Методическая статья

Измерение силы между каплями эмульсии в режиме реального времени во время ферментативного пробоя

DOI:

10.3791/68182

⸱

27 июня 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Key Laboratory of Quantum Precision Measurement, College of Physics, Zhejiang University of Technology, 2College of Optical and Electronic Technology, China Jiliang University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом протоколе используется оптический пинцет с двумя ловушками для измерения межкапельных сил в режиме реального времени во время ферментативного расщепления эмульсий. Он облегчает изучение стабильности эмульсии и динамики капель с применением в пищевой промышленности и фармацевтике.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол представляет собой уникальную методологию исследования стабильности эмульсий и динамического распада капель эмульсии во время ферментативного разложения с использованием оптического пинцета с двойной ловушкой. Процесс включает в себя приготовление эмульсии, введение фермента и конфигурирование системы измерения силы для мониторинга межкапельных сил в режиме реального времени. Используя оптический пинцет с двумя ловушками, метод позволяет точно манипулировать каплями эмульсии и наблюдать за ними, облегчая измерение сил между каплями во время ферментативного распада. Этот экспериментальный метод дает значительное представление о взаимодействии и стабильности эмульсий во время пищеварения, что особенно важно для исследований в пищевой науке, фармацевтике и других отраслях промышленности, связанных с органическими эмульсиями. Метод адаптируется и применим к различным оптическим пинцетам и различным типам эмульсий или ферментов, выступая в качестве универсального инструмента для изучения механических свойств и процессов дезинтеграции в различных областях. Кроме того, этот визуальный подход обеспечивает преимущество мониторинга динамики сил в режиме реального времени, открывая новые возможности для изучения поведения эмульсии в различных приложениях.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эмульсии представляют собой гетерогенные системы, состоящие из двух несмешивающихся жидкостей, где одна жидкость диспергируется в виде капель внутри другой. Эти системы повсеместно используются в различных отраслях промышленности, включая пищевую,фармацевтическую1, косметическую и нефтехимическую промышленность. Стабильность и функциональность эмульсий в решающей степени зависят от взаимодействия между каплями, на которое могут влиять различные факторы, такие как химический состав поверхности, условия окружающей среды и присутствиеферментов2.

Во многих областях применения, особенно в пищевой науке и доставке лекарств, эмульсии подвергаются воздействию ферментативных сред 3,4. Например, в пищеварительной системе человека употребляемые в пищу продукты и лекарства на основе эмульсии сталкиваются с различными ферментами, которые могут изменить их структуру и функцию. Понимание динамики взаимодействия капель во время ферментативного сбраживания имеет решающее значение для разработки стабильных и эффективных продуктов на основе эмульсий 5,6.

Традиционные методы изучения стабильности эмульсии 2,7, такие как рассеяние света или реологические измерения, предоставляют ценную объемную информацию, но не могут непосредственно наблюдать и количественно оценивать взаимодействия между отдельными каплями8. Это ограничение затрудняет понимание микромасштабных процессов, происходящих во время ферментативного расщепления эмульсий.

Оптический пинцет стал мощным инструментом для манипулирования микроскопическими объектами и измерения сил на микро- инаномасштабах. Используя импульс света, оптический пинцет может улавливать и перемещать отдельные капли с исключительной точностью. Эта возможность открывает новые возможности для изучения взаимодействия капель-капель в сложных средах10,11.

Этот протокол представляет собой уникальный метод, который сочетает в себе двойной оптический пинцет с измерением силы в режиме реального времени для исследования взаимодействия между каплями эмульсии во время ферментативного разложения. В качестве репрезентативного примера способ продемонстрирован с использованием эмульсионной системы, состоящей из рапсового масла или одной жирной капли, стабилизированной сывороточным белком, подвергающимся расщеплению трипсином. Эта модельная система особенно актуальна для науки о продуктах питания и питании, поскольку она имитирует обычные пищевые эмульсии и их поведение в пищеварительном тракте.

Этот подход позволяет осуществлять прямое наблюдение и количественную оценку сил между отдельными каплями при их ферментативном распаде, обеспечивая беспрецедентное понимание динамики стабильности эмульсии в условиях пищеварения. Метод использует систему оптического пинцета, современную установку оптического пинцета с двумя ловушками, для манипулирования каплями эмульсии и измерения межкапельных сил с высокойточностью13.

Этот экспериментальный метод устраняет разрыв между исследованиями объемных эмульсий и исследованиями на молекулярном уровне, предлагая уникальный взгляд на поведение эмульсий во время ферментативного разложения. Знания, полученные с помощью этого метода, имеют далеко идущие последствия для различных областей, включая пищевую инженерию, фармацевтические рецептуры и фундаментальную коллоидную науку. В то время как в качестве примера используется конкретная система нефть-белок-ферменты, представленная здесь методология может быть адаптирована для изучения широкого спектра органических эмульсионных систем и пищеварительных ферментов в различных отраслях промышленности.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

На рисунке 1 показана схема улавливания капель оптическим пинцетом с двумя ловушками. Реагенты и оборудование, использованные в данном исследовании, перечислены в Таблице материалов.

1. Приготовление дисперсии сывороточного белка

  1. Приготовьте дисперсию сывороточного белка в размере 5% (по объему) в деионизированной воде.
    1. С помощью электронных весов точно взвесьте 2,5 г порошка сывороточного протеина.
    2. С помощью мерного цилиндра отмерьте 47,5 мл деионизированной воды.
  2. Соедините ингредиенты.
    1. Переложите взвешенный протеиновый порошок и отмеренную воду в стакан.
    2. Добавьте в стакан магнитную мешалку.
  3. Запечатайте стакан.
    1. Накройте стакан уплотнительной пленкой, чтобы предотвратить испарение и загрязнение.
  4. Смешайте дисперсию.
    1. Поместите стакан на магнитную мешалку. Установите скорость перемешивания на 1500 об/мин (рис. 2A) до полного растворения протеинового порошка и равномерного диспергирования раствора.
  5. Увлажняйте белок
    1. Чтобы обеспечить полную гидратацию сывороточного белка и свести к минимуму пенообразование, приготовьте дисперсию за сутки до приготовления эмульсии.
    2. Дайте 5% дисперсии сывороточного белка смешаться в течение ночи при комнатной температуре.
      ВНИМАНИЕ: Убедитесь, что вся стеклянная посуда и посуда чисты и не содержат загрязняющих веществ, чтобы не повлиять на дисперсию белка.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Этап ночной гидратации имеет решающее значение для оптимальной функциональности белка и стабильности эмульсии. Пропуск этого шага может привести к снижению эффективности эмульгирования. В этом разделе протокола описаны начальные этапы приготовления дисперсии сывороточного белка, которая будет использоваться для стабилизации капель рапсового масла при последующем приготовлении эмульсии. Следующие этапы обычно включают приготовление эмульсии «масло в воде», постановку эксперимента с оптическим пинцетом и введение трипсина для исследований пищеварения.

2. Приготовление эмульсий типа «масло в воде»

  1. Оптимизируйте рецептуру.
    1. Приготовьте эмульсию, смешав 15% масло с 85% раствором белка по объему, чтобы достичь массового соотношения белка к липидам 0,3.
  2. Подготовьте липидную фазу.
    1. Рапсовое масло является жидким при комнатной температуре. Добавьте 30 мл рапсового масла в центрифужную пробирку для последующего использования.
    2. Молочный жир твердый при комнатной температуре. Возьмите примерно пять мерных ложек молочного жира и поместите их в центрифужную пробирку.
    3. Поместите трубку в стакан и добавьте в стакан примерно 40 мл деионизированной воды.
    4. С помощью цифровой нагревательной пластины нагрейте стакан до 42 °C и поддерживайте эту температуру в течение 30 минут, чтобы обеспечить полное плавление (Рисунок 2B).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Температура плавления молочного жира составляет примерно от 30 °C до 40 °C. Температура в лаборатории поддерживается на уровне 26 °C. Растопленный молочный жир может оставаться жидким в течение определенного периода времени, но он будет постепенно затвердевать при комнатной температуре, если его оставить стоять.
  3. Соедините ингредиенты.
    1. В центрифужную пробирку объемом 5 мл добавьте 0,6 мл масла (рапсового масла или растопленного молочного жира) и 3,4 мл приготовленного раствора сывороточного белка.
  4. Гомогенизируйте эмульсию.
    1. Используйте смеситель с большими сдвиговыми усилиями (HSM). Установите скорость на 25 000 об/мин и перемешивайте в течение 5 минут (Рисунок 2C).
    2. По желанию пропустите грубую эмульсию через гомогенизатор высокого давления. Типичные условия: 2-3 прохода при давлении 500-1000 бар.
  5. Разведите эмульсию.
    1. Приготовьте разведение эмульсии в соотношении 1:1000. Отмерьте 4 мкл исходной эмульсии с помощью пипетки. Добавьте это к 3996 мкл деионизированной воды. Тщательно перемешайте, чтобы обеспечить равномерное разбавление.

3. Первичная настройка оптического пинцета

  1. Подготовьте и очистите микрофлюидные проточные ячейки (см. Таблицу материалов).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Аппарат оснащен шестью микрофлюидными каналами. В этом эксперименте используется только один канал — используется только крайний левый канал на рисунке 3B .
    1. Чтобы подготовить микрофлюидный канал, очистите все необходимое оборудование и проточные каналы. Тщательно промойте все оборудование деионизированной водой, чтобы убедиться, что на нем не осталось остатков.
    2. Для очистки необходимо промыть необходимый канал этанолом. Установите расход на 1,0 бар и промойте этанолом. За 1 ч до эксперимента смыть бычий сывороточный альбумин (БСА) в проточную ячейку. БСА образует «блокирующий» слой на поверхностях для уменьшения неспецифической адсорбции капель эмульсии или других биомолекул.
  2. Влейте приготовленную эмульсию в опытный канал.
  3. Подготовьте прибор перед экспериментом.
    1. Откройте инструмент для оптического пинцета.
    2. Добавьте примерно 70 мкл деионизированной воды в нижнюю линзу объектива.
    3. Вставьте камеру для образцов до тех пор, пока не раздастся «щелчок».
    4. Нанесите каплю погружного масла на верхнюю часть камеры для образцов (рисунок 3C).
    5. Осторожно опустите линзу конденсора до тех пор, пока она слегка не коснется верхней поверхности камеры для образца.
    6. Закройте оптический пинцет прибора перед включением лазера. Лазер работает на длине волны 1064 нм.
  4. Найдите Z-плоскость и отрегулируйте оптический путь.
    1. Включите лазер и установите мощность на 100%.
    2. Отрегулируйте нижнюю ручку (рис. 3A) на системе оптического пинцета, чтобы определить местоположение лазерного пятна. Двигаясь снизу вверх (регулировка по часовой стрелке), трижды наблюдайте за лазерными пятнами. Установите Z-плоскость между вторым и третьим наборами лазерных пятен.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Три набора лазерных пятен появляются, когда лазер фокусируется на нижней поверхности проточной ячейки, верхней поверхности нижнего покровного стекла и нижней поверхности верхнего предметного стекла. Лазер должен быть сфокусирован между верхней поверхностью покровного стекла и нижней поверхностью предметного стекла.
    3. Уменьшите мощность лазера до 30%.
    4. Убедитесь, что на экране появляется от 7 до 11 интерференционных полос (рис. 3E). Если число слишком большое или слишком низкое, отрегулируйте нижнюю ручку.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Количество полос интерференции отражает оптимизацию расстояния между конденсатором и проточной ячейкой. В диапазоне от 7 до 11 полос конденсатор эффективно улавливает достаточное количество света, чтобы обеспечить хорошее соотношение сигнал/шум для измеряемых сигналов, таких как механический отклик. Такое расстояние также обеспечивает безопасное расстояние, чтобы избежать контакта линзы с проточной ячейкой и уменьшить рассеяние оптического пути или помехи от отражения.
  5. Отрегулируйте проточные каналы. Закройте ненужные каналы и убедитесь, что открыт только нужный экспериментальный канал.
  6. Установите мощность лазера. Обычно для захвата капель устанавливают лазер на 100%, но настраивают на необходимую интенсивность для конкретных условий эксперимента.
  7. Настройте хранение данных. Настройте каталог для сохранения файлов, чтобы обеспечить немедленное получение экспериментальных данных.

4. Измерение кривой сила-расстояние для эмульсии

  1. Установите расход на 0,5 бар. Капли должны быть видны на экране в течение примерно 5 секунд. Затем остановите поток, выбрав «Вакуум», и закройте клапан канала.
  2. Захватите капли.
    1. Используйте джойстик для захвата двух капель одинакового размера в канале. Схема успешно захваченных капель показана на рисунке 4.
    2. Отрегулируйте расстояние между двумя каплями примерно до 10 мкм. Если образуется страховочный трос, будет наблюдаться заметное изменение силы.
    3. Зафиксируйте положения x и y правой оптической ловушки и положение y левой оптической ловушки. Отметьте две капли пурпурным и зеленым прямоугольниками соответственно.
  3. Измерьте спектральную плотность мощности (PSD).
    1. Перейдите в меню «Калибровка ».
    2. На левом экране выберите Измерить. Если уровень шума чрезмерен, повторите измерение до тех пор, пока не будут получены удовлетворительные результаты.
    3. Выберите Применить, чтобы подтвердить калибровку.
  4. Очистите исходные данные и измерьте силу-расстояние.
    1. На этом этапе джойстик должен управлять только левой оптической ловушкой. Медленно перемещайте левую ловушку к правой капле с постоянной скоростью (1,0 мкм/с), пока расстояние не достигнет нуля. Эта процедура дает требуемую кривую силы-расстояния.
  5. Выберите данные и сохраните.
    1. Левой кнопкой мыши выберите интересующий интервал данных, начиная с отделения капель от 10 мкм до 0 мкм. На расстоянии 0 μм измеряемая сила обычно достигает своего максимального значения.
  6. Сохраните выбранные данные.
    1. Щелкните правой кнопкой мыши, чтобы сохранить выбранный сегмент данных в исходной папке.

5. Приготовление буферного раствора Триса и раствора трипсина

  1. Приготовьте буферный раствор Tris со следующим составом: 11,860 г/л трис-основания, 0,735 г/л дигидрата хлорида кальция (CaCl2·2H2O) и 8,766 г/л хлорида натрия (NaCl). Отрегулируйте итоговый объем до 100 мл. Первоначально отрегулируйте pH примерно до 8,4 с помощью соляной кислоты (HCl) и подтвердите окончательный pH с помощью тест-полосок pH.
  2. Приготовьте раствор трипсина, растворив 100 мг трипсина 1:250 (полученного из поджелудочной железы свиньи) в 1000 мл трис-буфера. Перемешайте смесь магнитной мешалкой при 4 °C и 500 об/мин в течение 15 минут. Затем центрифугируйте раствор при 4 °C в течение 15 мин.

6. Действие трипсина и схема динамического обнаружения

  1. Добавьте в эмульсию раствор трипсина.
    1. С помощью пипетки с диапазоном от 0,5 мкл до 10 мкл наберите 4 мкл раствора трипсина и осторожно добавьте его в приготовленную эмульсию объемом 4 мкл.
  2. Выполняйте динамический мониторинг в режиме реального времени.
    1. После добавления раствора трипсина динамически контролируйте эмульсии с помощью технологии оптического пинцета. Измерения проводятся каждые 10 минут, при этом первое измерение проводится через 10 минут после добавления раствора трипсина.

7. Обработка данных

  1. Получение экспериментальных данных в формате .h5 и выполнение необходимого преобразования формата с использованием среды обработки данных для создания файлов табличных данных. Преобразованные файлы состоят из двух разделов, в которых записываются данные о силе и расстоянии соответственно.
  2. Подгонка данных из этих двух разделов с помощью методов аппроксимации кривых и визуальное построение полученных аппроксимированных кривых для дальнейшего анализа.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом исследовании эмульсии, содержащие рапсовое масло и сывороточный белок, а также молочный жир и сывороточный белок, были проанализированы с помощью оптического пинцета. Во-первых, была измерена зависимость силы и расстояния между двумя эмульсиями для установления исходных данных (рис. 5A-F). Затем трипсин добавляли в каждую эмульсию, и соотношение силы и расстояния повторно измеряли каждые 10 минут.

На ри...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Основное новшество этой методологии заключается в синхронизированной работе двойных оптических ловушек и технологии механического мониторинга в режиме реального времени (рис. 3A), что позволяет проводить высокоточный динамический анализ на уровне одной капли. Благодаря независимому улавливанию двух капель с помощью двойного оптического пинцета и точному регулированию их разделения с начальным расстоянием 10 мкм (см. шаг 4.2.2), метод преодолевает традиционны...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование было профинансировано НАЦИОНАЛЬНЫМ КЛЮЧЕВЫМ ПРОЕКТОМ ИССЛЕДОВАНИЙ И РАЗРАБОТОК КИТАЯ, грант No 2023YFF0613603, и НАЦИОНАЛЬНЫМ ФОНДОМ ЕСТЕСТВЕННЫХ НАУК КИТАЯ, грант No 22202167.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Программное обеспечение BluelakeLUMICKS, программноеобеспечение для управления оптическим пинцетом
CaCl2.H4O2
Dome LED Цифровая нагревательная мешалкаSCILOGEXSCI280-Pro 
Электронные весыShanghai Hengping Instrument Co., LTDFA1204
HCl
Высокоскоростной гомогенизаторNingbo Kemai Instrument Co., LTDKM-S10
Иммерсионное масло
Светоиндуцированный вихревой смесительный аппаратShanghai HUXI Industrial Co., LTDVortex-5S
Microsoft Office ExcelMicrosoft
Молочный жирSM MlekovitaMaslo Klarowane
NaCl
Оптический пинцетплатформа LUMICKS,Нидерландскаяm-trap
Origin программное обеспечениеOrigin Lab2024Для рисования кривой подгонки силы и расстояния
Пистолет-пипеткаEppendorf10 μ L,100 μ L,1000 μ L
Рапсовое масло Bunge Polska Sp.z o.o. Kujawski
Sealing filmParafilm4IN*125FT
Tris
TrypsinSangon BiotechA100458-0010Трипсин 1:250, из концентрата сывороточного белка поджелудочной железы свиньи
 SM MlekovitaWPC
в Нидерландах

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kale, S. N., Deore, S. L. Emulsion micro emulsion and nano emulsion: A review. Syst Rev Pharm. 8 (1), 39-47 (2016).
  2. Li, N., Fang, S., Liu, S., Duan, M. Methods for measuring the interaction forces between droplets in emulsions. Oilfield Chem. 37 (4), 752-758 (2020).
  3. Tan, C., McClements, D. J. Application of advanced emulsion technology in the food industry: A review and critical evaluation. Foods. 10 (4), 812(2021).
  4. Dhaval, M., et al. Lipid-based emulsion drug delivery systems-a comprehensive review. Drug Deliv Transl Res. 12 (7), 1616-1639 (2022).
  5. Jost, R., Monti, J. C. Partial enzymatic hydrolysis of whey protein by trypsin. J Dairy Sci. 60 (9), 1387-1393 (1977).
  6. Sarkar, A., Zhang, S., Holmes, M., Ettelaie, R. Colloidal aspects of digestion of Pickering emulsions: Experiments and theoretical models of lipid digestion kinetics. Adv Colloid Interface Sci. 263, 195-211 (2019).
  7. Gillies, G., Prestidge, C. A. Interaction forces, deformation and nano-rheology of emulsion droplets as determined by colloid probe AFM. Adv Colloid Interface Sci. 108 - 109, 197-205 (2004).
  8. Manca, M., Zhang, C., Vasconcelos de Melo Freire, R., Scheffold, F., Salentinig, S. Single particle investigation of triolein digestion using optical manipulation, polarized video microscopy and SAXS. J Colloid Interface Sci. 649, 1039-1046 (2023).
  9. Neuman, K. C., Block, S. M. Optical trapping. Rev Sci Instrum. 75 (9), 2787-2809 (2004).
  10. Maragò, O. M., Jones, P. H., Gucciardi, P. G., Volpe, G., Ferrari, A. C. Optical trapping and manipulation of nanostructures. Nat Nanotechnol. 8 (11), 807-819 (2013).
  11. Simmons, R. M., Finer, J. T., Chu, S., Spudich, J. A. Quantitative measurements of force and displacement using an optical trap. Biophys J. 70 (4), 1813-1822 (1996).
  12. McClements, D. J., Li, Y. Structured emulsion-based delivery systems: Controlling the digestion and release of lipophilic food components. Adv Colloid Interface Sci. 159 (2), 213-228 (2010).
  13. Dai, X., et al. Optical tweezers-controlled hotspot for sensitive and reproducible surface-enhanced Raman spectroscopy characterization of native protein structures. Nat Commun. 12 (1), 1292(2021).
  14. Tavano, O. L., Berenguer-Murcia, A., Secundo, F., Fernandez-Lafuente, R. Biotechnological applications of proteases in food technology. Compr Rev Food Sci Food Saf. 17 (2), 412-436 (2018).
  15. Mitropoulos, V., Mütze, A., Fischer, P. Mechanical properties of protein adsorption layers at the air/water and oil/water interface: A comparison in light of the thermodynamical stability of proteins. Adv Colloid Interface Sci. 206, 195-206 (2014).
  16. Rusli, S., Grabowski, J., Drews, A., Kraume, M. A multi-scale approach to modeling the interfacial reaction kinetics of lipases with emphasis on enzyme adsorption at water-oil interfaces. Processes. 8 (9), 1082(2020).
  17. Ghimire, C., Koirala, D., Mathis, M. B., Kooijman, E. E., Mao, H. Controlled particle collision leads to direct observation of docking and fusion of lipid droplets in an optical trap. Langmuir. 30 (5), 1370-1375 (2014).
  18. Català-Castro, F., Schäffer, E., Krieg, M. Exploring cell and tissue mechanics with optical tweezers. J Cell Sci. 135 (15), jcs259355(2022).
  19. Smith, S. B., Cui, Y., Bustamante, C. Optical-trap force transducer that operates by direct measurement of light momentum. Methods Enzymol. 361, 134-162 (2003).
  20. Zhang, H., Wang, F., Ratke, L., Nestler, B. Brownian motion of droplets induced by thermal noise. Phys Rev E. 109 (2), 024208(2024).
  21. Pawar, N. D., Bahga, S. S., Kale, S. R., Kondaraju, S. Symmetric and asymmetric coalescence of droplets on a solid surface in the inertia-dominated regime. Phys Fluids. 31 (9), 092106(2019).
  22. Jiang, Y., Drelich, J. W. Fluid droplet spreading and adhesion studied with a microbalance: A review. Surf Innov. 12 (1-2), 4-17 (2024).
  23. Zhang, L., Hu, Y., Jiang, L. Advancements in emulsion systems for specialized infant formulas: Research process and formulation proposals for optimizing bioavailability of nutraceuticals. Compr Rev Food Sci Food Saf. 23 (6), e70043(2024).
  24. Buyukozturk, F., Benneyan, J. C., Carrier, R. L. Impact of emulsion-based drug delivery systems on intestinal permeability and drug release kinetics. J Control Release. 142 (1), 22-30 (2010).
  25. Xiao, J., Li, C., Huang, Q. Kafirin nanoparticle-stabilized Pickering emulsions as oral delivery vehicles: Physicochemical stability and in vitro digestion profile. J Agric Food Chem. 63 (47), 10263-10270 (2015).
  26. Johnson, E., Koh, A. Recent advances in smart emulsion materials: From synthesis to applications. Adv Eng Mater. 26 (24), 2400995(2024).
  27. Rajbanshi, A., Hilton, E., Dreiss, C. A., Murnane, D., Cook, M. T. Stimuli-responsive polymers for engineered emulsions. Macromol Rapid Commun. 45 (10), 2300723(2024).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи