Методическая статья

Разработка биогибридного зонда атомно-силовой микроскопии на основе укуса комара

DOI:

10.3791/66675

⸱

26 апреля 2024 г.

 ,  ,  ,  , 
1Department of Mechanical Engineering, McGill University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Количественные и контролируемые исследования поведения насекомых при укусах имеют решающее значение для разработки эффективных стратегий борьбы с трансмиссивными болезнями. В этом контексте представлен способ изготовления биогибридного зонда для атомно-силовой микроскопии (АСМ).

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Комары, печально известные как самые смертоносные животные для человека из-за их способности передавать болезни, представляют собой постоянную проблему для общественного здравоохранения. Основная стратегия профилактики, используемая в настоящее время, включает химические репелленты, которые часто оказываются неэффективными, поскольку комары быстро развивают резистентность. Следовательно, изобретение новых методов профилактики имеет решающее значение. Такое развитие зависит от глубокого понимания поведения комаров, требующих экспериментальной установки, которая точно воспроизводит реальные сценарии укусов с контролируемыми параметрами тестирования и количественными измерениями. Чтобы восполнить этот пробел, был разработан зонд биогибридной атомно-силовой микроскопии (АСМ) с биологическим жалом, а именно губой комара в качестве наконечника. Этот биогибридный зонд, совместимый со стандартными системами АСМ, позволяет практически точно моделировать поведение комаров. Этот метод знаменует собой шаг вперед в количественном изучении механизмов укусов, потенциально ведущий к созданию эффективных барьеров против трансмиссивных болезней (ВБД) и открывающий новые возможности в борьбе с болезнями, передаваемыми комарами.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) сообщила, что трансмиссивные болезни (ВБД) составляют более 17% всех инфекционных заболеваний, которые вызывают более 7 000 000 смертей в год во всем мире. Например, будучи самым смертоносным животным в мире, комары распространяют многочисленные патогены, такие как лихорадка денге, малярия и вирус Зика, через кровососущих членистоногих, что приводит к 700 миллионам инфекций каждый год. Исследования в направлении разработки эффективных мер по предотвращению ВБД имеют решающее значение, включая имитацию поведения комаров при проникновении для изучения механизмов их укуса и изучение потенциальных барьеров, чтобы доказать их эффективность в предотвращении проникновения. Одна из ключевых задач заключается в разработке надлежащих подходов к проведению таких расследований. В литературе были предприняты усилия, в том числе разработка микромасштабных игл, напоминающих геометрию жала комара; однако многие материалы, используемые для изготовления этих микроигл (т.е. вязкоупругие материалы2, кремний (Si), стекло, керамика3 и т.д.), имеют другие механические свойства, чем биологический материал хоботка комара. Инженерные материалы могут быть хрупкими и склонными к разрушению и изгибу 3,4, в то время как хоботок комара может лучше выдерживать перелом или коробление4. Преимущество наличия биогибридного зонда, использующего губу комара вместо инженерных материалов, заключается в том, что он может быть более точным представлением механизма прокалывания комаров. Кроме того, специализированные инструменты должны быть интегрированы с микроиглами для выполнения количественных исследований, таких как точное измерение силы5, что нелегко достижимо при индивидуальной настройке с использованием специальных микроигл.

Подход, основанный на атомно-силовой микроскопии (АСМ), является многообещающим в том смысле, что он работает с использованием кантилевера с ультратонким наконечником, который аккуратно расположен близко к поверхности образца. Наконечник может либо сканировать поперек, либо прижиматься к поверхности, испытывая различные силы притяжения или отталкивания из-за его взаимодействия с образцом6. Эти взаимодействия приводят к отклонению консоли, которое отслеживается отражением лазерного луча от верхней части консоли на фотодетектор6. Исключительная чувствительность системы к движению позволяет АСМ проводить широкий спектр измерений, включая, помимо прочего, морфологическое картирование с точностью пикометра, измерения сил в диапазоне от пиконьютонов до микроньютонов и комплексные мультифизические исследования7. Например, вдавливание АСМ может быть выполнено для точной оценки реакции на приложенную силу образца, а также для измерения твердости, эластичности и других механических свойств образца путем сопряжения с соответствующими аналитическими моделями8. Зонд АСМ чаще всего изготавливается из кремния (Si) или нитрида кремния (Si3N4)8 длиной 20-300 мкм9 и радиусом наконечника порядка нескольких до десятков нанометров10. Радиус наконечника в нанометровом масштабе может быть идеальным для таких приложений, как визуализация с высоким разрешением; однако он не обладает характеристиками биологических жал для исследований, которые пытаются имитировать поведение проникновения с точки зрения жесткости, радиуса, формы и соотношения сторон. Например, микроигольчатая структура комара представляет собой пучок, который имеет соотношение сторон ~6011 (длина ~ 1,5 мм до 2 мм; диаметр ~ 30 мкм)12. Хотя можно предположить, что обычный зонд АСМ напоминает биологическое жало, такое как лабрум, его отличительные свойства материала и размеры не будут отражать реальную ситуацию во время укуса.

Чтобы обеспечить количественные исследования проникающего поведения, имитирующего биологические укусы насекомых или других животных с жалами, здесь разработан процесс изготовления биогибридных консолей AFM с биологическим жалом в качестве наконечника. В качестве примера была успешно продемонстрирована консоль AFM с прикрепленным кончиком губы комара. Используя существующую информацию из литературы о типичных силах введения, которые комар использует для прокалывания кожи жертвы12,13, этот биогибридный кантилевер АСМ потенциально может обеспечить почти реальную имитацию укусов комаров при обычном АСМ. Протокол использования микробиологических стингеров для изготовления биогибридных консолей АСМ также может быть применен для разработки других биогибридных кантилеверов АСМ на основе острых жал для количественных исследований различных механизмов укуса.

Термины
Схема хоботка и его компонентов, представляющих интерес, показана на рисунке 1, и их определения следующие: (1) Хоботок: часть тела комара изо рта, которая позволяет комару питаться, со структурой сердцевины и раковины, состоящей из пучка (сердцевины) и лабиума (раковины), (2) Губа: темный и тупой внешний покров хоботка2, (3) Пучок: группа тонких игл, содержащихся внутри половых губ, включая две верхние челюсти, две челюсти, гипофаринкс и губу2, (4) Гипофаринкс: отвечает за секрецию слюны в кровоток хозяина2, (5) Верхние челюсти: зубчатый член, помогающий в механизме питания2, (5) Нижние челюсти: подобно верхней челюсти, они помогают комару в механизме питания и имеют острый кончик2, (6) Губа: основной элемент для проникновения в кожу жертвы, который намного больше, чем верхние челюсти, мандибулы и глотка. Он также имеет сенсорные структуры, которые позволяют ему находить кровеносные сосуды и внутренние каналы под кожей2, (7) Манипулятор: узел с тремя степенями свободы и точностью в микронном масштабе для позиционирования, позволяющий двигаться в направлениях XYZ, (8) Зажим в сборе: изготовленный на заказ зажим из 2 частей, установленный на манипуляторе, используемом для зажима консольного АСМ без наконечника во время эксперимента.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Вид комаров, используемый для этого протокола, представляет собой неинфицированную взрослую самку Aedes aegypti (A. aegypti), полученную в замороженном виде и хранящуюся в морозильной камере при температуре -20 °C. Вид был предоставлен Ресурсным центром NIH/NIAID по исследованию филяриатозных реагентов для распространения через BEI Resources, NIAID, NIH: Uninfected Aedes aegypti, штамм Black Eye Liverpool (Frozen), NR-48920. Реагенты и оборудование, использованные для исследования, перечислены в Таблице материалов.

1. Рассечение половой губы от хоботка

  1. С помощью пинцета поместите мертвого комара на предметное стекло под микроскопом и убедитесь, что на конце хоботка есть конический наконечник (рисунок 2A).
  2. Удерживая комара на предметном стекле, аккуратно поместите лезвие скальпеля на половые губы рядом с головой комара (рисунок 2B).
  3. Сделайте разрез по всей верхней половине половой губы (разрез примерно 80 мкм) с небольшой глубиной проникновения через толщу половой губы. Обязательно слегка надавите на лезвие, чтобы разрезать только половые губы, но не пучок, который лежит под ним.
  4. Пинцетом крепко держите голову комара, а другим точным пинцетом слегка зажмите половые губы в любом положении между коническим кончиком и местом разреза (рисунок 2B).
    1. Потяните пинцет, удерживающий половые губы, в направлении конического кончика (рисунок 2C). Продолжайте тянуть пинцет до тех пор, пока половые губы не вырвутся и не будут полностью удалены из пучка.
  5. Поместите комара под микроскоп и проверьте, присутствует ли кончик губы. Это можно определить по наличию конического наконечника на пучке (рис. 2D).

2. Отделение кончика губы от других членов пучка

  1. Зажмите и закройте кончики набора прецизионных пинцетов и поместите кончик пинцета рядом с губой рядом с ее кончиком.
  2. С помощью наконечника пинцета приложите легкое усилие к губе в направлении, перпендикулярном длине пучка (рисунок 3A).
  3. Продолжайте проталкивать губу по предметному стеклу до тех пор, пока не будет достигнуто отделение губы от других элементов пучка.
  4. Осмотрите образец под микроскопом, чтобы убедиться, что было достигнуто правильное разделение между губой и другими элементами пучка (рис. 3, слева). Если разделение не удалось, вернитесь к шагу 2.1.

3. Обрезка кончика губы

  1. Пока губа все еще находится на предметном стекле, поместите лезвие скальпеля на губу на расстоянии примерно ~200 μм от кончика губы (рисунок 4A). Аккуратно приложите достаточное давление и разрежьте кончик губы до конца. Хотя кончик губы в идеале должен быть как можно короче, ~200 мкм — это лучшее, что может выдержать текущий подход.
  2. Измерьте длину разрезанной губы, чтобы убедиться, что она не превышает 300 μм (Рисунок 4B), с помощью любого цифрового измерительного программного обеспечения. В этом протоколе использовался ImageJ14.

4. Захват кончика губы

  1. С помощью точного пинцета найдите и изолируйте кончик губы на предметном стекле. Выбросьте все части, оставшиеся на предметном стекле, кроме кончика губы.
  2. С такой же точностью пинцетом медленно и слегка зажмите губу, чтобы срезанный конец был свободен и не загораживался пинцетом. Кроме того, убедитесь, что ориентация губы параллельна направлению длины пинцета, а отрезанный конец губы направлен в сторону от корпуса пинцета.
  3. После того, как образец будет плотно зажат, уберите усилие зажима, удерживающее кончики пинцета вместе. Кончик губы будет прилипать к одному из кончиков пинцета.
  4. Под микроскопом осмотрите кончики пинцета и убедитесь, что кончик губы присутствует на одном из кончиков пинцета (рисунок 5). Если кончик губы не находится на пинцете, вернитесь к шагу 4.2, а если кончик губы не находится ни на пинцете, ни на предметном стекле, вернитесь к шагу 1.

5. Нанесение эпоксидной смолы на консольную балку без опрокидывания.

  1. Поместите каплю (~0,05 мл) эпоксидной смолы на край нового предметного стекла, непосредственно отлив клей из оригинальной бутылки/контейнера. Поместите предметное стекло, содержащее эпоксидную смолу, под станцию зонда и сфокусируйтесь на нем.
  2. Установите консоль AFM без наконечника на зажимной узел, закрепив основание (т. е. больший конец), оставив консольный конец свободным и подвешенным в пространстве. Убедитесь, что нижняя часть консоли АСМ направлена вниз.
  3. Установите манипулятор на станцию зондов.
  4. Поднимите ось Z манипулятора в положение, при котором консоль без опрокидывания находится на несколько миллиметров выше предметного стекла, содержащего эпоксидную смолу.
  5. Вручную переместите манипулятор так, чтобы консоль без опрокидывания была видна в поле зрения камеры на измерительной станции.
  6. С помощью манипулятора перемещайте консоль АСМ по осям X и Y до тех пор, пока кончик консоли не окажется прямо над эпоксидной смолой на краю предметного стекла.
  7. Снова используя манипулятор, медленно опустите консоль без опрокидывания в направлении Z над краем предметного стекла.
  8. Когда консоль опускается и приближается к предметному стеклу, продолжайте опускать консоль очень медленно, пока она не коснется эпоксидной смолы. Не опускайте консоль дальше.
  9. Осторожно включите манипулятор, чтобы медленно переместить консоль в направлении X или Y, и извлеките консоль из ванны с эпоксидной смолой, непрерывно перемещая консоль в выбранном направлении до тех пор, пока консоль полностью не отделится от эпоксидной смолы на предметном стекле. Консоль без опрокидывания должна иметь миниатюрный пузырь эпоксидной смолы на конце, видимый под станцией зонда.
  10. Поднимите консоль в направлении Z с помощью манипулятора.

6. Приклеивание кончика губы к консольной балке без опрокидывания.

  1. Поверните манипулятор вокруг длинной оси консоли на 90 градусов и положите манипулятор на станцию зонда на бок. В этой конфигурации толщина по длине консоли АСМ находится в вертикальном направлении.
  2. Расположите прецизионный пинцет, содержащий наконечник губы, под камерой станции зонда так, чтобы на мониторе компьютера была видна вся длина кончика губы.
  3. Расположите узел манипулятора, удерживающий зажим и консоль без наконечника, под камерой станции зонда так, чтобы на мониторе компьютера была видна вся длина консоль без наконечника.
  4. Наведите зондовую станцию микроскопа на кончик губы и консоль без наконечника.
  5. Ориентируйте консоль перпендикулярно кончику губы, осторожно и вручную вращая манипулятор (рисунок 6A).
  6. Используя степени свободы манипулятора, медленно перемещайте консоль без наконечника в направлениях XY так, чтобы клей на кантилевере соприкасался со срезанным концом кончика губы (рис. 6B).
  7. Отверждайте эпоксидную смолу, затвердев на пересечении кантилевера и лабрума комара.
  8. После того, как эпоксидная смола затвердеет, осторожно задействуйте манипулятор в направлениях XY и отодвиньте консоль от пинцета, убедившись, что кончик губы теперь стоит на бесконцевой консольной балке (рис. 6C).

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Изображения сканирующей электронной микроскопии (СЭМ) изготовленного биогибридного зонда АСМ можно найти на рисунке 7. Конец лабрума был успешно приклеен к консольной балке без опрокидывания. Из-за естественной кривизны жал комаров и ручного управления представленным протоколом крайне сложно получить кантилевер с наконечником жала, идеально перпендикулярным консоли. Смещенный от центра угол между жалом и воображаемой центральной линией, перпендикулярной кантилеверу, обычно составляет ~10 градусов. Хотя это кажется распространенной проблемой при установке датчика на консоль15 АСМ, непреднамеренный наклон должен быть учтен при выполнении анализа силы/напряжения. Было бы интересно, чтобы будущие исследования были сосредоточены на улучшении протокола изготовления и проведении исследований с использованием биогибридного зонда. Это первая попытка создания биогибридного зонда АСМ с использованием жала насекомого.

figure-results-1
Рисунок 1: Схема хоботка комара. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-2
Рисунок 2: Удаление губы хоботка комара. (A) Комар с полным хоботком, показывающим наличие неповрежденного конического кончика. (B) Расположение разреза половой губы и размещение пинцета на половой губе во время процесса удаления половой губы. (В) Направление вытягивания пинцета во время удаления половых губ. (D) Последний рассеченный пучок с неповрежденным концом после удаления губы, при этом конический кончик губы все еще присутствует и не поврежден. Масштабные линейки: 200 μм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-3
Рисунок 3: Отделение губы от нежелательных элементов пучка. (A) Расположение пинцета и направление толкания пинцета как метод отделения членов пучка хоботка. (B) Хоботок после манипуляций, чтобы отделить губу от других членов пучка. Масштабные линейки: 200 μм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-4
Рисунок 4: Изоляция желаемого кончика губы для крепления к консоли АСМ. (А) Расположение разреза губы для удаления кончика губы. Масштабная линейка: 200 μм. (B) Кончик губы, отрезанный от тела губы, имеет длину примерно 200-300 μм. Масштабная линейка: 50 μм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-5
Рисунок 5: Крепление наконечника губы к пинцету перед процессом склеивания. Кончик губы прилип к одному из кончиков пинцета, при этом необрезанный конец губы был свободен и направлен в сторону от корпуса пинцета. Масштабная линейка: 200 μм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-6
Рисунок 6: Последовательность крепления кончика губы к консоли без наконечника. (A) Ориентация консоль без наконечника в перпендикулярном положении по отношению к губе. (B) Слияние консольного станка без наконечника с губой и отверждение эпоксидного клея, используемого для затвердевания соединения между двумя компонентами. (C) Окончательно отвержденный биогибридный зонд АСМ без поддержки губы пинцетом. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-7
Рисунок 7: СЭМ-изображения биогибридного зонда АСМ. (A) Глобальный вид кончика губы и консоли без наконечника. Масштабная линейка: 200 μм. (B) Увеличенный вид кончика губы. Масштабная линейка: 50 μм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Шаг 1 протокола предназначен для очистки биологического образца от нежелательной половой губы. Для этого делается разрез на половой губе, но не на пучке, которая находится непосредственно под половой губой (рис. 1). Поскольку пучок и губа не соединены вместе на их стыке (т.е. половые губы могут свободно скользить вдоль пучка и удерживаются на месте только за счет прикрепления к голове комара), выполненный разрез предназначен для отделения части половой губы от головы комара, тем самым облегчая снятие наружного покрова. Когда лабий извлекается из образца, лаборант должен испытывать небольшое сопротивление, вызванное нижней половиной губы, все еще прикрепленной к комару. Ожидается, что эта сила сопротивления будет высвобождаться относительно легко, поскольку разрез будет способствовать распространению трещины биологического материала, тем самым вызывая разрыв неразрезанного сегмента половой губы и заставляя всю половую губу соскальзывать с пучка во время тянущего действия. Если сделан недостаточный разрез, техник может испытывать чрезмерное сопротивление во время вытягивания, и ему рекомендуется попробовать сделать еще один разрез, прежде чем продолжить протокол.

Важно проявлять мягкость и терпение на шагах 1 и 4 при манипуляциях с губами путем защемления пинцетом. Хотя губа относительно упругая, она все же может быть повреждена, если пинцет сжимает ее слишком агрессивно. Лаборанту предлагается слегка зажать половые губы/губы, что означает, что он должен приложить минимальное усилие, необходимое для удержания половых губ/лабрум. Оценка наличия повреждений может быть выполнена в конце шага 1 и шага 4 при осмотре образца под микроскопом. Рекомендуется осмотреть хоботок на наличие любых аномалий по всей его длине (например, вмятин, разрывов, разделений на сегменты). Если есть подозрение, что образец поврежден на кончике губы, выбросьте его и перезапустите протокол.

Ключевые этапы процесса протокола, такие как шаг 3 и шаг 6, требуют особой осторожности. Для выполнения шага 3 кончик губы необходимо разрезать вручную скальпелем. Слишком короткая обрезка сделает остальную часть эксперимента экспоненциально сложнее, потому что она может быть слишком мала для манипуляций. Напротив, если длина наконечника превышает 300 мкм, он становится слишком длинным для установки на консоль АСМ из-за чрезмерного перпендикулярного смещения, которое вводится между кончиком губы и консолью АСМ. Это смещение обусловлено несовершенством процесса монтажа и/или кривизной, которая может присутствовать в образце, что становится проблематичным при больших длинах губ. Кроме того, консоли с очень длинными наконечниками будет очень сложно использовать и под АСМ. На этапе 3 важно отметить, что все пучковые стилеты (губы, верхние челюсти, нижние челюсти и гипофаринкс), скорее всего, будут вырезаны в ходе этой процедуры. Губа будет легко обнаружена и изолирована от оставшихся стилетов на шаге 4 благодаря ручному разделению, которое было выполнено на шаге 2. На шаге 6, несмотря на то, что почти невозможно гарантировать, что наконечник полностью нормален кантилеверу под оптическим микроскопом, все же необходимо минимизировать угол наклона, чтобы избежать нежелательных условий нагружения при использовании в будущем.

Также важно правильно подобрать эпоксидную смолу для крепления жала к консоли АСМ. Были испытаны различные медленно отверждаемые двухкомпонентные эпоксидные смолы, которые позже оказались неидеальными, потому что любая небольшая вибрация лабораторного пола во время процесса отверждения может привести к провалу эксперимента. Таким образом, в конечном итоге была принята эпоксидная смола, отверждаемая ультрафиолетовым излучением. Используемый клей представляет собой маловязкую, быстроотверждаемую эпоксидную смолу, способную отверждаться в течение 5 секунд под воздействием ультрафиолета. При затвердевании клей становится очень жестким и обладает отличной прочностью, в результате чего изготовленный лабрум-кантилеверный зонд ведет себя как единое тело, не разрушаясь и не деформируясь в месте адгезии. Эта опция обеспечила достаточно времени перед отверждением, чтобы настроить установку в правильном положении для приклеивания жала к консолью АСМ (шаг 6.3), устраняя при этом любые проблемы, связанные с вибрациями окружающей среды из-за его поведения при отверждении по команде.

Оставшимся важным оборудованием в этом протоколе является зондовая станция, острый пинцет и консоль. Используемая зондовая станция оснащена 5-кратным объективом, установленным на камере; Однако для этого протокола не обязательно использовать именно эту модель зондирующей станции. При выборе зондовой станции единственным приоритетом является обеспечение четкой и легкой видимости консоли АСМ и лабрума. Используемые острые пинцеты имели размер наконечника 0,5 мм на 0,1 мм. Обязательно использовать пинцет с этим размером кончика или аналогичным, потому что использование щипцов с меньшей тонкостью может привести к трудностям во время манипуляций с губой. Консоль, используемая в этом протоколе, получена из коммерческого источника (см. Таблицу материалов). Эта консольная модель была выбрана из-за ее высокой жесткости, поскольку на кончик зонда комара должна быть передана большая сила, чтобы имитировать реальное проникновение в кожу. Как правило, для всех зондов на основе стингера консоль АСМ не может быть слишком мягкой, поскольку недостаточная жесткость приведет к изгибу кантилевера во время испытания АСМ, что, в свою очередь, приведет к отсутствию развития давления на кончике жала-зонда. Это приведет к тому, что зонд будет неточно имитировать процесс ужаливания, что сделает высокожесткие консоли АСМ без наконечника обязательным требованием для этого протокола.

Таким образом, использование биогибридного зонда АСМ на основе жала для количественных исследований механического проникновения/укуса имеет уникальные преимущества по сравнению с другими методами, которые требуют живых комаров и людей-добровольцевдля проведения аналогичных исследований. Сверхвысокое разрешение АСМ позволяет проводить измерения с беспрецедентной точностью, а биогибридный зонд позволяет имитировать практически реалистичные сценарии куса, включая статистически значимое количество измерений без участия добровольцев 4,11,12. Кроме того, материалы, используемые для изготовления инженерных микроигл, обычно склонны к излому или изгибу 3,4, что не является репрезентативным хоботком комара. Использование самих частей комара лучше напоминает реальный сценарий укуса. Этот протокол потенциально может быть доработан и автоматизирован для высокопроизводительного производства. Наконец, разработанный протокол потенциально может быть использован для производства других биогибридных зондов АСМ с использованием жал различных животных для количественных исследований различного поведения при укусе/проникновении.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не могут заявить о конфликте интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы выражают признательность за финансовую поддержку со стороны канадского Фонда новых рубежей в исследованиях (NFRF), программы Discovery Совета по естественным наукам и инженерным исследованиям Канады (NSERC) и магистерских стипендий Фонда исследований природы и технологий Квебека (FRQNT). Авторы также хотели бы поблагодарить группу профессора Яо Яо Чжао в Университете Макгилла за их техническую поддержку в 3D-печати некоторых компонентов.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
  5-SA-SE Прямой конический ультратонкий пинцетExceltaN/AДля манипуляций/рассечения хоботка.
Зондовая станция C-4DEverbeing Int' l Корпорация Н/ДИспользуется для сборки АСМ.
КонсольNanoAndMore СШАTL-NCHAFM, используемая для монтажа лабрума.
Технические характеристики приведены здесь:

Форма: Beam
Force Constant: 42 Н/м (10 - 130 Н/м)
Resonance Frequency: 330 кГц (204 - 497 кГц)
Length: 125 &m; м (115 - 135 & микро; m)
Width: 30 &m; м (22,5 - 37,5 &; m)
Thickness: 4 &микро; м ( 3 - 5 & микро; m)
UV ExpoxyLet's resinALR00146Для крепления жала.

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. World Health Organization. Global vector control response 2017–2030. World Health Organization. , (2017).
  2. Gurera, D., Bhushan, B., Kumar, N. Lessons from mosquitoes’ painless piercing. J Mech Behav Biomed Mater. 84, 178-187 (2018).
  3. Ma, G., Wu, C. Microneedle, bio-microneedle and bio-inspired microneedle: A review. Journ of Contr Relea. 251, 11-23 (2017).
  4. Kong, X., Wu, C. Micronano structure and mechanics behavior of mosquito’s proboscis biomaterials with applications to microneedle design. Advan Mater Res. 299-300, 376-379 (2011).
  5. Li, A. D. R., Putra, K. B., Chen, L., Montgomery, J. S., Shih, A. Mosquito proboscis-inspired needle insertion to reduce tissue deformation and organ displacement. Sci Rep. 10 (1), 12248(2020).
  6. Meyer, E., Hug, H. J., Bennewitz, R. Introduction to Scanning Probe Microscopy. Scanning Probe Microscopy. 1, 1-13 (2004).
  7. García, R., Peréz, R. Dynamic atomic force microscopy methods. Surf Sci Rep. 47 (6), 197-301 (2002).
  8. Thurner, P. J. Atomic force microscopy and indentation force measurement of bone. WIREs Nanomed and Nanobio. 1 (6), 624-649 (2009).
  9. Müller, D. J., Dufrêne, Y. F. Atomic force microscopy as a multifunctional molecular toolbox in nanobiotechnology. Nat Nanotech. 3 (5), 261-269 (2008).
  10. Hussain, D., Ahmad, K., Song, J., Xie, H. Advances in the atomic force microscopy for -critical dimension metrology. Meas Sci Technol. 28 (1), 012001(2017).
  11. Kong, X. Q., Wu, C. W. Mosquito proboscis: An elegant biomicroelectromechanical system. Phys Rev E. 82 (1), 011910(2010).
  12. Kong, X. Q., Wu, C. W. Measurement and prediction of insertion force for the mosquito. J Bionic Eng. 6 (2), 143-152 (2009).
  13. Ramasubramanian, M. K., Barham, O. M., Swaminathan, V. Mechanics of a mosquito bite with applications to microneedle design. Bioinspir Biomim. 3 (4), 046001(2008).
  14. Ferreira, T., Rasband, W. ImageJ user guide. , Available from: http://imagej.nih.gov/ij/docs/guide (2012).
  15. Dai, G., et al. Nanoscale surface measurements at sidewalls of nano- and micro-structures. Measur Sci and Technol. 18 (2), 334-341 (2007).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи