Методическая статья

Имплантация беспроводного телеметрического устройства в модель овцы Фонтана для непрерывного и долгосрочного гемодинамического мониторинга

1.2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/68068

⸱

2 мая 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Center for Regenerative Medicine, Abigail Wexner Research Institute at Nationwide Children's Hospital, 2Department of Surgery, The Ohio State University Wexner Medical Center, 3Biomedical Sciences Graduate Program, The Ohio State University College of Medicine, 4Department of Pediatric Cardiology, Nationwide Children's Hospital, 5Department of Pediatric Surgery, Nationwide Children's Hospital

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол описывает хирургическую методологию имплантации беспроводного телеметрического устройства для крупных животных для обеспечения непрерывного и долгосрочного сбора гемодинамических данных, включая частоту сердечных сокращений, артериальное давление, давление нижней и верхней полых вен и сердечный ритм.

Аннотация

В то время как процедура Фонтена значительно увеличивает продолжительность жизни пациентов с одним желудочком, хорошо известно, что образовавшееся кровообращение вызывает значительное бремя заболевания в долгосрочной перспективе как следствие хронически повышенного давления в центральных венах и снижения сердечного выброса. Хронические модели Фонтена на животных являются ценным активом для изучения поздних физиологических последствий, связанных с этой операцией, и необходимым инструментом для оценки будущих устройств, предназначенных для смягчения отказа Фонтена. Тем не менее, предыдущие попытки создания хронических моделей Фонтена были затруднены из-за низких показателей выживаемости. Кроме того, эффективный сбор гемодинамических данных представляет собой серьезную проблему при свободном передвижении животных. С этой целью использование беспроводных имплантируемых телеметрических систем обеспечивает новое решение для долгосрочного мониторинга сердечно-сосудистых данных в режиме реального времени. Этот протокол описывает методологию хирургической имплантации беспроводного телеметрического устройства в модель выживаемости овец по Фонтену, облегчающую непрерывную и непрерывную регистрацию нескольких гемодинамических параметров, включая частоту сердечных сокращений, артериальное давление и локализованное давление в нижней (IVC) и верхней полой вене (SVC). Телеметрические устройства имплантировали с канюляцией либо сонной артерии и внутренней яремной вены, либо бедренной артерии и вены, для размещения чувствительных к давлению катетеров в восходящей аорте и ВПВ или брюшной аорте и НПВ соответственно. Использование беспроводных телеметрических систем позволило осуществлять тщательный послеоперационный мониторинг после одноэтапной операции Фонтена, что способствовало улучшению благополучия и выживаемости животных.

Введение

Разработка процедуры Фонтена в 1971 году привела к значительному улучшению исходов у пациентов с одним желудочком1. Целью данной операции является разделение системного и легочного венозного возврата к сердцу, тем самым увеличивая системную оксигенацию и снимая объемную нагрузку на системный желудочек. С момента его появления в хирургический подход были внесены многочисленные изменения. В настоящее время полное шунтирование правых отделов сердца чаще всего достигается путем этапной реконструкции 2,3. Как правило, первый этап проводится в течение первой недели жизни4. Затем пациенты проходят второй этап, который состоит либо из процедуры Гленна, либо из метода Хеми-Фонтена, чтобы перенаправить кровоток из верхней полой вены (ВПВ) в легочную артерию (ЛП)5. Затем следует операция Фонтена, которая включает в себя создание экстракардиального канала или латерального туннеля между нижней полой веной (IVC) и PA6. Хирургические достижения, подобные тем, которые были сделаны на протяжении всей истории процедуры Фонтена, не могли бы быть достигнуты безиспользования животных моделей.

В то время как процедура Фонтена значительно увеличивает продолжительность жизни пациентов с одним желудочком, хорошо известно, что возникающее кровообращение, которое функционирует без субпульмонального насоса, вызывает значительное бремя заболевания в долгосрочной перспективе в результате хронически повышенного центрального венозного давления (ЦВД) и снижения сердечного выброса 8,9,10,11,12 . Хронические модели Фонтена на животных являются ценным активом для изучения поздних физиологических последствий, связанных сэтой операцией. Активный сбор данных о сердечно-сосудистых параметрах, таких как CVP, частота сердечных сокращений и другие жизненно важные показатели, для фиксации послеоперационных гемодинамических изменений имеет важное значение для всесторонней оценки развивающейся патофизиологии. Кроме того, животные модели являются необходимым инструментом для проверки возможностей новых желудочковых вспомогательных устройств, предназначенных для смягчения гемодинамических недостатков циркуляции Фонтена in vivo 14,15,16,17,18,19.

Однако эффективный сбор данных представляет собой серьезную проблему. Методы на основе инвазивных катетеров ограничены их преходящим характером, связанными с процедурными рисками и невозможностью мониторинга состояния животного в течение длительных периодов времени. Более того, предыдущие попытки создать модель Фонтена крупного животного были затруднены низкими показателями выживаемости, предположительно из-за неспособности нормальных сердец адаптироваться к острому становлению циркуляции Фонтена 7,20. С этой целью использование беспроводных телеметрических систем обеспечивает новое решение для долгосрочного сбора сердечно-сосудистых данных в режиме реального времени у свободно движущихся животных21,22. Эти устройства также могут обеспечить тщательный послеоперационный мониторинг, что может привести к улучшению благополучия и выживаемости животных.

В данной статье мы опишем методологию успешной имплантации и использования беспроводной телеметрической системы23 в модели овцы хронического Фонтана. Этот метод обеспечил надежное и надежное средство непрерывного сбора гемодинамических данных, позволяющее изучать венозное давление и другие ключевые физиологические параметры. Внедрение этой технологии в доклинические модели имеет решающее значение для углубления нашего понимания физиологии Фонтена и разработки новых терапевтических стратегий, направленных на улучшение долгосрочных результатов лечения пациентов с болезнью Фонтена.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Этот экспериментальный протокол был одобрен Комитетом по уходу за животными и их использованию Национальной детской больницы Исследовательского института Эбигейл Векснер (AR20-00121). Все процедуры проводились в соответствии с рекомендациями, изложенными в Руководстве Национального института здравоохранения по использованию и уходу за лабораторными животными. Это исследование проводилось в соответствии с рекомендациями «Исследования на животных: отчетность об экспериментах in vivo ». Овцы породы Дорсет весом 23-38 кг и возрастом от 2 до 12 месяцев содержались в специальной среде, свободной от патогенов, со свободным доступом к пище и воде в течение как минимум 1 недели до операции. Оборудование и реагенты, использованные в исследовании, перечислены в Таблице материалов.

1. Подготовка животных

  1. За 1 неделю до операции ветеринарная бригада осмотрит овец, чтобы убедиться, что они могут безопасно проходить анестезию. Быстро оздоровить овец и лишить их воды за 12 ч до хирургического вмешательства.
  2. Седативный препарат с комбинацией кетамина (4 мг/кг) и диазепама (0,5 мг/кг) вводится через внутреннюю яремную вену (IJ).
  3. Брейте овец в соответствии с запланированной процедурой (подробно описано ниже) и над бедром для установки заземляющей прокладки электрокоагуляции. Очистите места операций спиртом.
  4. Введите в трахею однопросветную эндотрахеальную трубку диаметром 8-9 мм.
  5. Ввести орогастральный зонд для декомпрессии желудка и рубца.
  6. Введите однопросветный венозный катетер (16-18 G) в правую яремную вену или боковую подкожную вену для непрерывного введения жидкости, непрерывной инфузии (CRI) пропофола и инъекции препарата по мере необходимости.
  7. Поместите артериальный катетер (22-24 G) в ушную артерию для непрерывного мониторинга артериального давления.
  8. Поместите манжету для измерения артериального давления на правую переднюю конечность для неинвазивного измерения артериального давления, зажим на ухе или языке для контроля насыщения кислородом и электрокардиограмму (ЭКГ) на всех четырех конечностях.
  9. Во время процедуры следует поддерживать анестезию с использованием ингаляционного изофлурана 1%-3% со 100%O2 и/или пропофола CRI (20-45 мг/кг/ч).
  10. Асептически очистите места проведения операций с помощью препарата на основе хлоргексидина и наложите простыню стандартным стерильным способом.
  11. Вводите цефазолин (25 мг/кг) для антибиотикопрофилактики перед разрезом и повторно дозируйте каждые 4 ч во время операции по мере необходимости.
  12. Введите подкожное введение местного анестетика, такого как бупивакаин 0,25%, во все запланированные места разрезов до разреза.

2. Подготовка прибора телеметрии

  1. Откройте программу телеметрии и включите устройство телеметрии с помощью магнитного переключателя, пока оно еще запечатано в оригинальной упаковке.
  2. В программном обеспечении нажмите « Оборудование », расположенное на верхней панели, и выберите «Редактировать конфигурацию PhysioTel Digital (CLC) », чтобы назначить блок телеметрии контроллеру канала связи (CLC).
  3. Как только CLC будет выбран, откроется страница «Сведения о CLC ». На этой странице нажмите «Поиск имплантатов», после чего начнется поиск устройств для имплантатов, включенных поблизости.
  4. Нажмите кнопку Добавить , чтобы добавить единицу телеметрии в список Выбранные имплантаты . Теперь устройство будет отображаться в списке «Настроенные имплантаты» на странице сведений о CLC . Нажмите Сохранить и выйти.
  5. Начните сбор данных, нажав кнопку « Воспроизвести » рядом с названием блока телеметрии на вкладке «Контроль выборки ». Автоматически откроется график, отображающий сбор данных в реальном времени.
  6. Извлеките устройство из внешней упаковки и перенесите его в стерильную внутреннюю упаковку на операционный стол.
  7. Обнулите устройство, пока оно остается во внутренней упаковке. Подождите, пока измерения с помощью устройства не станут стабильными в течение 30 с, и используйте значения стабилизированного непульсирующего среднего давления (NPMN) в качестве смещения.
  8. В окне «Настройка темы» выберите значок настроек рядом с параметром, который обнуляется, и откройте вкладку «Смещения ». Введите значение смещения, полученное в результате измерений NPMN, в текстовое поле.
  9. После ввода смещения проверьте, составляют ли показания NPMN 0 ± 0,1 мм рт.ст. Если нет, повторяйте шаг 2.7 до тех пор, пока значения не окажутся в желаемом диапазоне.
  10. Выполните шаги 2.7-2.9 для обоих напорных каналов.
  11. Перед введением катетеров, чувствительных к давлению, в кровеносный сосуд постучайте по наконечнику, чтобы определить соответствующий канал. На выходе сигнала будут заметны постукивания.
  12. Используйте катетер, соответствующий каналу давления левого желудочка (ЛЖП) для измерения артериального давления и каналу артериального давления (АД) для измерения венозного давления.
  13. На вкладке Стандартные атрибуты диалогового окна Атрибуты анализа артериального давления установите минимальную высоту пульса равной 1 мм рт.ст. для канала АД.

3. Метод 1: Канюляция бедренной артерии и вены

  1. Брейте овец по широкому периметру вокруг правого паха и над животом и грудью.
  2. Положите овцу лежа на операционный стол так, чтобы ее передние конечности были зафиксированы в сгибании с помощью гибкого тканевого ремня, а задние конечности были зафиксированы в разгибании с помощью завязки, чтобы обеспечить доступ к паху (рисунок 1A).
  3. Сделайте поперечный разрез шириной 5 см в правой паховой области с центром пальпируемой бедренной артерии, примерно на 1 см ниже паховой складки.
  4. Используя комбинацию электрокаутеризации и тупого рассечения, рассекайте через подкожную клетчатку до бедренного треугольника. Определите местонахождение бедренных сосудов путем пальпации артериального пульса.
  5. Разделите мышцу сарториуса и длинную приводящую мышцу вдоль направления мышечных волокон, чтобы обнажить бедренные сосуды (рис. 1B).
  6. Используя комбинацию тупого и острого рассечения, очистите соединительную ткань от бедренных сосудов по окружности.
  7. Проведите шелковую завязку с двойной петлей 2-0 вокруг обоих сосудов проксимальнее и дистальнее места канюляции для временной перевязки сосуда.
  8. Сделайте 6-сантиметровый поперечный разрез через кожу в правой нижней части живота, примерно на 3 см выше паховой складки.
  9. Используя комбинацию электрокоагуляции и тупого рассечения, рассекайте подкожно-жировую клетчатку и соединительную ткань, чтобы создать карман размером 6 см x 4 см, поверхностный к наружной косой.
  10. Вставьте телеметрическое устройство в подкожный карман и закрепите его на месте с помощью шелкового шовного материала 2-0 (рис. 1C).
  11. Проведите туннель антенны телеметрического устройства под подкожную клетчатку и закрепите ее на месте с помощью шелкового шва 2-0.
  12. Для размещения биопотенциальных (ЭКГ) отведений делают 1-сантиметровые встречные разрезы на коже над средней и нижней частью живота, а также нижней и верхней частью грудной клетки. Туннель подкожно соединить эти разрезы с карманом на теле аппарата и направить провода ЭКГ к их нужному расположению.
  13. Поместите положительный электрод в подкожную клетчатку слева от нижней части грудины. Убедитесь, что силиконовая трубка снята, чтобы открыть кончик стальной проволоки под ней.
  14. Поместите отрицательный электрод в подкожную клетчатку справа от верхней грудины.
  15. Лишняя проводка для обоих проводов может быть свернута и закреплена в подкожном месте с помощью шелкового шва 2-0.
  16. Создайте подкожный туннель от нижнего кармана брюшного устройства к паховому разрезу и проденьте через него два катетера давления.
  17. Наложите кисетной шов с помощью полипропиленового шва 6-0 вокруг места канюляции бедренной артерии и вены, который можно закрепить с помощью пластикового жгута.
  18. Заполните гелевые наконечники катетера несжимаемым гелем с высокой вязкостью, чтобы предотвратить коагуляцию внутри наконечников катетера и обеспечить отсутствие пузырьков воздуха.
  19. Ввести дозу гепарина внутривенно (100 ЕД/кг) за 3 мин до канюляции.
  20. Затяните проксимальный и дистальный отделы 2-0 шелковыми жгутами вокруг бедренной артерии. Аккуратно надрежьте сосуд в центре кисетного стежка скальпелем с лезвием #11 и слегка расширьте кончиком изогнутого гемостата.
  21. Вставьте давящий катетер, соответствующий каналу LVP, и продвигайте его в брюшную аорту, ослабляя проксимальный шелковый жгут, чтобы обеспечить прохождение катетера. Затяните кисетный шов и завяжите его вокруг катетера.
  22. Повторите шаги 3.20 и 3.21 для канюляции бедренной вены с помощью напорного катетера, соответствующего каналу АД, и введите его в абдоминальную НПВ (Рисунок 1D).
  23. С помощью рентгеноскопии убедитесь, что кончики катетеров расположены правильно в НПВ и аорте.
  24. Повторите приближение портновской мышцы с помощью рассасывающегося шва 2-0.
  25. Закройте кожу глубокими дермальными и подкожными швами с помощью рассасывающихся швов 3-0 и 4-0 соответственно.

4. Метод 2: Канюляция сонной артерии и внутренней яремной вены

  1. Брейте овец по широкому периметру вокруг левой шеи и вниз по грудь.
  2. Расположите овцу в правом боковом пролежне на операционном столе так, чтобы левая передняя конечность была зафиксирована при сгибании с помощью завязки, чтобы обнажить грудную клетку (рисунок 2А).
  3. Сделайте продольный разрез кожи шириной 5 см над левой сонной артерией и IJ веной, примерно на 7 см краниально от грудного входа.
  4. С помощью электрокаутеризации рассекайте подкожно-жировую клетчатку, соединительную ткань и платизму, чтобы обнажить сосуды шеи (рисунок 2B).
  5. Используя комбинацию тупого и резкого рассечения, очистите соединительную ткань от левой сонной артерии и IJ вены по окружности.
  6. Проведите шелковую завязку с двойной петлей 2-0 вокруг обоих сосудов проксимальнее и дистальнее места канюляции для временной перевязки сосуда.
  7. Сделайте продольный разрез 6 см у основания левой шеи между лопаткой и шейным отделом позвоночника.
  8. Используя комбинацию электрокоагуляции и тупого рассечения, рассеките подкожно-жировую клетчатку и соединительную ткань, чтобы создать карман размером 6 см x 4 см, идущий к позвоночнику.
  9. Вставьте телеметрический прибор в подкожный карман и закрепите его на месте с помощью шелкового шва 2-0.
  10. Проведите туннель антенны телеметрического устройства под подкожную клетчатку и закрепите ее на месте с помощью шелкового шва 2-0.
  11. Сделайте встречные разрезы кожи по 1 см у основания шеи, а также в нижней левой и верхней правой части грудной клетки, для размещения отведений ЭКГ. Туннель подкожно соединить эти разрезы с карманом на теле устройства и направить провода ЭКГ к их нужному месту (рисунок 2В).
  12. Расположите провода ЭКГ аналогично описанным выше шагам для процедуры имплантации бедренной кости (раздел 3).
  13. Создайте подкожный туннель от латерального кармана устройства к медиальному разрезу шейки и проденьте через него два катетера давления. Подготовьте эти катетеры давления с помощью геля перед канюляцией, как описано в процедуре имплантата бедренной кости.
  14. С помощью полипропиленового шва 6-0 наложите кошельковый шов вокруг места канюляции на обоих сосудах и закрепите пластиковым жгутом.
  15. Ввести дозу гепарина внутривенно (100 ЕД/кг) за 3 мин до канюляции.
  16. Затяните проксимальный и дистальный отделы 2-0 шелковых жгутов вокруг сонной артерии. Аккуратно надрежьте сосуд в центре кисетного стежка скальпелем с лезвием #11 и слегка расширьте кончиком изогнутого гемостата.
  17. Вставьте давящий катетер, соответствующий каналу LVP, и продвинуте его в грудную восходящую аорту, ослабляя проксимальный шелковый жгут, чтобы обеспечить прохождение катетера. Затяните кисетный шов и завяжите его вокруг катетера.
  18. Повторите шаги 4.16 и 4.17 для канюляции левой вены IJ с помощью напорного катетера, соответствующего каналу АД, и введите его в грудной отдел ЖВК.
  19. Подтвердите правильное расположение кончиков катетеров в грудной ВПК и восходящей аорте с помощью рентгеноскопии (Рисунок 2D).
  20. Повторите аппроксимацию мышцы платизмы с помощью рассасывающегося шва 2-0.
  21. Закройте кожу глубокими дермальными и подкожными швами с помощью рассасывающихся швов 3-0 и 4-0 соответственно.

5. Восстановление

  1. Прекратить прием анестетиков. Извлеките орогастральный зонд и экстубируйте его, когда овца дышит без посторонней помощи аппарата искусственной вентиляции легких. Обычно это происходит после того, как овца проявляет признаки возбуждения (движение, моргание, реакция на болезненные раздражители, тонус челюсти, жевание).
  2. Удалите артериальный катетер.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Непрерывный мониторинг артериального давления может быть обеспечен телеметрическим устройством, если один из его катетеров давления был помещен в аорту.
  3. Переведите овец в изолированный жилой блок для выздоровления. Помогите овцам оставаться в лежачем положении на грудине, а затем, в конечном итоге, стоять.
  4. Введите внутривенно банамин (2,2 мг/кг) и подкожно бупренорфин SR (0,03 мг/кг) при послеоперационной боли.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Хирургические исходы
В общей сложности 13 овцам была выполнена одномоментная операция по методу Фонтена с полным каволегочным соединением с отслоением как ВПВ, так и НПВ от правого предсердия, прямым анастомозом ВПВ в ПА и размещением экстракардиального кондуита между НПВ и ПА. Овцы подвергались этой процедуре в среднем в возрасте 13,3 ± 7,6 месяцев. Из них 3 овцам была проведена имплантация беспроводного телеметрического устройства с размещением в брюшную аорту катет...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Нами разработаны два хирургических метода имплантации беспроводного телеметрического устройства в модель овцы. Устройство было успешно имплантировано 5 овцам для достижения непрерывного, долгосрочного мониторинга и записи нескольких сердечно-сосудистых параметров, включая частоту сердечных сокращений, артериальное давление и локализованное венозное давление из абдоминального НПВ и грудной ВПВ. Все овцы пережили операцию по имплантации устройства без каких-либо серьезных осложнений и чере...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Этот проект был профинансирован организацией Additional Ventures Cures Collaborative, Пало-Альто, Калифорния.

Благодарности

Мы ценим преданный своему делу ветеринарный персонал в Центре исследований животных. Мы также хотим выразить нашу благодарность Мэри Уокер, доктору ветеринарных наук, магистру медицины, за ее бесценный опыт и бдительную заботу на протяжении всего исследования.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,9% раствор хлорида натрияКорпорация здравоохранения BaxterФармацияИнтраоперационная реанимация жидкостями и промывка ран
16 G внутривенный катетерBD382259Для жидкости и введения лекарств
22 G внутрисосудистый катетерBD381423Для артериальных и bbsp; Мониторинг артериального давления
70% изопропиловый спиртAspen Vet11795782Местное чистящее средство
Картридж ACTAbbot Diagnostics03P86-25Активированное время свертывания
Зажим для полотенца backhausMedlineMDS1411111Для прикрепления стерильной драпировки  
БанаминHospira PharmaceuticalsФармацияПослеоперационный контроль боли: концентрация 50 мг/мл, доза 2,2 мг/кг
Манжета для измерения давленияRoyal Philips9.89803E+11Неинвазивный мониторинг артериального давления
Бупивакаин гидрохлоридHospira PharmaceuticalsФармацияМестный анестетик: концентрация 2,5 мг/мл, доза 2,5 мг/кг
БупренорфинHospira PharmaceuticalsФармацияПослеоперационный контроль боли: концентрация 0,3 мг/мл, доза 0,03 мг/кг
Держатель для игл CastroviejoMedlineMDS0750386Держатель иглы при шве кровеносных сосудов
Прокладка для очистки коагуляцииКардинал Хелс300-2SSЧтобы очистить наконечник карандаша для коагуляции
Карандаш для коагуляцииMedlineESRK3002LДля вскрытия с помощью электрокоагуляции
ЦефазолинHospira PharmaceuticalsФармацияПрофилактика антибиотиков
ЦетакаинЦетилит220Топический анестетик для интубации
ХлорапрепBD930825Топический антисептик
Дебакей атравматические щипцыMedlineMDS1130630FДля обработки тканей
ДиазепамHospira PharmaceuticalsФармацияСедативное: концентрация 5 мг/мл, доза 0,5 мг/кг
Провода ЭКГ3M2570Мониторинг ЭКГ
Эндотрахеальная трубка, размер 8-9Ковидьен86452, 86114 или 86454Чтобы обеспечить безопасность дыхательных путей
Гемостатические щипцы ХартманаMedlineMDS1221109Зажимать кровеносные сосуды и держать небольшие швы
ГепаринHospira PharmaceuticalsФармацияАнтикоагулянт: 1 000 единиц USP/мл.
Комплект датчика давленияЭдвардс ЛайфсайнсVSYPX12NДля артериальных и bbsp; Мониторинг артериального давления
Лингвальный клипс пульсоксиметраNellcorPO736Для пульсоксиметрии
ИзофлуранКорпорация здравоохранения BaxterФармацияАнестетик: доза 1-3%
Пинцет Кантровица (прямоугольный)MedlineMDS1243528Для тупой вскрытия вокруг кровеносных сосудов
КетаминHospira PharmaceuticalsФармацияСедативное: концентрация 100 мг/мл, доза 4 мг/кг
Лапаротомический драпировкаMedlineDYNJP3008Стерильная драпировка
Смазочное желеMedlineMDS0322273ZСмазка для эндотрахеальной трубки
Держатель для игл Mayo HegarMedlineMDS2418420FДержатель иглы при шве мягких тканей
Майонезские ножницыMedlineMDS0816121Чтобы разрезать шов
Изогнутые ножницы МетценбаумаMedlineMDS3223226Для резкой диссекции
Иглы и шприцыКардинал Хелс309604Для внутривенного и подкожного введения препаратов 
OptixcareAventixOPX-4252Смазка для роговицы
Шв из ручного шваEthiconC016DДля перевязки кровеносных сосудов и подкожного прикрепления телеметрического устройства
Цифровое устройство беспроводной телеметрии PhysioTelData Sciences InternationalМодель L21Имплантация беспроводного телеметрического устройства
Микропинцеты PierceMedlineMDG384908Мелкая иглая обработка  
Пластиковый жгут и швейный барабанMedtronic 79013Для облегчения гемостаза во время каннулирования сосудов
Мешок давленияCarefusion64-10029Для мониторинга артериального давления
Шов Prolene 6-0Ethicon8307HПетля с кошельком для канюляции сосудов
ПропофолФрезениус КабиФармацияАнестетик: концентрация 10 мг/мл, доза 20-45 мг/кг/ч
Лезвие скальпеля #10MedlineMDS15310Для кожных разрезов
Лезвие скальпеля #11MedlineCISION11CSДля разреза в кровеносных сосах
Щипцы для миндалинов ШнидтаMedlineMDS5018719Для тупого вскрытия через подкожную ткань
Носилки SoftCarryЧетыре флага над АспеномSSTR-4Для перевозки животных
Стерильное одноразовое полотенцеMedlineMDT2168201Стерильная драпировка
Стерильная чашаLSL Industries5232Для удержания солёного раствора
Стерильная хлопковая губка с рентгеновским обнаружениемMedlineNON21430LFПоглощение жидкости
Орогастральная трубкаЛаборатория Йоргенсена, Инк.J0348RДля декомпрессии желудка и рубца
T-портMedlineDYNDTN0001Внутривенный разъём катетерной трубки
Мешок для отвода мочиКовидьен3512Подключается к орогастральной трубке для сбора желудочных жидкостей
Ветеринарный трокар со стилетомBraintree Scientific, Inc.TRO-STY 7B-12Направлять телеметрические провода через подкожную ткань
Шов Vicryl 2-0EthiconVCPB269HЗакрытие подкожных мягких тканей
Шов Vicryl 3-0EthiconVCPB416HЗакрытие глубокого дермального слоя
Шов Vicryl 4-0EthiconJ494HЗакрытие подкутикулярного слоя
Согревающее одеялоЛаборатория Йоргенсена, Инк.J1034BПоддерживать температуру тела животного
Ретрактор WeitlanderТелефлекс Медикал165358Для втягивания раны
Всасывание наконечника лампы ЯнкауэраMedlineDYND50138Управление стерильными отходами

Ссылки

  1. Fontan, F., Baudet, E. Surgical repair of tricuspid atresia. Thorax. 26 (3), 240-248 (1971).
  2. Attanavanich, S., Limsuwan, A., Vanichkul, S., Lertsithichai, P., Ngodngamthaweesuk, M. Single-stage versus two-stage modified fontan procedure. Asian Cardiovasc Thorac Ann. 15 (4), 327-331 (2007).
  3. Bove, E. L., Lloyd, T. R. Staged reconstruction for hypoplastic left heart syndrome. Contemporary results. Ann Surg. 224 (3), discussion 394-385 387-394 (1996).
  4. Iskander, C., et al. Comparison of morbidity and mortality outcomes between hybrid palliation and norwood palliation procedures for hypoplastic left heart syndrome: Meta-analysis and systematic review. J Clin Med. 13 (14), 4244(2024).
  5. Salik, I., Mehta, B., Ambati, S. Bidirectional Glenn Procedure or Hemi-Fontan. , Statpearls. Treasure Island, FL. (2024).
  6. Daley, M., D'udekem, Y. The optimal Fontan operation: Lateral tunnel or extracardiac conduit. J Thorac Cardiovasc Surg. 162 (6), 1825-1834 (2021).
  7. Jalal, Z., et al. Role and applications of experimental animal models of Fontan circulation. J Clin Med. 13 (9), 2601(2024).
  8. Al Balushi, A., Mackie, A. S. Protein-losing enteropathy following Fontan palliation. Can J Cardiol. 35 (12), 1857-1860 (2019).
  9. Emamaullee, J., et al. Fontan-associated liver disease: Screening, management, and transplant considerations. Circulation. 142 (6), 591-604 (2020).
  10. Mazza, G. A., Gribaudo, E., Agnoletti, G. The pathophysiology and complications of Fontan circulation. Acta Biomed. 92 (5), e2021260(2021).
  11. Schwartz, I., Mccracken, C. E., Petit, C. J., Sachdeva, R. Late outcomes after the Fontan procedure in patients with single ventricle: A meta-analysis. Heart. 104 (18), 1508-1514 (2018).
  12. Zafar, F., et al. Long-term kidney function after the Fontan operation: Jacc review topic of the week. J Am Coll Cardiol. 76 (3), 334-341 (2020).
  13. Van Puyvelde, J., et al. Creation of the Fontan circulation in sheep: A survival model. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 29 (1), 15-21 (2019).
  14. Cysyk, J., et al. Chronic in vivo test of a right heart replacement blood pump for failed Fontan circulation. ASAIO J. 65 (6), 593-600 (2019).
  15. Cysyk, J. P., et al. Miniaturized Fontan circulation assist device: Chronic in vivo evaluation. ASAIO J. 67 (11), 1240-1249 (2021).
  16. D'udekem, Y., et al. Validating the concept of mechanical circulatory support with a rotary blood pump in the inferior vena cava in an ovine Fontan model. Bioengineering (Basel). 11 (6), 594(2024).
  17. Granegger, M., et al. Feasibility of an animal model for cavopulmonary support with a double-outflow pump. ASAIO J. 69 (7), 673-680 (2023).
  18. Wei, X., et al. Mechanical circulatory support of a univentricular Fontan circulation with a continuous axial-flow pump in a piglet model. ASAIO J. 61 (2), 196-201 (2015).
  19. Zhu, J., et al. Cavopulmonary support with a microaxial pump for the failing Fontan physiology. ASAIO J. 61 (1), 49-54 (2015).
  20. Kelly, J. M., et al. Investigation of a chronic single-stage sheep Fontan model. JTCVS Open. 21, 268-278 (2024).
  21. Anderson, N. H., et al. Telemetry for cardiovascular monitoring in a pharmacological study: New approaches to data analysis. Hypertension. 33 (1 Pt 2), 248-255 (1999).
  22. Kearney, K., Appleby, C., Kieper, J., Atterson, P. Comparative analysis of data sciences international PhysioTel™ D70 and PhysioTel™ digital telemetry platforms. J Pharmacol Toxicol Methods. 81, 364-365 (2016).
  23. Physiotel digital l series. , At https://www.datasci.com/products/implantable-telemetry/large-animal/physiotel-digital-l (2024).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи