. Определить точный вес свиньи после того, как она потеряла сознание (примерно через 10 мин после дозы). Транспортируйте свинью в операционную.
    4. Поместите свинью на грелку.
    5. Примените мониторинг ЭКГ, пульсоксиметр и выполните начальную термометрию.
    6. Вставьте игольчатый катетер (22 г) в крайнюю вену уха или наружную подкожную вену.
  2. Анестезия
    1. Для индукции анестезии вводят болюс пропофола (1-4 мг/кг в/в) перед началом интубации. Если отмечена поверхностная анестезия, вводят дополнительный болюс мидазолама 0,2 мг/кг в/в, и приступают к интубации через ~5 мин.
    2. Интубация
      1. Поместите свинью в положение лежа.
      2. Попросите помощника держать рот животного открытым, используя две стропы марли и / или разбрасыватель рта. Распылите 1 мл (10 мг) лидокаина в гортань безыгольчатым шприцем 2 мл, подождите 30-60 с, чтобы десенсибилизировать гортань, а затем продолжайте.
      3. Поместите эндотрахеальную трубку (ETT) с внутренним диаметром 6,5 мм с помощью ларингоскопа. Используйте ларингоскоп для визуализации, смещения надгортанника с мягкого неба и поместите стилет в ETT для лучшей манипуляции.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Рот свиньи не может быть широко открыт, а расстояние от кончика носа до гортани велико. Поэтому визуализация голосовой щели рима ограничена. Следовательно, ETT и stylet помогают визуализации.
    3. При подключении аппарата ИВЛ при необходимости дают дополнительные препараты: мидазолам 0,5 мг/кг в/в и/или альфентанил 30 мкг/кг в/в.
    4. Используйте следующие настройки вентилятора: регулировка громкости вентиляции (VCV) с заданным приливным объемом 10 мл/кг, ведущей к пиковому давлению вдоха (PIP) 11-15 смH20, положительному давлению peep на конце выдоха 2-5 смH20; частота дыхания: 12-16 Brpm для поддержания конечного приливного CO2 (ETCO2) между 35-45 мм рт.ст.; FiO2: 50% (снижается при насыщении 100%); севофлуран 2,5%.
    5. Для обезболивания используют альфентанил 0,5-1 мкг· (кг·мин) -1 КРИ.
    6. Вводят болюс 10 мл/кг плазмалита 3-5 мл· (кг·ч) -1 в течение 10-20 мин для коррекции гипотонии вследствие гиповолемии.
    7. Вводят 1 г цефазолина IV. Каждые 2 ч операции вводят дополнительно 500 мг цефазолина IV.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Обзор неотложных лекарств, которые необходимо иметь под рукой в операционной, см. в таблице 1. Катетеризация мочевого пузыря затруднена у самцов свиней и, в целом, не нужна для этой процедуры.
    8. Побрейте грудную клетку и область шеи животного.
    9. Наносите ветеринарную мазь на глаза, чтобы предотвратить сухость и раздражение глаз во время анестезии.
    10. Непрерывный мониторинг жизненно важных параметров. Проверяйте глубину анестезии хотя бы каждые 10 мин, оценивая, расслаблен ли тонус челюсти, отсутствует ли пальпебральный рефлекс, вращаются глаза, отсутствуют поведенческие признаки возбуждения. Проверьте цвет слизистой оболочки и время пополнения капилляров, чтобы оценить перфузию тканей. Запишите все данные вместе со всеми введенными лекарствами в индивидуальную анестезирующую схему.
    11. Размещение артериальной линии
      1. Подготовьте систему проведения давления. Добавьте 5000 МЕ гепарина в внутривенный мешок объемом 500 мл 0,9% NaCl.
      2. Верните животное в положение лежа на спине. Вытяните ногу и найдите бедренную артерию с помощью ультразвука с сосудистым зондом в условиях сонной артерии. Продезинфицируйте паховую зону хлоргексидином. Используйте umonium для стерилизации ультразвукового зонда (или используйте стерильную крышку датчика) и используйте стерильные перчатки для обеспечения антисептической техники.
      3. Пункция бедренной артерии с помощью ультразвукового наведения. Вставьте оболочку 3 Fr по методике Зельдингера.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Из-за небольшого диаметра бедренной артерии может быть полезно позволить помощнику вставить направляющую проволоку через иглу. Само действие лифтинга ультразвукового зонда может вывихнуть кончик иглы.
      4. Зафиксируйте оболочку швом. Подключите оболочку к преобразователю и смывайте. Контролируйте артериальное давление в режиме реального времени.

2. Хирургия

  1. Подготовка
    1. Убедитесь, что животное находится на спине в стабильном положении. Для дополнительной устойчивости поместите предварительно расплавленные внутривенные мешки в параспинальное положение, чтобы поддержать животное.
    2. Поместите заземляющую пластину электрокоагуляции под животное. Используйте небольшое количество ультразвукового геля для обеспечения правильного контакта с кожей.
    3. Подготовка кожи: брить животное в следующих областях: шея, верхние конечности, передняя грудная клетка, верхняя часть живота, паховые и ЭКГ-электродные участки. Выполните три чередующихся скраба со спиртом 70% и йодом 2% для правильной дезинфекции кожи.
    4. Поместите стерильные шторы. Заверните когти животного в стерильные простыни или перчатки. Используйте стерильную марлю, чтобы втянуть их.
    5. Чтобы обеспечить стерильные условия, задрапируйте хирургическую область стерильными хирургическими покрытиями, используйте стерильные инструменты и работайте в стерильных условиях до закрытия кожи.
      ПРИМЕЧАНИЕ: На протяжении всей процедуры хирурги должны носить шапочку для волос, маску для рта, хирургический халат и стерильные перчатки.
  2. Хирургическое размещение постоянного центрального венозного катетера (CVC)
    1. Сделайте 5 см разрез в бороздке на медиальной границе грудино-ключично-сосцевидной мышцы. Тупо рассекают до тех пор, пока не будет достигнута внутренняя яремная вена.
    2. Удалите фиброзную ткань вокруг вены и поместите квадратный шов (= от 3 до 4 швов, образующих круг) с Проленом 6-0 вокруг желаемого места катетеризации, чтобы получить контроль над сосудом.
    3. Каннулировать внутреннюю яремную вену с помощью 3 французских трехпросветных CVC с использованием техники Зельдингера. Затяните шов Prolene 6-0 вокруг катетера.
    4. Зафиксируйте ручку катетера на грудино-ключично-сосцевидной мышце.
    5. Туннелируйте три катетерные люмины отдельно: используйте большую пару тупых рассекающих ножниц для создания туннеля и атравматический зажим, чтобы протянуть люмину катетера через туннель.  Плотно прикрепите концы катетера к коже и поместите на безыгольчатый инъекционный порт. Места выхода люмины катетера расположены за ухом и как можно дальше от места разреза для обеспечения максимальной длины траектории катетера под кожей.
    6. Закройте место разреза в два слоя.
  3. Стернотомия
    1. Сделайте срединный разрез от манубрия грудины на 3 см ниже мечевидного отростка до тех пор, пока грудина не станет очевидной.
    2. Тупо рассекают каудально от мечевидного отростка. Положите палец на висцеральную сторону грудины и удалите соединительную ткань как можно дальше вслед за висцеральной стернальной поверхностью.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Соединительная ткань удаляется для предотвращения повреждения миокарда при выполнении стернотомии.
    3. Используйте кормовую пилу для расщепления грудины. Контролируйте все участки кровотечения. Используйте распределитель грудины для расширения доступа к грудной полости. Избегайте повреждения плевры.
    4. Осторожно откройте перикард и используйте суспензионные швы, чтобы он не попадал в хирургическое поле.
  4. Размещение кардиостимулятора (см. рисунок 1)
    1. Поместите кардиостимулятор на левое предсердие.
      1. Проверьте механизм удлинения и втягивания винта фиксации провода. Затем положите наконечник на (изогнутые) щипцы и при необходимости согните стиль на 60°.
      2. Наложите компресс на левый желудочек и осторожно отведите его в сторону, чтобы иметь вид на левое предсердие.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Давление на желудочек быстро вызовет гипотонию. Убедитесь, что анестезиолог ожидает этого с низкими дозами норадреналина через CVC. Отпустите желудочек, когда среднее кровяное давление опустится ниже 40 мм рт.ст. в течение >20 с. Приступайте только тогда, когда артериальное давление животного нормализовалось.
      3. После визуализации левого предсердия плотно положите свинцовый кончик на левую свободную стенку предсердия, как можно ближе к легочным венам и как можно дальше от желудочка. Вкрутите его, расширив спираль в ткань предсердия, предпочтительно с небольшим наклоном. Сделайте это как можно быстрее и немедленно снимите давление на левый желудочек.
      4. Измерьте порог чувствительности и темпа и импеданс провода с помощью программируемого электрического стимулятора или программатора кардиостимулятора. Убедитесь, что нет желудочкового перезахвата (широкий QRS на ЭКГ) при ходьбе при высоких напряжениях (10 В). Если это не удается, уберите спираль свинца и начните заново с этапа 2.4.1.1.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Порог нормального темпа должен составлять <1 В при ширине импульса 0,5 мс (обычно ~0,5 В при 0,5 мс).
    2. Поместите поводок кардиостимулятора на правое предсердие, полностью аналогично размещению левого предсердного поводка.
    3. Убедитесь, что оба провода покидают грудную клетку на средней линии; левый предсердный свинец должен быть туннелирован через брюшной подкожный жир от мечевидного отростка на левый фланг, правый предсердный свинец на правый фланг.
    4. Сделайте карман кардиостимулятора в подкожно-жировой клетчатке на левом и правом фланге свиньи. Подключите кардиостимуляторы к проводам и поместите их в карманы. Подключите кардиостимулятор, способный выполнять (50 Гц) импульсный темп с левым предсердным проводом (чтобы обеспечить кардиостимуляцию) и кардиостимулятор от другого производителя (чтобы избежать перекрестных помех при одновременном считывании обоих кардиостимуляторов) с правым предсердным проводом (чтобы обеспечить зондирование). Закройте в 2 слоя классическими одиночными швами, внутренний слой с Vicryl 1-0 и внешний слой с Mersilene 0.
  5. Индукция стерильного перикардита
    1. Снова обнажите предсердия, осторожно оттянув желудочки в сторону. Закройте желудочки марлей (а затем уберите марлю).
    2. Распылите стерильный тальк на эпикардиальную поверхность обоих предсердий с помощью дозатора, который входит в упаковку. Поскольку за этой манипуляцией последуют брадикардия и гипотония, дайте сердцу достаточно времени, чтобы самопроизвольно восстановиться примерно через одну минуту; при необходимости начинают или увеличивают (скорость инфузии) капельницу норадреналина.
    3. Оставьте один слой стерильной марли (5 см х 5 см) на эпикардиальной поверхности обоих предсердий: один кусок слева и один правый.
    4. Проверьте положение кардиостимулятора в последний раз перед началом закрытия.
  6. Закрытие сундука
    1. Оставьте дренаж в средостении и туннелируйте его к поверхности кожи. Подключите слив к стерильной вакуумной банке; открыть соединение, когда первый слой кожи закрыт (во избежание утечки воздуха). Удалите дренаж при возвращении животного в конюшню.
    2. Закройте перикард проленом 6-0.
    3. Закройте грудину с помощью классической техники серклажа проволокой из нержавеющей стали.
    4. Закройте подкутис в два слоя рассасывающейся нитью.
    5. Выполняют стернальную блокаду путем инфильтрации 5 мл 0,5% бупивакаина в кожу; обеспечить контакт кости с грудиной для проникновения в надкостницу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы, возможно, было бы даже лучше использовать упреждающую анальгезию, выполняя стернальный блок ДО разреза грудины.
    6. Закройте кожу непрерывным внутрикожным швом с помощью рассасывающейся нити.

3. Послеоперационный уход

  1. Постепенно выключайте все седативные средства, закрывая кожу животного.
  2. Держите животное в операционной комнате с тщательным контролем температуры тела, вентиляции и проходимости дыхательных путей, оксигенации и гемодинамических параметров.
  3. Из-за существенного снижения температуры тела, которое часто происходит во время процедуры, держите животное в тепле, используя одеяла, грелку и горячие пакеты. Обеспечивают кислородом во время восстановления, особенно когда отмечается дрожь.
  4. Нанесите фентаниловый пластырь 50 мкг/ч для послеоперационного обезболивания. Поскольку существует задержка в 6-8 ч до того, как фентаниловый пластырь станет эффективным, вводят 0,05-0,1 мг / кг морфина подкожно, чтобы преодолеть этот период.
  5. Когда животное стабильно, проявляется повышение температуры тела; может поднимать голову; глотает; проявляет нормальные глазные рефлексы; и дышит спонтанно, свободно и глубоко без ЭТТ на месте, без признаков обструкции верхних дыхательных путей; его можно транспортировать обратно в ручку. Обеспечить средства нагрева во время фазы восстановления (например, инфракрасная лампа, нагревательный коврик, одеяла).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не помещайте животное обратно в загон слишком рано , так как возможна остановка дыхания, даже через несколько часов после прекращения приема наркотиков.
  6. Проводите осмотр животного: каждые 15 мин в течение первого часа после операции, затем ежечасно в течение первых 4–6 ч или чаще, если животному не комфортно. Когда животное проявляет признаки боли, вводите дополнительный морфин подкожно по 0,025–0,05 мг/кг каждые 2 ч до тех пор, пока он не станет комфортным. Вводят по 1 г цефазолина через 8 и 16 ч после операции.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оценка боли состоит из субъективных элементов, таких как отношение, поведение (стояние, еда, питье) и гримаса. Объективными признаками боли являются повышенная частота сердечных сокращений, повышенная частота дыхания и поверхностное дыхание. Животное вернется к своему нормальному состоянию и поведению в течение 24 ч. Удалите фентаниловый пластырь на 3-й день после операции.

4. Тахипапсирование предсердий для индукции ФП

  1. Вводят кетамин 10 мг/кг и мидазолам 0,5 мг/кг внутримышечно (без атропина) и ждут, пока не будет достигнут достаточный уровень седации.
  2. Взвесьте свинью еще раз для последующего наблюдения. Поместите животное в удерживающую стропу и принесите его в операционную.
  3. Подключите ЭКГ и мониторинг насыщения кислородом и поместите головки программатора над соответствующими кардиостимуляторами. Допрашивайте кардиостимуляторы.
  4. Проверьте настройки кардиостимулятора на наличие спонтанной ФП. Ищите предупреждение о желудочковом свинце при использовании двухкамерного кардиостимулятора.
  5. Определите пороговые значения импеданса, а также датчики и темпа. При выполнении электрофизиологических исследований (ЭП) всегда ставьте в темпе удвоенное пороговое напряжение и следите за увеличением порога напряжения во время эксперимента.
  6. Определите предсердный эффективный рефрактерный период (AERP), приближенный к кратчайшей длине цикла, при которой сохраняется захват 1:1 во время фазы разрыва.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот метод отличается от клинического определения AERP, но более актуален для этого протокола.
  7. Определите время проводимости между левым и правым предсердными проводами, измерив время между инициацией скачка темпа и деполяризацией предсердий на правом предсердном отведении.
  8. Для первого протокола примените скорость всплеска в течение 20 с с длиной цикла AERP + 30 мс. После прекращения темпа проверьте наличие AF и измерьте, как долго длится эпизод. Делайте паузу не менее чем на 5 с между каждым сеансом темпа и ждите, пока частота сердечных сокращений синусового ритма не восстановится до исходного уровня. Повторите это ≥10 раз; обратите внимание на отображение индуцируемости ФП в процентах — долю «успешных» попыток к общему количеству попыток индуцировать ФП.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Актуальными считаются только эпизоды > 5 с.
  9. Для второго протокола примените скорость всплеска в течение 20 с, начиная с длины цикла AERP + 20 мс. Во время следующего всплеска уменьшите длину цикла до минимальной длины цикла с захватом 1:1. Повторите это не менее 10 раз. Обратите внимание на продолжительность автофокусировки и индуцируемость автофокусировки.
  10. Для третьего протокола примените скорость всплеска в течение 5 с при 50 Гц. Повторите это не менее 10 раз. Обратите внимание на продолжительность автофокусировки и индуцируемость автофокусировки.
  11. Дайте животному проснуться или продолжите другие процедуры (например, эхокардиографию, лечение, забор крови)

5. Эвтаназия

  1. После эксперимента, который длился один месяц, животных усыпляют при передозировке в/в пентобарбитала (50 мг/кг, в/в). Гуманными конечными точками эвтаназии были сохраняющиеся признаки сильной боли или дискомфорта, несмотря на адекватное лечение. Это оценивается клинически на ежедневной основе: тревожные признаки включают гипертонию, тахикардию, повышенную частоту дыхания, поведенческие изменения (беспокойство, иммобилизация, вокализация) и сжатие челюсти.

6. Фиктивная хирургия

  1. Выполняйте тот же протокол, не распыляя тальк над эпикардом предсердия и не оставляя слоя стерильной марли.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Заболеваемость и смертность:
Когда мы начали разрабатывать эту модель стерильного перикардита у минипигов Aachener, мы заметили периоперационную смертность 4 из 17 свиней (23,5%): 3 из 4 смертей произошли в первых 6 операциях из-за «эффекта кривой обучения». Этиология была следующей: 2 свиньи погибли из-за послеоперационной остановки дыхания; эта проблема была решена путем снижения дозы альфентанила. Одна свинья умерла из-за фибрилляции желудочков во время первого сеанса кардиостимуляции и одна во вре...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Надежная модель крупных животных является основным активом для изучения предсердной миопатии и ФП и разработки новых методов лечения ФП. Имплантация кардиостимуляторных отведений на предсердный эпикард позволила продольное наблюдение и повторное электрофизиологическое тестирование, что затруднено у мелких животных. Минипиги просты в обращении, а их сердца структурно и физиологически похожи на человеческое сердце10.

Модель стерильного перикардита относительно проста по с...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Ни у одного из авторов нет конфликта интересов для раскрытия.

Благодарности

Эта работа была поддержана исследовательским грантом Industrieel OnderzoeksFonds/Strategisch Basisonderzoek (IOF/SBO) (PID34923) и грантом Geconcerteerde Onderzoeksactie (GOA) (PID36444) Антверпенского университета; стипендией старшего клинического исследователя (для VFS) и исследовательскими грантами Фонда научных исследований Фландрии (номера заявок 1842219N, G021019N, G0D0520N и G021420N); исследовательским грантом ERA.Net RUS Plus (2018, Проектный консорциум 278); грантом Vlaamse Interuniversitaire Raad/Interuniversitair Bijzonder OnderzoeksFonds (VLIR/iBOF) (20-VLIR-iBOF-027). Мы благодарим фирмы Abbott и Boston Scientific за спонсирование значительной части лидеров кардиостимуляторов и фирмы Medtronic и Biotronik за кредит программиста кардиостимулятора. Мы благодарим зоотехникумов Антверпенского университета за отличный уход за животными.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Aachener minipig, 6-месячный, кобель, кастрированный, вес 15-25 кгCarfil
Анестезия и подготовка
ЭКГ Эндотрахеальная
трубка 6,5 мм IDCovidien115-65OR
Внешний кардиовертер-дефибрилляторInnomedCardio-aid 200B
ГрелкаOK.OUB 60321
Катетер внутривенно 22 GA, 1 дюймBD381323
Лезвие ларингоскопа размер 4МиллерSUS426601
мониторGE Medical systems2600040-003
РеспираторDatex-Ohmeda1009-9000-000
БритваAesculapGT 104 / REF 985203
Шприц-драйвер насосFresenius Kabi082470
strong артериальная и центральная венозная катетеризация
3-просветный набор для центральной венозной катетеризации, 7 французский, 16 см, 0,032 дюймовый проводникArrow medicalEU-22703-EN
Arteral катетер 3 французский, 8 смVygon1,15,090
Caresite Luer access deviceB. Braun415122-01
Жидкости: внутривенные мешки с плазмалитом, глюкозой 5%, NaCl 0,9% (500 мл или 1000 мл)
гепаринизированным физиологическим раствором
Иглы: 18 Ga / 40 мм и 22 Ga / 40 мм
Набор для контроля давления, 195 смEdwards Медико-биологические наукиT005021M
Напорная трубка 180 смEdwards Lifesciences50P172
шовная нить с иглой
Шприцы Luerlok: 2 мл, 5 мл, 10 мл, 20 мл, 50 мл
Ультразвуковое гелевоепокрытиеZealand 446-1
Ультразвуковое исследование с сосудистым зондомPhilipshealthcare EPIQ 7C / REF BZE1723
Хирургический набор
Хирургические ножницы с тупым наконечникомMartin11-934-25
Изогнутые на 60 градусов щипцы DebakeyAesculapFB403
Анатомические щипцыAS13-102-16
Щипцы DebakeyGeister10-0634
Модуль электрокоагуляцииAlsaAlsatom SU 140/D MPC
Держатели для нержавеющей проволокиCOBE013-123
MosquitoLeibinger32-01008
Игольница, тонкаяDelacroix-Chevalier50302-21
Игольница, нормальнаяAesculapBM 77
Ребра разбрасывателяMartin24-178-01
СкальпельSwann-Morton0511No24
Ножницы для нержавеющей стали проволокиJakobi411830
РаспоркиAS16-058-00
Грудинная пилаEure-Power5000020
Грудинная пилаMicroAireZR-032M
Хирургические расходные материалы
Дезинфицирующее средство: йод, хлоргексидин
Электрокоагуляционный карандаш с кнопкой, кабель 5 мDongguan QueenMed EquipmentESPB4001LQ
Желудочный зондVygon390.12
Mersilene-0, 75 смEthiconF2505H
Монокрил 3-0, 70 смEthiconY423H
Маски для рта, сетки
Oriflex-4 вакуумная колба для хирургического дренированияOriplast KrayerVK00352
Prolene 6-0, 75 смEthicon8711H
Мононить из нержавеющей стали нерассасывающийся шовный материалEthiconW995
Стерильный простыни3M9010
Марля стерильная 20 x 10 смStella35921
Перчатки
стерильные Халат хирургический стерильный Steritalc
PF3Novatech16863
Vicryl-0, 75 смEthiconV324H
Кардиостимуляция
Биполярный электрокардиостимулятор Fineline II Sterox EZ 58 смBoston Scientific4474
Биполярный электродом Усик STS 58 смAbbott2088TC
Ellegaard Gö ttingen Minipig Frame 3LomirDF H1PU
Ellegaard Gö ttingen Minipig Sling CoverLomirSS CEG1
Микростимулятор сердцаBoston ScientificEPS 320
Кардиостимулятор для стимуляцииMedtronicAzure XT DR MRI SureScan
Кардиостимулятор для зондированияBiotronikEluna 8 DR-T
Кардиостимулятор программатор для стимуляцииMedtronicCareLink Encore 29901A
Программатор кардиостимулятора для зондированияBiotronikICS 3000 DS CD-W US
Medication
Adrenaline 1 мг/мл, 1 млSterop
Atropine 0,5 мг/мл, 1 млSterop
Catapressan 150 µ г/мл, 1 мл клонидинаBoehringer IngelheimBE021402
цефазолина 2 г порошкаMylanBE319794
Cordarone 50 мг/мл, 3 мл амиодаронаSanofi
Durogesic 50 &; г/ч фентаниловые пластыриJanssen-Cilag
Глюкоза 5%, 500 млBaxterAE0063
Кеталар 50 мг/мл, 10 млPfizer804101
Ланоксин 0,25 мг/мл, 2 мл дигоксинАспен Маркаин
0,5% + адреналин 1:200 000Осина
Мидазолам 5 мг/мл, 3 млB. Braun3521740
Morfine 10 мг/мл, 1 млSterop
NaCl 0,9%, 500 млBaxterAKE1323
Nitro Pohl 1 мг/мл, 5 мл нитроглицеринаPohl Boskamp
Noradrenaline 1 мг/мл, 4 млAguettant
Plasmalyte 1000 млBaxterAKE0324
Propofol 10 мг/мл, 20 млB. Braun3521810
Protamine 1400 МЕ/мл, 5 млLeo pharma
Rapifen 0,5 мг/мл, 2 млJanssen-Cilag95103
Seloken 1 мг/мл, 5 мл метопрололаAstraZeneca
Sevorane Quick Fill 100% севофлуран, 250 млAbbvie1283-415
Tracrium 10 мг/мл, 5 мл atracuriumAspen
для волос

Ссылки

  1. Hindricks, G., et al. 2020 ESC Guidelines for the diagnosis and management of atrial fibrillation developed in collaboration with the European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS): The Task Force for the diagnosis and management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC) Developed with the special contribution of the European Heart Rhythm Association (EHRA) of the ESC. European Heart Journal. 42 (5), 373(2021).
  2. Sajeev, J. K., Kalman, J. M., Dewey, H., Cooke, J. C., Teh, A. W. The atrium and embolic stroke: myopathy not atrial fibrillation as the requisite determinant. JACC. Clinical Electrophysiology. 6 (3), 251-261 (2020).
  3. Shen, M. J., Arora, R., Jalife, J. Atrial myopathy. JACC: Basic to Translational Science. 4 (5), 640-654 (2019).
  4. Jalife, J., Kaur, K. Atrial remodeling, fibrosis, and atrial fibrillation. Trends in Cardiovascular Medicine. 25 (6), 475-484 (2015).
  5. Fu, X. X., et al. Interleukin-17A contributes to the development of post-operative atrial fibrillation by regulating inflammation and fibrosis in rats with sterile pericarditis. International Journal of Molecular Medicine. 36 (1), 83-92 (2015).
  6. Liao, J., et al. TRPV4 blockade suppresses atrial fibrillation in sterile pericarditis rats. JCI Insight. 5 (23), 137528(2020).
  7. Zhang, Y., et al. Role of inflammation in the initiation and maintenance of atrial fibrillation and the protective effect of atorvastatin in a goat model of aseptic pericarditis. Molecular Medicine Reports. 11 (4), 2615-2623 (2015).
  8. Vizzardi, E., et al. Risk factors for atrial fibrillation recurrence: a literature review. Journal of Cardiovascular Medicine. 15 (3), Hagerstown, Md. 235-253 (2014).
  9. Dosdall, D. J., et al. Chronic atrial fibrillation causes left ventricular dysfunction in dogs but not goats: experience with dogs, goats, and pigs. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 305 (5), 725-731 (2013).
  10. Schuttler, D., et al. Animal models of atrial fibrillation. Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).
  11. Wijffels, M. C., Kirchhof, C. J., Dorland, R., Allessie, M. A. Atrial fibrillation begets atrial fibrillation. A study in awake chronically instrumented goats. Circulation. 92 (7), 1954-1968 (1995).
  12. Willems, R., Ector, H., Holemans, P., Van De Werf, F., Heidbuchel, H. Effect of different pacing protocols on the induction of atrial fibrillation in a transvenously paced sheep model. Pacing and Clinical Electrophysiology. 24 (6), 925-932 (2001).
  13. Pagé, P. L., Plumb, V. J., Okumura, K., Waldo, A. L. A new animal model of atrial flutter. Journal of the American College of Cardiology. 8 (4), 872-879 (1986).
  14. Schwartzman, D., et al. A plasma-based, amiodarone-impregnated material decreases susceptibility to atrial fibrillation in a post-cardiac surgery model. Innovations. 11 (1), Philadelphia, Pa. 59-63 (2016).
  15. BCFI vzw. Vetcompendium BCFIvet. , Available from: https://www.vetcompendium.be/nl (2021).
  16. Swine in the laboratory. Surgery, anesthesia, imaging, and experimental techniques, Third edition. Swindle, M. M., Smith, A. C. , CRC Press. (2016).
  17. Unit for Laboratory Animal Medicine. Guidelines on anesthesia and analgesia in swine. , Available from: https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-swine (2021).
  18. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (52), e2652(2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

Модель стерильного перикардитамодель на минипигахэпикардиальные электроды кардиостимулятораимпульсная стимуляцияфиброз предсердийэлектрофизиологические исследованияокрашивание по Массонувизуализация сердца
Стерильный перикардит у минипигов Aachener как модель миопатии предсердий и фибрилляции предсердий
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.